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Clase II. En tubos de 50 ml, se colocaron 10 ml de DMEM 1% antibiótico-antimicótico con colagenasa Tipo I o II al 0.3%. Los tubos se ajustaron en el Orbital Shaker a 37° C a 250 rpm durante 4 horas, vigilando el avance en la digestión. Al finalizar las 4 hrs, de digestión se centrifugaron a 300 x g durante 12 minutos. Después de la centrifugación con una pipeta Pasteur se absorbió el sobrenadante cuidando el botón celular y fue resuspendido golpeando gentilmente el tubo agregando 5 ml de PBS sin Calcio ni Magnesio con 1% antibiótico-antimicótico. Nuevamente se centrifugó a 300 x g por 12 minutos. Con una pipeta Pasteur desechamos el sobrenadante y agregaremos 5 ml de DMEM 10% SBF 1% antibiótico-antimicótico. Para realizar el conteo celular se utilizó la técnica de azul tripano la cual se lleva a cabo de la siguiente manera: se agregan 10 μl de suspensión celular y 10 μl del colorante en una placa de 96 pozos homogeneizando la mezcla. Se agregan 10 μl de la mezcla a cada uno de los pozos de la cámara de Neubauer. Contando las células viables y no viables (las células no viables se tiñen con el colorante azul). El cálculo de la población celular se obtiene de acuerdo a la siguiente fórmula: (número de células)(Factor de Dilución[2 en este caso]) x (ml de la solución celular) = x104. Al finalizar el procedimiento de extracción las células se sembraron en cajas de cultivo de tipo T (Falcon BD, Biosciences) de acuerdo con el siguiente criterio: de 250 – 500 mil células recuperadas en cajas T25 con 5 ml de medio; de 500 – 1.5 millones de células en cajas T75 con 10 ml de medio; mas de 1.5 millones de 21
células en cajas T175 con 20 ml de medio. Las células se incubaron a 37°C y 5% CO2, cambiando el medio de cultivo cada 2 días. 6.4.2 Pasaje celular de menisco Cuando los cultivos en monocapa llegaron a confluencia después de 7 a 10 días, se cosecharon las células de la siguiente manera: se aspiró el medio con pipeta Pasteur de la caja de cultivo y se agregó tripsina-EDTA y esperamos 5 minutos exactamente mientras se monitorea el desprendimiento de la capa celular. Ya desprendida la monocapa, se colocó en tubos de 50 ml y se agrega 5 ml de PBS/albúmina al 2.5% y se centrífuga a 300 x g por 6 minutos. 6.4.3 Construcción del menisco de bioingeniería. Se sembraron alrededor de 10 millones de células por constructo meniscal, y se utilizaron dos polímeros para generar el sustituto de menisco, el primero que forma el centro del mismo y se constituye de PGA y el segundo, envuelve al primero y se compone de celulosa oxidada. El constructo de PGA se cubrió con la celulosa oxidada y se le dio forma y medida dependiendo de cada caso. 6.5 Procedimiento anestésico. Los sujetos de estudio se indujeron con Xilazina intramuscular a 0.8mg x kg, y se realizó una sedación leve con la infusión intravenosa de 5 mgr x kg de Ketamina. Acto seguido, se colocó a la oveja en decúbito lateral y se realizó la preparación de aproximadamente 20 cm de la región lumbar en donde se quitó la lana, se hizo 22
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células en cajas T175 con 20 ml de medio. Las células se incubaron a 37°C y 5%<br />
CO2, cambiando el medio de cultivo cada 2 días.<br />
6.4.2 Pasaje celular de menisco<br />
Cuando los cultivos en monocapa llegaron a confluencia después de 7 a 10 días,<br />
se cosecharon las células de la siguiente manera: se aspiró el medio con pipeta<br />
Pasteur de la caja de cultivo y se agregó tripsina-EDTA y esperamos 5 minutos<br />
exactamente mientras se monitorea el desprendimiento de la capa celular. Ya<br />
desprendida la monocapa, se colocó en tubos de 50 ml y se agrega 5 ml de<br />
PBS/albúmina al 2.5% y se centrífuga a 300 x g por 6 minutos.<br />
6.4.3 Construcción del menisco de bioingeniería.<br />
Se sembraron alrededor de 10 millones de células por constructo meniscal, y se<br />
utilizaron dos polímeros para generar el sustituto de menisco, el primero que forma<br />
el centro del mismo y se constituye de PGA y el segundo, envuelve al primero y<br />
se compone de celulosa oxidada.<br />
El constructo de PGA se cubrió con la celulosa oxidada y se le dio forma y medida<br />
dependiendo de cada caso.<br />
6.5 Procedimiento anestésico.<br />
Los sujetos de estudio se indujeron con Xilazina intramuscular a 0.8mg x kg, y se<br />
realizó una sedación leve con la infusión intravenosa de 5 mgr x kg de Ketamina.<br />
Acto seguido, se colocó a la oveja en decúbito lateral y se realizó la preparación<br />
de aproximadamente 20 cm de la región lumbar en donde se quitó la lana, se hizo<br />
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