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19.06.2013 Views

Clase II. En tubos de 50 ml, se colocaron 10 ml de DMEM 1% antibiótico-antimicótico con colagenasa Tipo I o II al 0.3%. Los tubos se ajustaron en el Orbital Shaker a 37° C a 250 rpm durante 4 horas, vigilando el avance en la digestión. Al finalizar las 4 hrs, de digestión se centrifugaron a 300 x g durante 12 minutos. Después de la centrifugación con una pipeta Pasteur se absorbió el sobrenadante cuidando el botón celular y fue resuspendido golpeando gentilmente el tubo agregando 5 ml de PBS sin Calcio ni Magnesio con 1% antibiótico-antimicótico. Nuevamente se centrifugó a 300 x g por 12 minutos. Con una pipeta Pasteur desechamos el sobrenadante y agregaremos 5 ml de DMEM 10% SBF 1% antibiótico-antimicótico. Para realizar el conteo celular se utilizó la técnica de azul tripano la cual se lleva a cabo de la siguiente manera: se agregan 10 μl de suspensión celular y 10 μl del colorante en una placa de 96 pozos homogeneizando la mezcla. Se agregan 10 μl de la mezcla a cada uno de los pozos de la cámara de Neubauer. Contando las células viables y no viables (las células no viables se tiñen con el colorante azul). El cálculo de la población celular se obtiene de acuerdo a la siguiente fórmula: (número de células)(Factor de Dilución[2 en este caso]) x (ml de la solución celular) = x104. Al finalizar el procedimiento de extracción las células se sembraron en cajas de cultivo de tipo T (Falcon BD, Biosciences) de acuerdo con el siguiente criterio: de 250 – 500 mil células recuperadas en cajas T25 con 5 ml de medio; de 500 – 1.5 millones de células en cajas T75 con 10 ml de medio; mas de 1.5 millones de 21

células en cajas T175 con 20 ml de medio. Las células se incubaron a 37°C y 5% CO2, cambiando el medio de cultivo cada 2 días. 6.4.2 Pasaje celular de menisco Cuando los cultivos en monocapa llegaron a confluencia después de 7 a 10 días, se cosecharon las células de la siguiente manera: se aspiró el medio con pipeta Pasteur de la caja de cultivo y se agregó tripsina-EDTA y esperamos 5 minutos exactamente mientras se monitorea el desprendimiento de la capa celular. Ya desprendida la monocapa, se colocó en tubos de 50 ml y se agrega 5 ml de PBS/albúmina al 2.5% y se centrífuga a 300 x g por 6 minutos. 6.4.3 Construcción del menisco de bioingeniería. Se sembraron alrededor de 10 millones de células por constructo meniscal, y se utilizaron dos polímeros para generar el sustituto de menisco, el primero que forma el centro del mismo y se constituye de PGA y el segundo, envuelve al primero y se compone de celulosa oxidada. El constructo de PGA se cubrió con la celulosa oxidada y se le dio forma y medida dependiendo de cada caso. 6.5 Procedimiento anestésico. Los sujetos de estudio se indujeron con Xilazina intramuscular a 0.8mg x kg, y se realizó una sedación leve con la infusión intravenosa de 5 mgr x kg de Ketamina. Acto seguido, se colocó a la oveja en decúbito lateral y se realizó la preparación de aproximadamente 20 cm de la región lumbar en donde se quitó la lana, se hizo 22

células en cajas T175 con 20 ml de medio. Las células se incubaron a 37°C y 5%<br />

CO2, cambiando el medio de cultivo cada 2 días.<br />

6.4.2 Pasaje celular de menisco<br />

Cuando los cultivos en monocapa llegaron a confluencia después de 7 a 10 días,<br />

se cosecharon las células de la siguiente manera: se aspiró el medio con pipeta<br />

Pasteur de la caja de cultivo y se agregó tripsina-EDTA y esperamos 5 minutos<br />

exactamente mientras se monitorea el desprendimiento de la capa celular. Ya<br />

desprendida la monocapa, se colocó en tubos de 50 ml y se agrega 5 ml de<br />

PBS/albúmina al 2.5% y se centrífuga a 300 x g por 6 minutos.<br />

6.4.3 Construcción del menisco de bioingeniería.<br />

Se sembraron alrededor de 10 millones de células por constructo meniscal, y se<br />

utilizaron dos polímeros para generar el sustituto de menisco, el primero que forma<br />

el centro del mismo y se constituye de PGA y el segundo, envuelve al primero y<br />

se compone de celulosa oxidada.<br />

El constructo de PGA se cubrió con la celulosa oxidada y se le dio forma y medida<br />

dependiendo de cada caso.<br />

6.5 Procedimiento anestésico.<br />

Los sujetos de estudio se indujeron con Xilazina intramuscular a 0.8mg x kg, y se<br />

realizó una sedación leve con la infusión intravenosa de 5 mgr x kg de Ketamina.<br />

Acto seguido, se colocó a la oveja en decúbito lateral y se realizó la preparación<br />

de aproximadamente 20 cm de la región lumbar en donde se quitó la lana, se hizo<br />

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