Manual sobre Técnicas Moleculares - Centro Jardín Botánico de ...
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di<strong>de</strong>oxinucleótidos terminales. Los productos finales <strong>de</strong> esas secuenciaciones se separan<br />
por electroforesis vertical en un gel <strong>de</strong> poliacrilamida y se <strong>de</strong>tectan mediante<br />
autorradiografías. La lectura saltatoria <strong>de</strong> las bandas presentes, en grado ascen<strong>de</strong>nte, en las<br />
cuatro calles, nos dará la secuencia completa <strong>de</strong> nucleótidos <strong>de</strong> ese fragmento genómico.<br />
Las secuenciación completa <strong>de</strong> un fragmento genómico requiere <strong>de</strong> dos lectura s, directa y<br />
reversa; ambas hebras mol<strong>de</strong> <strong>de</strong> una región genómica <strong>de</strong>ben ser secuenciadas, en una<br />
dirección y en otra, y contrastadas entre sí para obtener la secuencia consenso. Las dos<br />
secuencias <strong>de</strong>ben ser complementarias si la secuenciación ha sido correcta en ambos casos.<br />
Las lecturas directa y reversa <strong>de</strong> la misma secuencia permiten la <strong>de</strong>tección <strong>de</strong> errores que<br />
puedan haberse cometido en uno u otro caso y la confirmación <strong>de</strong> la existencia <strong>de</strong><br />
polimorfismos para ciertas posiciones <strong>de</strong> la secuencia (que <strong>de</strong>ben aparecer en ambas<br />
lecturas). En la secuenciación manual <strong>de</strong> fragmentos genómicos pue<strong>de</strong>n aparecer ciertos<br />
problemas relacionados con la homología parcial <strong>de</strong> los cebadores y con las compresiones<br />
<strong>de</strong>bidas a estructuras secundarias <strong>de</strong> la hebra mol<strong>de</strong>. Estos últimos pue<strong>de</strong>n superarse<br />
aumentando la temperatura <strong>de</strong>l proceso. Las homologías <strong>de</strong> los cebadores pue<strong>de</strong>n mejorarse<br />
mediante el rediseño <strong>de</strong> éstos. No obstante, la secuenciación <strong>de</strong> las regiones genómicas, al<br />
igual que la amplificación <strong>de</strong>l ADN <strong>de</strong> esas regiones, únicamente pue<strong>de</strong> darse si se dispone<br />
<strong>de</strong> cebadores universales <strong>de</strong> otras plantas que funcionan bien en los materiales en estudio.<br />
A partir <strong>de</strong> las primeras secuencias obtenidas <strong>de</strong> los materiales en estudio pue<strong>de</strong>n diseñarse<br />
nuevos cebadores que permiten la exploración <strong>de</strong> otras regiones genómicas próximas<br />
<strong>de</strong>sconocidas.<br />
La secuenciación automática representa un avance metodológico respecto a la<br />
secuenciación manual, al disminuir notablemente el tiempo requerido para la secuenciación<br />
<strong>de</strong> los fragmentos y al automatizar el registro <strong>de</strong> los datos. La secuenciación automática<br />
utiliza también di<strong>de</strong>oxinucleótidos terminales, pero en este caso la reacción <strong>de</strong><br />
secuenciación se hace mediante una reacción <strong>de</strong> PCR en un solo tubo, y cada ddNTP está<br />
marcado con un fluorocromo distinto. La separación por electroforesis <strong>de</strong> los fragmentos<br />
requiere <strong>de</strong> una única calle en el gel, en lugar <strong>de</strong> cuatro, o <strong>de</strong> una única carga en el capilar.<br />
La lectura <strong>de</strong> los fragmentos marcados se realiza con un dispositivo <strong>de</strong> impresión por rayo<br />
láser quedando registrados los picos <strong>de</strong> emisión en un cromatograma. Los protocolos <strong>de</strong> la<br />
reacción <strong>de</strong> PCR <strong>de</strong> secuenciación y <strong>de</strong> la programación <strong>de</strong> este proceso se adjuntan en el<br />
Anexo VI.<br />
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