Manual sobre Técnicas Moleculares - Centro Jardín Botánico de ...
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precipitado se lava con una solución de etanol y sales amónicas y se diluye en agua ultrapurificada o en una solución tampón muy diluída. Los métodos de extracción de ADN (micropreparaciones) vienen explicados en el Anexo III. La solución diluída final contiene tanto ADN como ARNs, ya que el protocolo sirve para precipitar los dos tipos de ácidos nucleicos. Los ARNs no suelen interferir en la mayoría de las manipulaciones y análisis a los que se somete al ADN, por lo que no es necesario eliminarlos; sin embargo sí que suelen distorsionar las cuantificaciones de las concentraciones de ADN total, si se hacen por espectrofotometría. Si se quiere obtener una solución purificada de ADN, sin ARNs, el extracto inicial se trata con ARNasa, enzima que degrada los ARN, obteniéndose así una solución que contiene únicamente ADN. La concentración del ADN total aislado en cada muestra se calcula por espectrofotometría o por fluorometría. La calidad de ese ADN total se comprueba en un gel de agarosa; si el ADN es de buena calidad se observa una banda de alto peso molecular, no degradada, en la parte superior de la calle del gel, si el ADN está degradado se observa una mancha de fondo a lo largo de la calle. RFLP La técnica de los Polimorfismos de Longitud de Fragmentos de Restricción (RFLP en siglas inglesas, “Restriction Fragment Length Polymorphisms”) fue una de las técnicas pioneras de análisis de los genomas. Los RFLP se basan en la restricción, o corte del ADN de los genomas, mediante unas enzimas específicas, llamadas enzimas de restricción, y la posterior hibridación de algunos de los fragmentos resultantes con determinadas sondas complementarias (fragmentos de ADN monocatenarios). Con la técnica de RFLP pueden examinarse polimorfismos genómicos de cualquier tipo de genoma vegetal (nuclear, cloroplástico o mitocondrial). Esos polimorfismos son alelos codominantes, que pueden corresponder a distintos tipos de ADN (copia simple o baja copia, moderadamente repetitivo, o altamente repetitivo). Los RFLP se han utilizado como marcadores genómicos del genoma nuclear, del genoma cloroplástico, y del genoma mitocondrial, y en estudios filogenéticos, utilizando como caracteres las mutaciones en los sitios de restricción y basándose en el empleo de distintas combinaciones de sondas y enzimas. Los RFLP nucleares se heredan de forma mendeliana, y han sido empleados en estudios genético-poblacionales, en selección de progenies y en detección de híbridos; también han servido para el mapeo genómico de caracteres de interés en la mejora genética de vegetales cultivados. El primer paso del estudio consiste en el corte del ADN de las muestras mediante enzimas de restricción. Las enzimas de restricción son enzimas endonucleasas, que cortan el ADN bicatenario internamente, en unos lugares específicos (para cada enzima) denominados sitios de restricción. Los sitios de restricción son secuencias cortas de nucleótidos (de 4, 5, ó 6 pares de bases) palindrómicas, reconocidos por las enzimas a lo largo del genoma, y en donde producen el corte. La restricción puede producir extremos cohesivos, si los extremos 50
de las dos hebras del ADN tienen distintos nucleótidos, o romos, si tienen el mismo número y están apareados. Todas las enzimas de restricción proceden de organismos procariotas y reciben su nombre de la bacteria de la que fueron aisladas (p.e., Bam HI, procede de Bacillus amyloliquefaciens, cepa H, descubierta en primer lugar (I), su sitio de restricción es G/GATCC; Eco RI procede de Escherichia coli, cepa RY, descubierta en primer lugar (I), su sitio de restricción es A/GATCT; Hind III procede de Haemophilus influenzae cepa Rd descubierta en tercer lugar (III), su sitio de restricción es A/AGCTT; etc.). Las enzimas se clasifican por su frecuencia de corte, relacionada con la longitud del sitio de restricción; así hay enzimas con lugares de restricción mayores (6 pb) que cortan menos frecuentemente, enzimas con lugares de restricción intermedios (5 pb) que cortan con relativa frecuencia, y enzimas con lugares de restricción menores (4 pb) que cortan con mucha frecuencia. Para la restricción enzimática se prepara una solución que contine el ADN de la muestra y la enzima en un medio tamponado adecuado a 37C durante 2-8 horas. Una vez finalizada la restricción, los fragmentos obtenidos del corte enzimático del ADN de la muestra se separan por electroforesis en gel de agarosa. Si el genoma es de pequeño tamaño y la enzima dispone de escasos lugares de restricción, se obtendrán pocos fragmentos, que podrán visualizarse fácilmente. Sin embargo, si se está sometiendo al ADN total a la acción enzimática, se obtendrán numerosos fragmentos de distintos tamaños como resultado de ese corte que no podrán visualizarse fácilmente al teñir el gel. 51
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<strong>de</strong> las dos hebras <strong>de</strong>l ADN tienen distintos nucleótidos, o romos, si tienen el mismo número<br />
y están apareados.<br />
Todas las enzimas <strong>de</strong> restricción proce<strong>de</strong>n <strong>de</strong> organismos procariotas y reciben su nombre<br />
<strong>de</strong> la bacteria <strong>de</strong> la que fueron aisladas (p.e., Bam HI, proce<strong>de</strong> <strong>de</strong> Bacillus<br />
amyloliquefaciens, cepa H, <strong>de</strong>scubierta en primer lugar (I), su sitio <strong>de</strong> restricción es<br />
G/GATCC; Eco RI proce<strong>de</strong> <strong>de</strong> Escherichia coli, cepa RY, <strong>de</strong>scubierta en primer lugar (I),<br />
su sitio <strong>de</strong> restricción es A/GATCT; Hind III proce<strong>de</strong> <strong>de</strong> Haemophilus influenzae cepa Rd<br />
<strong>de</strong>scubierta en tercer lugar (III), su sitio <strong>de</strong> restricción es A/AGCTT; etc.). Las enzimas se<br />
clasifican por su frecuencia <strong>de</strong> corte, relacionada con la longitud <strong>de</strong>l sitio <strong>de</strong> restricción; así<br />
hay enzimas con lugares <strong>de</strong> restricción mayores (6 pb) que cortan menos frecuentemente,<br />
enzimas con lugares <strong>de</strong> restricción intermedios (5 pb) que cortan con relativa frecuencia, y<br />
enzimas con lugares <strong>de</strong> restricción menores (4 pb) que cortan con mucha frecuencia.<br />
Para la restricción enzimática se prepara una solución que contine el ADN <strong>de</strong> la muestra y<br />
la enzima en un medio tamponado a<strong>de</strong>cuado a 37C durante 2-8 horas. Una vez finalizada la<br />
restricción, los fragmentos obtenidos <strong>de</strong>l corte enzimático <strong>de</strong>l ADN <strong>de</strong> la muestra se<br />
separan por electroforesis en gel <strong>de</strong> agarosa. Si el genoma es <strong>de</strong> pequeño tamaño y la<br />
enzima dispone <strong>de</strong> escasos lugares <strong>de</strong> restricción, se obtendrán pocos fragmentos, que<br />
podrán visualizarse fácilmente. Sin embargo, si se está sometiendo al ADN total a la acción<br />
enzimática, se obtendrán numerosos fragmentos <strong>de</strong> distintos tamaños como resultado <strong>de</strong> ese<br />
corte que no podrán visualizarse fácilmente al teñir el gel.<br />
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