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APC Resistance - Stago BNL

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3015121-008 08/2007<br />

<strong>APC</strong> <strong>Resistance</strong><br />

GB<br />

DE<br />

REF 5344510 <strong>APC</strong> <strong>Resistance</strong> Kit<br />

REF 5344515 <strong>APC</strong> <strong>Resistance</strong> Kit<br />

REF 5344512 <strong>APC</strong> Control Kit 2 x 1 mL<br />

Symbols key / Symbolschlüssel / interpretazione dei simboli / explicación de símbolos<br />

manufactured by / Hergestellt von / prodotto da / fabricado por<br />

expiry date / Verfallsdatum / data di scadenza / fecha de caducidad<br />

storage temperature / Lagertemperatur / temperatura di conservazione /<br />

temperatura de conservación<br />

consult instruction for use / Gebrauchsanweisung beachten / / consultare le<br />

istruzioni per l´uso / consulte las instrucciones de uso<br />

CE-mark / CE-Zeichen / marchio CE / marca de CE<br />

IT<br />

ES<br />

determinations/ Bestimmungen / determinazioni / determinaciones<br />

AQUA<br />

DIL<br />

IVD<br />

LOT<br />

REF<br />

CONT<br />

distilled water / destilliertes Wasser / acqua distillata / agua destilada<br />

dilute or disolve in / verdünnen oder lösen in / diluire o dissolvere in / diluir<br />

o disolver<br />

in vitro diagnostic use / in vitro Diagnostikum / diagnostico in vitro /<br />

diagnóstico en vitro<br />

lot / Charge / lotto / lote<br />

catalogue number / Katalognummer / numero di catalogo / numéro de<br />

catálogo<br />

control / Kontrolle / controllo / control<br />

Technoclone GmbH<br />

Brunner Str. 59/5<br />

1230 Vienna, Austria<br />

www.technoclone.com


<strong>APC</strong> <strong>Resistance</strong> Kit<br />

PRODUCT DESCRIPTION<br />

INTENDEND USE<br />

<strong>APC</strong> <strong>Resistance</strong> Kit is a plasma based functional assay for the<br />

determination of resistance to activated protein C caused by the factor V<br />

Leiden mutation (FV:Q 506 ). Activated protein C (<strong>APC</strong>) resistance is the most<br />

frequent hereditary defect associated with deep vein thrombosis. Over 95%<br />

of the <strong>APC</strong> resistance phenotype can be explained by the Factor V Leiden<br />

mutation [1,2,3,4,5,6]. This defect is caused by point mutation in the factor<br />

V gene resulting in a replacement of the amino acid Arg 506 by a Gln<br />

residue [2,3,7]. The heterozygous (het) defect is associated with a 5 to 10<br />

fold, the homozygous (hom) defect with a 50 to 100 fold increased<br />

thrombosis risk [5,8,9]. There are two possibilities of detecting factor V (FV)<br />

Leiden. Plasma based functional assays identifying the phenotype<br />

expression of the defect [1] or genotype determination which can be done<br />

by PCR technology [10].<br />

TEST PRINCIPLE<br />

<strong>APC</strong> <strong>Resistance</strong> Kit is a plasma based functional clotting assay and differs<br />

from other functional <strong>APC</strong> resistance tests by acting specifically on the<br />

prothrombinase complex level. It is based on a FV-dependent prothrombin<br />

activator isolated from snake venom. Robustness and specificity of the<br />

assay is enhanced by elimination of possible disturbing influences by<br />

factors upstream the coagulation cascade and independency from calcium.<br />

Interference from UFH, LMWH and Pentasaccharide in the blood sample is<br />

precluded by a heparin inhibitor added to reagents 1 and 2. Sample plasma<br />

is pre-diluted with reagent 4 (dilution plasma) and incubated at 37°C with<br />

FV activator from snake venom (RVV-V from Daboia russelli). Coagulation<br />

is triggered by the addition of a FV dependent prothrombin activator from<br />

snake venom from Notechis scutatus scutatus in the absence of calcium.<br />

The clotting times are recorded and the ratios (clotting time in the presence<br />

of <strong>APC</strong> / clotting time in the absence of <strong>APC</strong>) are calculated.<br />

COMPOSITION<br />

3 x 2<br />

3 x 2<br />

3 x 4<br />

3 x 2<br />

1 x 1<br />

1 x 1<br />

mL<br />

1 x 2<br />

1 x 2<br />

1 x 4<br />

1 x 2<br />

1 x 1<br />

1 x 1<br />

reagent other data<br />

R1 <strong>APC</strong> / RVV-V (+<strong>APC</strong>)<br />

R2 RVV-V (-<strong>APC</strong>)<br />

R3 PTA Reagent<br />

R4 Dilution Plasma<br />

C1 FV-L Negative Control<br />

C2 FV-L Heterozygous<br />

Control<br />

<strong>APC</strong>, RVV-V, Polybren,<br />

Hepes, BSA, lyo<br />

RVV-V, Polybren, Hepes,<br />

BSA, lyo<br />

Prothrombin Activator, EDTA,<br />

Hepes, BSA, lyo<br />

lyophilized Human Plasma,<br />

processed<br />

lyophilized Human Plasma<br />

lyophilized Human Plasma<br />

The <strong>APC</strong> Control Kit REF 5344512 contains one of C1 FV-L Negative<br />

Control and C2 FV-L Heterozygous Control.<br />

MATERIAL REQUIRED (not supplied with the kit)<br />

Distilled water<br />

- Calibrated pipettes<br />

- Automated or semi-automated coagulation instruments which employ<br />

mechanical or optical detection methods<br />

Note: When using automated or semi-automated coagulation analyzers<br />

refer always to manufacturer’s operator manual or ask for a detailed<br />

adaptation protocol.<br />

WARNING AND PRECAUTIONS<br />

- IVD for in vitro diagnostic use.<br />

- All blood and plasma samples and products have to be regarded as<br />

potentially infectious and handled with appropriate care and in<br />

compliance with the biosafety regulations in force and must be disposed<br />

of in the same way as hospital waste.<br />

- The reagents R1, R4, C1 and C2 contain products derived from human<br />

blood and the samples have to be regarded as potentially infectious and<br />

handled with appropriate care and in compliance with the biosafety<br />

regulations in force and must be disposed of in the same way as hospital<br />

waste. The reagents prepared from human blood and each single plasma<br />

used is HbSAg, HIV 1/2 Ab and HCV Ab negative.<br />

STABILITY AND STORAGE<br />

The test kit may be used up to the expiry date given on the label when<br />

stored unopened at 2…8 °C.<br />

Stability of the reagents after reconstitution:<br />

Stability +15...25°C +2...8°C -20°C<br />

R1 <strong>APC</strong> / RVV-V (+<strong>APC</strong>), lyo<br />

R2 RVV-V (-<strong>APC</strong>), lyo<br />

R3 PTA Reagent, lyo<br />

R4 Dilution Plasma<br />

C1 FV-L Negative Control<br />

C2 FV-L Heterozygous Control<br />

24 hours<br />

24 hours<br />

24 hours<br />

24 hours<br />

8 hours<br />

8 hours<br />

14 days<br />

14 days<br />

14 days<br />

14 days<br />

8 days<br />

8 days<br />

6 months<br />

6 months<br />

6 months<br />

6 months<br />

6 months<br />

6 months<br />

Frozen reagents should be thawed at 37°C and gently mixed before use.<br />

Freeze only once.<br />

TEST PROCEDURE<br />

BLOOD COLLECTION AND PREPARATION OF PLASMA<br />

SAMPLES<br />

The patient should be at rest for 10 min prior sampling. Collect venous<br />

blood carefully in either 104 mM or 129 mM sodium citrate (volume ratio<br />

9+1). Mix gently blood and anticoagulant directly after sampling, avoid foam<br />

formation. Centrifuge immediately at no less than 2000x g for at least 20<br />

min at room temperature. Take care to avoid contaminations from the<br />

platelet layer into plasma when the plasma is separated from the cells. As a<br />

general rule hemolytic plasma samples should not be used. For storage<br />

freeze undiluted plasma rapidly at -70°C in aliquots. Freeze only once.<br />

Avoid repeated freezing and thawing cycles. Thawing should be done<br />

rapidly (within 5 min) in a water bath at 37°C. For more information see<br />

NCCLS document H21-A2 [11].<br />

Stability of undiluted samples (plasma):<br />

-80 ° C -20 ° C + 2...8°C + 15...25 °C<br />

at least 1 year 2 months 24 hours 4 hours<br />

PREPARATION OF REAGENT<br />

The lyophilized reagents are dissolved in the volume of distilled water<br />

indicated on the vial.<br />

Incubate reconstituted solutions R1-R4 and reconstituted C1 and C2<br />

controls in closed vials for 30 min at room temperature and swirl gently<br />

before use.<br />

PERFORMANCE OF THE TEST<br />

Prepare reagents as described above. Thaw frozen samples as described<br />

above ensuring negligible loss of activity of labile coagulation factors and<br />

absence of cryoprecipitate. Invert thawed sample for homogenization.<br />

Determine +<strong>APC</strong> clotting time (clotting time in the presence of Activated<br />

Protein C), -<strong>APC</strong> clotting time (clotting time in the absence of Activated<br />

Protein C) and calculate the ratio according to the following scheme:<br />

+ <strong>APC</strong> - <strong>APC</strong><br />

Sample or control Plasma 30 µL 30 µL<br />

R4 Dilution Plasma 20 µL 20µL<br />

mix prior to use mix prior to use<br />

R1 <strong>APC</strong>/RVV-V<br />

Reagent<br />

(+ <strong>APC</strong>)<br />

50 µL<br />

R2 RVV-V (-<strong>APC</strong>) Reagent - 50 µL<br />

Incubation 3 min, 37°C 3 min, 37°C<br />

R3 PTA Reagent 50 µL 50 µL<br />

determine determine<br />

clotting time clotting time<br />

Ratio<br />

calculation<br />

GB<br />

+ <strong>APC</strong> clotting time<br />

Ratio = -------------------------------<br />

- <strong>APC</strong> clotting time


ANALYSES RESULTS<br />

INTERPRETATION OF THE RESULTS<br />

Differentiation of homozygous, heterozygous and negative samples is<br />

based on the typical ratio ranges measured with genotyped patient plasma<br />

samples<br />

Typical ratio ranges for PCR-genotyped patient plasmas on different<br />

devices are shown in the table below.<br />

KC-4/-10 A Micro<br />

Genotyp FV:Q 506 n Ratio Range (min/max)<br />

negative 99 > 3.0<br />

heterozygous 166 1.3 – 1.9<br />

homozygous 25 0.9 – 1.1<br />

BCS ® (Behring Coagulation System)<br />

Genotyp FV:Q 506 n Ratio Range (min/max)<br />

negative 143 > 3.0<br />

heterozygous 170 1.4 – 2.2<br />

homozygous 27 0.9 – 1.1<br />

CA-1500 / CA-7000<br />

Genotyp FV:Q 506 N Ratio Range (min/max)<br />

negative 235 > 3.0<br />

heterozygous 56 1.5 – 1.8<br />

homozygous 2 1.0 – 1.1<br />

ACL 9000<br />

Genotyp FV:Q 506 n Ratio Range (min/max)<br />

negative 127 > 3.0<br />

heterozygous 119 1.4 – 2.1<br />

homozygous 24 0.9 – 1.2<br />

STA ® C<br />

Genotyp FV:Q 506 n Ratio Range (min/max)<br />

negative 134 > 2.9<br />

heterozygous 83 1.3 – 1.8<br />

homozygous 27 0.9 – 1.1<br />

AMAX CS-190<br />

Genotyp FV:Q 506 n Ratio Range (min/max)<br />

negative 74 > 3.0<br />

heterozygous 62 1.2 – 2.3<br />

homozygous 10 0.9 – 1.1<br />

It is recommended to determine laboratory specific ratio ranges with<br />

geotyped patient samples.<br />

Attention: Factors mentioned under “Limitations and Interferences” can<br />

change the specific ratio ranges, so that differenciation of samples become<br />

impossible.<br />

QUALITY CONTROLS (C1 and C2)<br />

Negative control or wild-type (neg) shows normal response to <strong>APC</strong> whereas<br />

heterozygous control (het) shows response to the presence of the<br />

heterozygous type of FV:Q 506 mutation. A control run should be made with<br />

each test series. If values outside the certified range (ratio) are obtained, a<br />

complete check of reagents should be made and the analysis should be<br />

repeated. If the problem persists, a complete instrument check should be<br />

made and the analysis should be repeated.<br />

Device: C1 FV-L-<br />

Negative<br />

Control<br />

C2 FV-L<br />

Heterozygous<br />

Control<br />

KC-4/-10 A Micro > 5.1 1.4 – 1.8<br />

BCS ® (Behring<br />

System)<br />

Coagulation > 4.0 1.4 – 2.1<br />

CA-1500 / CA-7000 > 4.0 1.6 – 2.0<br />

ACL 9000 > 4.0 1.3 – 2.4<br />

AMAX CS-190 > 2.4 1.3 – 2.0<br />

STA ® -C > 3.1 1.4 – 1.7<br />

If values outside these ranges are obtained the test results are not valid and<br />

shall not be used for diagnostic purposes. When controls are used in<br />

combination with another suitable test or instrument expected ratio values<br />

may be different and have to be determined locally under appropriate<br />

conditions.<br />

SPECIFICITY AND SENSITIVITY<br />

With the samples tested so far <strong>APC</strong> <strong>Resistance</strong> Kit provided 100%<br />

sensitivity and 100% specificity for carriers of heterozygous and<br />

homozygous FV:Q 506 mutation as determined by BCS ® (n=340), KC-4/-10<br />

A micro (n=290), CA-1500/CA-7000 (n=293), ACL 9000 (n=270), STA ®<br />

C (n=244) and AMAX CS-190 (n=146). Due to the functional detection<br />

technique the assay is supposed to detect other FV mutations leading to<br />

<strong>APC</strong>-R phenotype as well. However their prevalence is very low compared<br />

to the FV Leiden mutation.<br />

LIMITATION AND INTERFERENCES<br />

No significant differences are observed when fresh or frozen plasma<br />

samples are used. It does neither matter whether buffered or un-buffered<br />

citrate plasma is used.<br />

There is no significant influence on ratio or test sensitivity in case of<br />

Fibrinogen, Prothrombin, FVIII, FX, ATIII, Protein C, or Protein S deficiency<br />

(up to 100%) or excess of Fibrinogen, FVIII, ATIII, or TFPI (up to 5 times<br />

normal value). Mechanical measurements are neither influenced by the<br />

hemolytic blood samples nor by samples containing platelet residues. In<br />

contrast, optical methods can be influenced by the use of hemolytic or<br />

lipemic plasmas. Lupus anticoagulant antibodies did not influence the test.<br />

But a high Factor V deficiency (


<strong>APC</strong> <strong>Resistance</strong> Kit<br />

PRODUKTBESCHREIBUNG<br />

ANWENDUNG<br />

<strong>APC</strong> <strong>Resistance</strong> Kit ist ein funktioneller Gerinnungstest zur Bestimmung<br />

einer auf der FV-Leiden Mutation (FV:Q 506 ) basierenden Resistenz gegen<br />

aktiviertes Protein C (<strong>APC</strong>-R). Häufigste Ursache einer erblich bedingten<br />

tiefen Beinvenenthrombose ist eine Resistenz gegen aktiviertes Protein C<br />

(<strong>APC</strong>). In über 95% der Fälle manifestiert sich diese phänotypisch durch die<br />

FV Leiden (FVL) Mutation [1,2,3,4,5,6]. FVL basiert auf einer Punktmutation<br />

im FV-Gen, einem Austausch der Aminosäure Arginin 506 durch Glutamin<br />

[2,3,7]. Ein heterozygoter Genotyp (het) ist mit einer 5- bis 10-fachen und<br />

ein homozygoter Genotyp (hom) mit einer 50- bis 100-fachen Erhöhung des<br />

Thromboserisikos verbunden [5,8,9]. Der Nachweis des FVL-Phänotyps<br />

erfolgt im Blutplasma mittels funktioneller Gerinnungstests [1]; die Genotypisierung<br />

mit Hilfe PCR-basierter Methoden [10].<br />

TESTPRINZIP<br />

Im Unterschied zu anderen am Markt erhältlichen funktionellen<br />

Gerinnungstesten erfolgt beim <strong>APC</strong> <strong>Resistance</strong> Kit die Aktivierung auf der<br />

Ebene des Prothrombinasekomplexes durch einen FVa abhängigen<br />

Prothrombinaktivator, isoliert aus dem Gift der australischen Tigerotter<br />

(Notechis scutatus). Dies eliminiert potenzielle Störeinflüsse durch<br />

vorgelagerte Faktoren der Gerinnungskaskade. Die geringe Störanfälligkeit<br />

und Spezifität des Tests wird des Weiteren unterstützt durch die<br />

Unabhängigkeit von Kalziumionen. Einflüsse von unfraktioniertem Heparin<br />

(UFH), niedermolekularem Heparin (LMWH) oder Pentasaccharid in der<br />

Blutprobe werden durch Polybrenzusatz in Reagenz 1 und 2 neutralisiert.<br />

Das Probenplasma wird mit Reagenz 4 (Dilution Plasma) verdünnt und in<br />

Gegenwart oder Abwesenheit von <strong>APC</strong> bei 37°C mit einem Faktor V<br />

Aktivator (RVV-V), isoliert aus dem Gift der Kettenviper (Daboia russelli),<br />

inkubiert. Die Gerinnung wird in Abwesenheit von Kalzium durch Zusatz des<br />

FVa abhängigen Prothrombinaktivators ausgelöst. Die Gerinnungszeiten<br />

werden bestimmt und die Ratio (Gerinnungszeit in Gegenwart von <strong>APC</strong> /<br />

Gerinnungszeit in Abwesenheit von <strong>APC</strong>) berechnet.<br />

ZUSAMMENSETZUNG<br />

3 x 2<br />

3 x 2<br />

3 x 4<br />

3 x 2<br />

1 x 1<br />

1 x 1<br />

mL<br />

1 x 2<br />

1 x 2<br />

1 x 4<br />

1 x 2<br />

1 x 1<br />

1 x 1<br />

Reagenz Sonstige Angaben<br />

R1 <strong>APC</strong> / RVV-V (+<strong>APC</strong>)<br />

R2 RVV-V (-<strong>APC</strong>)<br />

R3 PTA Reagenz<br />

R4 Verdünnungsplasma<br />

C1 FV-L Negative<br />

Kontrolle<br />

C2 FV-L Heterozygote<br />

Kontrolle<br />

<strong>APC</strong>, RVV-V, Polybren,<br />

Hepes, BSA, lyo<br />

RVV-V, Polybren, Hepes,<br />

BSA, lyo<br />

Prothrombin Activator, EDTA,<br />

Hepes, BSA, lyo<br />

lyophilisiertes Human Plasma,<br />

behandelt<br />

lyophilisiertes Human Plasma<br />

lyophilisiertes Human Plasma<br />

Der <strong>APC</strong> Control Kit REF 5344512 enthält jeweils eine C1 FV-L Negativ<br />

Kontrolle und eine C2 FV-L Heterozygote Kontrolle.<br />

BENÖTIGTES MATERIAL (nicht im Testkit enthalten)<br />

- Destilliertes Wasser<br />

- Kalibrierte Pipetten<br />

- Voll- oder halbautomatisches Koagulometer, mit optischer oder<br />

mechanischer Gerinnungserkennung.<br />

Hinweis: Bei Verwendung automatisierter oder halbautomatisierter<br />

Gerinnungsgeräte beachten Sie bitte die Bedienungsanleitung oder<br />

fragen Sie nach detaillierten Adaptionsprotokollen.<br />

WARNHINWEISE UND VORSICHTSMASSNAHMEN<br />

- Nur zur Anwendung als in vitro Diagnostikum<br />

- Alle Blut- bzw. Plasmaprodukte und Proben müssen als potentiell<br />

infektiös angesehen werden. Sie sind mit der notwendigen Sorgfalt und<br />

entsprechend den Sicherheitsvorschriften zu behandeln und wie<br />

Krankenhausmüll zu entsorgen.<br />

- Die Reagenzien R1, R4, C1 und C2 sind Blut- bzw. Plasmaprodukte und<br />

müssen ebenso wie die Proben als potentiell infektiös angesehen<br />

werden. Sie sind mit der notwendigen Sorgfalt und entsprechend den<br />

Sicherheitsvorschriften zu behandeln und wie Krankenhausmüll zu<br />

entsorgen. Die Reagenzien R1, R4, C1 und C2, hergestellt aus<br />

humanem Blut, und jedes hierzu verwendete Einzelplasma sind HBSAg,<br />

HIV Ak und HCV Ak negativ.<br />

LAGERUNG UND HALTBARKEIT<br />

Der Testkit ist ungeöffnet bei 2-8°C bis zu dem auf dem Etikett<br />

aufgedruckten Datum verwendbar. Stabilität der Reagenzien nach<br />

Rekonstitution:<br />

Stabilität +15...25°C +2...8°C -20°C<br />

R1 <strong>APC</strong> / RVV-V (+<strong>APC</strong>), lyo<br />

R2 RVV-V (-<strong>APC</strong>), lyo<br />

R3 PTA Reagent, lyo<br />

R4 Verdünnungsplasma<br />

C1 FV-L Negativ Kontrolle<br />

C2 FV-L Heterozygote Kontrolle<br />

24 Stunden<br />

24 Stunden<br />

24 Stunden<br />

24 Stunden<br />

8 Stunden<br />

8 Stunden<br />

14 Tage<br />

14 Tage<br />

14 Tage<br />

14 Tage<br />

8 Tage<br />

8 Tage<br />

6 Monate<br />

6 Monate<br />

6 Monate<br />

6 Monate<br />

6 Monate<br />

6 Monate<br />

Tiefgefrorene Reagenzien sollten bei 37°C aufgetaut und vor Gebrauch<br />

schonend gemischt werden. Nur einmal einfrieren..<br />

TESTDURCHFÜHRUNG<br />

PLASMAGEWINNUNG UND VORBEREITUNG DER<br />

PLASMAPROBE<br />

Der Patient sollte vor der Probennahme mindestens 10 Minuten ruhen. Zur<br />

Plasmagewinnung 1 Teil Natriumcitrat (104 mM) mit 9 Teilen Venenblut<br />

sorgfältig unter Vermeidung von Schaumbildung mischen. Sofort 20<br />

Minuten bei Raumtemperatur mit mindestens 2000 g zentrifugieren. Beim<br />

Abheben des Plasmas Kontamination durch Thrombozyten vermeiden. Es<br />

sollten generell keine hämolytischen Plasmaproben verwendet werden. Für<br />

die Lagerung das aliquotierte, unverdünnte Plasma rasch bei -70°C<br />

einfrieren. Nur einmal einfrieren. Wiederholte Auftau- und Gefrierzyklen sind<br />

zu vermeiden. Das Auftauen sollte rasch (innerhalb 5 Minuten) in einem<br />

37°C Wasserbad erfolgen. Weitere Informationen entnehmen Sie dem<br />

NCCLS Dokument H21 A2 [11].<br />

Haltbarkeit von unverdünnten Proben:<br />

-80 ° C -20 ° C + 2...8°C + 15...25 °C<br />

Mind. 1 Jahr 2 Monate 24 Stunden 4 Stunden<br />

VORBEREITUNG DER REAGENZIEN<br />

Die lyophillisierten Reagenzien werden mit destillierten Wasser im am<br />

Etikett angegebenen Volumen gelöst. Die aufgelösten Reagenzien R1-R4<br />

sowie die Kontrollen C1 und C2 werden 30 Minuten bei Raumtemperatur<br />

inkubiert und vor Gebrauch vorsichtig geschüttelt.<br />

TESTDURCHFÜHRUNG<br />

Bereiten Sie Reagenzien und Probenmaterial wie oben beschrieben vor.<br />

Tauen Sie zur Vermeidung von Aktivitätsverlusten labiler<br />

Gerinnungsfaktoren und Kryopräzipitaten gefrorene Proben rasch bei 37°C<br />

in standardisierter Art und Weise auf. Mischen Sie sie vorsichtig unter<br />

Vermeidung von Schaumbildung. Bestimmen Sie die Gerinnungszeiten in<br />

Anwesenheit (+<strong>APC</strong>) und Abwesenheit (-<strong>APC</strong>) von aktiviertem Protein C<br />

und berechnen Sie anschliessend deren Verhältnis (Ratio). Verfahren Sie<br />

dabei nach folgendem Schema:<br />

+ <strong>APC</strong> - <strong>APC</strong><br />

Probe oder Kontrolle 30 µL 30 µL<br />

R4 Verdünnungsplasma 20 µL 20µL<br />

mischen mischen<br />

R1 <strong>APC</strong>/RVV-V<br />

Reagenz<br />

(+ <strong>APC</strong>)<br />

50 µL<br />

R2 RVV-V (-<strong>APC</strong>) Reagenz - 50 µL<br />

Inkubation 3 min, 37°C 3 min, 37°C<br />

R3 PTA Reagenz 50 µL 50 µL<br />

Gerinnungszeit Gerinnungszeit<br />

bestimmen bestimmen<br />

Ratio<br />

Berechnung<br />

DE<br />

+ <strong>APC</strong> Gerinnungszeit<br />

Ratio = -------------------------------<br />

- <strong>APC</strong> Gerinnungszeit


ANALYSENERGEBNISSE<br />

INTERPRETATION DER ERGEBNISSE<br />

Die Unterscheidung bezüglich FVL von homozygoten, heterozygoten und<br />

negativen Proben basiert auf typischen Bereichen für die Ratio, wie sie für<br />

Plasmaproben genotypisierter Patienten bestimmt werden (siehe untenstehende<br />

Tabellen<br />

Typische Ratio Bereiche für Plasmaproben genotypisierter Patienten auf<br />

verschiedenen Gerinnungsautomaten:<br />

KC-4/-10 A Micro<br />

Genotyp FV:Q 506 n Ratio Bereich (min/max)<br />

negativ 99 > 3.0<br />

heterozygot 166 1.3 – 1.9<br />

homozygot 25 0.9 – 1.1<br />

BCS ® (Behring Coagulation System)<br />

Genotyp FV:Q 506 n Ratio Bereich (min/max)<br />

negativ 143 > 3.0<br />

heterozygot 170 1.4 – 2.2<br />

homozygot 27 0.9 – 1.1<br />

CA-1500 / CA-7000<br />

Genotyp FV:Q 506 n Ratio Bereich (min/max)<br />

negativ 235 > 3.0<br />

heterozygot 56 1.5 – 1.8<br />

homozygot 2 1.0 – 1.1<br />

ACL 9000<br />

Genotyp FV:Q 506 n Ratio Bereich (min/max)<br />

negativ 127 > 3.0<br />

heterozygot 119 1.4 – 2.1<br />

homozygot 24 0.9 – 1.2<br />

STA ® C<br />

Genotyp FV:Q 506 n Ratio Bereich (min/max)<br />

negativ 134 > 2.9<br />

heterozygot 83 1.3 – 1.8<br />

homozygot 27 0.9 – 1.1<br />

AMAX CS-190<br />

Genotyp FV:Q 506 n Ratio Bereich (min/max)<br />

negativ 74 > 3.0<br />

heterozygot 62 1.2 – 2.3<br />

homozygot 10 0.9 – 1.1<br />

Es wird empfohlen mit genotypisierten Plasmen die Referenzbereiche und<br />

Cut-offs für jedes Labor und Koagulometer individuell zu ermitteln.<br />

Weiters ist zu beachten, dass verschiedene Störfaktoren (siehe<br />

„Einschränkungen der Testdurchführung“) bewirken, dass Ratios erhalten<br />

werden, die nicht sicher einem Genotyp zugeordnet werden können.<br />

QUALITÄTSKONTROLLEN (C1 und C2)<br />

Die Normalkontrolle (C1, FV-L Negative Kontrolle) repräsentiert den<br />

normalen Phänotyp, während die pathologische Kontrolle (C2, FV-L<br />

Heterozygote Kontrolle) den positiven Phänotyp für FV-Leiden<br />

repräsentiert. Die Kontrollen sollten in jeder Testserie mitgeführt werden.<br />

Falls die ermittelten Werte ausserhalb der für die Kontrollen zertifizierten<br />

Bereiche (Ratios) liegen, ist eine komplette Überprüfung der verwendeten<br />

Reagenzien durchzuführen und die Analyse sollte wiederholt werden.<br />

Besteht das Problem weiter, ist eine Überprüfung des verwendeten<br />

Gerinnungsgerätes notwendig. Die Analyse ist zu wiederholen.<br />

Gerät: C1 FV-L-<br />

Negative<br />

Kontrolle<br />

C2 FV-L<br />

Heterozygote<br />

Kontrolle<br />

KC-4/-10 A Micro > 5,1 1,4 – 1,8<br />

BCS ® (Behring<br />

System)<br />

Coagulation > 4,0 1,4 – 2,1<br />

CA-540 > 5,4 1,5 – 1,9<br />

CA-1500 > 4,1 1,6 – 2,3<br />

CA-7000 > 2,8 1,4 – 1,6<br />

ACL 9000 > 4,0 1,3 – 2,4<br />

AMAX CS-190 > 2,4 1,3 – 2,0<br />

STA ® -C > 3,1 1,4 – 1,7<br />

Sollten Ergebnisse erhalten werden, welche außerhalb der angegebenen<br />

Bereiche liegen, so sind die Probenergebnisse ungültig und dürfen nicht für<br />

diagnostische Befunde verwendet werden.<br />

Werden die Kontrollen in Kombination mit einem anderen <strong>APC</strong> <strong>Resistance</strong><br />

Testsystem oder anderen Koagulometern verwendet, so können andere<br />

Ratios erhalten werden. In diesem Fall müssen die Bereiche unter<br />

geeigneten Bedingungen im Labor ermittelt werden.<br />

SPEZIFITÄT UND SENSITIVITÄT<br />

Mit den bisher getesteten genotypisierten Patientenproben zeigt der <strong>APC</strong><br />

<strong>Resistance</strong> Kit eine 100%-ige Sensitivität und Spezifität für die Detektion<br />

heterozygoter und homozygoter Träger der FVL-Mutation. Die<br />

Bestimmungen wurden mit folgenden Geräten durchgeführt: BCS ® (n=340),<br />

KC-4/-10 A micro (n=290), CA-1500/CA-7000 (n=293), ACL 9000<br />

(n=270), STA ® C (n=244) und AMAX CS-190 (n=146). Aufgrund des<br />

funktionalen Nachweisprinzips sollte der Test neben der FV Leiden<br />

Mutation auch andere Störungen einer FV-basierten phänotypischen <strong>APC</strong>-<br />

R nachweisen können. Die Prävalenz ist verglichen mit der FVL-Mutation<br />

jedoch sehr gering.<br />

EINSCHRÄNKUNGEN DER TESTDURCHFÜHRUNG<br />

Für das Ergebnis macht es keinen signifikanten Unterschied, ob mit<br />

frischen oder eingefrorenen und wieder aufgetauten Proben gearbeitet wird.<br />

Auch die Verwendung von gepuffertem vs. ungepuffertem Zitratplasma hat<br />

keinen störenden Einfluss auf die Messergebnisse.<br />

Ein bis zu 100%-iger Mangel der Faktoren Fibrinogen, Prothrombin, FVIII,<br />

FX, ATIII, Protein C und Protein S, sowie ein Überschuss bis zum 5-fachen<br />

der Normalwerte von Fibrinogen, FVIII, ATIII und TFPI hat in<br />

experimentellen Untersuchungen keinen Einfluss auf die Ratio oder die<br />

Sensitivität des Testes gezeigt. Weder hämolytische Proben noch<br />

Kontamination durch Thrombozyten stören mechanische Messmethoden.<br />

Optische Messmethoden können hingegen durch hämolytische oder<br />

lipämische Plasmen beeinflusst werden. LA Antikörper haben keine Störung<br />

des Tests ergeben. Ein schwerer Mangel an FV (


<strong>APC</strong> <strong>Resistance</strong> Kit<br />

DESCRIZIONE DEL PRODOTTO<br />

APPLICAZIONE<br />

<strong>APC</strong> <strong>Resistance</strong> Kit è un test per la determinazione nel plasma della<br />

resistenza alla Proteina C attivata, causata dalla mutazione del fattore<br />

V:Q506 La resistenza alla Proteina C attivata (<strong>APC</strong>) si riferisce alla più<br />

frequente causa ereditaria che predispone alla trombosi venosa profonda. Il<br />

fenotipo <strong>APC</strong> resistente è, in oltre 95% dei casi, dovuto ad una mutazione<br />

del gene del fattore V Leiden [1,2,3,4,5,6], che comporta la sostituzione<br />

dell’Arginina con la Glutamina nella posizione 506 della proteina fattore V<br />

[2,3,7]. I soggetti eterozigoti hanno un rischio di 5-10 volte superiore di<br />

sviluppare una trombosi venosa, mentre gli omozigoti hanno un rischio di<br />

50-100 volte [5,8,9].<br />

La rilevazione del fattore V Leiden viene effettuata con test funzionali nel<br />

plasma che indentificano il fenotipo della sindrome di Leiden [1] o con<br />

determinazioni del genotipo mediante tecniche di amplificazione genetica<br />

(PCR) [10].<br />

PRINCIPIO DEL TEST<br />

<strong>APC</strong> Resitance Kit è un test funzionale di coagulazione nel plasma e si<br />

differenzia da altri test funzionali perché agisce specificamente a livello del<br />

complesso protrombinase. Il test si basa su un attivatore della protrombina,<br />

dipendente dal fattore V, isolato da veleno di serpente (Notechis scutatus).<br />

La precisione e la specificità del test è molto alta a causa dell’eliminazione<br />

di possibili influenze dovute a fattori che provengono dalla parte superiore<br />

della cascata coagulativa ed in più il test è indipendente dal calcio. Nel<br />

campione di sangue vengono neutralizzate interferenze da parte<br />

dell'eparina non frazionata (UFH), delle eparine a basso peso molecolare<br />

(LMWH) e del pentasaccaride tramite l'aggiunta di polibrene nei reagenti 1<br />

e 2. I campioni di plasma vengono prediluiti con plasma di diluizione (R4)<br />

ed incubati a 37°C con l'attivatore del fattore V proveniente dal veleno di<br />

serpente (RVV-V, Daboia russelli) in presenza o assenza della <strong>APC</strong>. La<br />

coagulazione viene innescata attraverso l’aggiunta di un attivatore della<br />

protrombina estratto dal veleno del serpente Notechis scutatus in assenza<br />

di calcio. Si registra il tempo di formazione del coagulo e si calcola la ratio<br />

(tempo di coagulazione in presenza della <strong>APC</strong> / tempo di coagulazione in<br />

assenza della <strong>APC</strong>).<br />

COMPOSIZIONE<br />

3 x 2<br />

3 x 2<br />

3 x 4<br />

3 x 2<br />

1 x 1<br />

1 x 1<br />

mL<br />

1 x 2<br />

1 x 2<br />

1 x 4<br />

1 x 2<br />

1 x 1<br />

1 x 1<br />

Reagent Altri Datas<br />

R1 <strong>APC</strong> / RVV-V (+<strong>APC</strong>)<br />

R2 RVV-V (-<strong>APC</strong>)<br />

R3 PTA Reagent<br />

R4 Dilution Plasma<br />

C1 FV-L Negativ<br />

Control<br />

C2 FV-L Heterozygous<br />

Control<br />

<strong>APC</strong>, RVV-V, Polybrene,<br />

Hepes, BSA, liofilizzati<br />

RVV-V, Polybrene, Hepes,<br />

BSA, liofilizzati<br />

attivatore della protrombina,<br />

EDTA, Hepes, BSA),<br />

liofilizzati<br />

Plasma umano, liofilizzati,<br />

trattato<br />

Plasma umano, liofilizzati<br />

Plasma umano, liofilizzati<br />

<strong>APC</strong> Control Kit REF 5344512 contiene uno di C1 FV-L Negative Control e<br />

uno di C2 FV-L Heterozygous Control.<br />

MATERIALE RICHIESTO (non compreso nel kit di test)<br />

- Acqua Distillata<br />

- Pipetta di precisione calibrata<br />

- strumenti automatici o semiautomatici con metodo di rilevazione<br />

ottica o meccanica<br />

Annotazione: Se si utilizzano analizzatori automatici o semiautomatici<br />

riferirsi sempre al Manuale dell’Operatore o richiedere il dettagliato<br />

protocollo d'adattamento per ulteriori informazioni.<br />

AVVERTENZE E MISURE PRECAUZIONALI<br />

- Applicazione prevista esclusivamente come diagnostico in vitro<br />

- I reagenti R1, R4, C1 e C2 contengono prodotti di origine umana.<br />

Il sangue e i campioni devono essere trattati come potenzialmente<br />

infetti e devono essere trattati e maneggiati con la cura opportune, in<br />

accordo con le normative di sicurezza vigenti e devono essere smaltiti<br />

idoneamente quali rifiuti ospedalieri, I reattivi preparati da sangue<br />

umano e ogni singolo plasma usato sono negativi ai test HbSAg, HIV<br />

1/2 Ab e HCV Ab.<br />

CONSERVAZIONE E STABILITÀ<br />

Prima dell'apertura, se conservati a 2-8°C, i componenti del <strong>APC</strong><br />

<strong>Resistance</strong> Kit sono stabili fino alla data di scadenza riportata sull'etichetta.<br />

Stabilità dei reagenti dopo ricostituzione:<br />

Stabilità +15...25°C +2...8°C -20°C<br />

R1 <strong>APC</strong> / RVV-V (+<strong>APC</strong>), lio.<br />

R2 RVV-V (-<strong>APC</strong>), lio.<br />

R3 PTA Reagent, lio.<br />

R4 Dilution plasma<br />

C1 FV-L Negative Control<br />

C2 FV-L Heterozygous Control<br />

24 ore<br />

24 ore<br />

24 ore<br />

24 ore<br />

8 ore<br />

8 ore<br />

14 giorni<br />

14 giorni<br />

14 giorni<br />

14 giorni<br />

8 giorni<br />

8 giorni<br />

6 mesi<br />

6 mesi<br />

6 mesi<br />

6 mesi<br />

6 mesi<br />

6 mesi<br />

I reagenti congelati vanno scongelati a 37°C ed agitati con delicatezza<br />

prima dell'uso. Congelare una sola volta<br />

ESECUZIONE DEL TEST<br />

PRELIEVO DEL SANGUE E PREPARAZIONE DEI CAMPIONI DI<br />

PLASMA<br />

Il paziente deve restare a riposo per 10 minuti prima del prelievo. Prelevare<br />

sangue venoso attentamente e mescolare accuratamente 1 parte di<br />

soluzione di citrato di sodio 104 mM con 9 parti di sangue venoso. Evitare<br />

la formazione di schiuma. Centrifugare immediatamente a una velocità non<br />

inferiore a 2000x g per almeno 20 minuti a temperatura ambiente. Avere<br />

cura di evitare la contaminazione piastrinica del plasma quando viene<br />

separato dalle cellule. Non utilizzare mai plasma emolitico. Per la<br />

conservazione congelare il plasma non diluito rapidamente a -70°C in<br />

aliquote. Congelare una sola volta. Evitare di ricongelare e disgelare<br />

ripetutamente. In modo di evitare il decremento dei fattori labili della<br />

coagulazione e garantire l'assenza di crioprecipitato, i campioni vanno<br />

scongelati rapidamente (entro 5 minuti) a bagno-maria a 37°C. Per ulteriori<br />

informazioni vedere il documento NCCLS H21-A2 [11].<br />

Stabilità dei campione non diluiti (plasma):<br />

-80 ° C -20 ° C + 2...8°C + 15...25 °C<br />

at least 1 year 2 mesi 24 ore 4 ore<br />

PREPARAZIONE DEI REAGENTI<br />

I reagenti liofilizzati vanno disciolti nel volume di acqua distillate indicate<br />

sulla fiala del reagente stesso.<br />

Incubare le soluzioni ricostituite R1-R4 e i controlli ricostituiti C1 e C2 in<br />

fiale chiuse per 30 min a temperatura ambiente e agitare delicatamente<br />

prima dell’uso.<br />

ESECUZIONE DEL TEST<br />

IT<br />

Preparare i reagenti e campioni di plasma come descritto sopra.<br />

Scongelare i campione congelati come descritto precedentemente<br />

assicurandosi dell’assenza di criopecipitati e della perdita trascurabile di<br />

attività dei fattori di coagulazione. Omogeneizzare i campioni scongelati di<br />

plasma per inversione. Evitare la formazione di schiuma. Determinare il<br />

tempo di coagulazione +<strong>APC</strong> (tempo di coagulazione in presenza della<br />

<strong>APC</strong>), il tempo di coagulazione -<strong>APC</strong> (tempo di coagulazione in assenza<br />

della <strong>APC</strong>) e calcolare la ratio della <strong>APC</strong> come segue:<br />

+ <strong>APC</strong> - <strong>APC</strong><br />

Campione o plasma di<br />

controllo<br />

30 µL 30 µL<br />

R4 Dilution Plasma 20 µL 20µL<br />

agitare prima agitare prima<br />

dell’ uso dell’ uso<br />

R1 <strong>APC</strong>/RVV-V<br />

Reagent<br />

(+ <strong>APC</strong>)<br />

50 µL<br />

R2 RVV-V (-<strong>APC</strong>) Reagent - 50 µL<br />

Incubare 3 minuti a 37°C 3 minuti a 37°C<br />

R3 PTA Reagent 50 µL 50 µL<br />

determinare il determinare il<br />

tempo di tempo di<br />

coagulazione coagulazione<br />

Calcolo<br />

tempo di coagulazione +<strong>APC</strong><br />

della ratio<br />

Ratio = ------------------------------tempo<br />

di coagulazione -<strong>APC</strong>


INTERPRETAZIONE DEI RISULTATI<br />

INTERPRETAZIONE DEI RISULTATI<br />

La differenziazione tra omozigoti, eterozigoti e campioni negativi si<br />

basa sugli intervalli tipici per la ratio descritti per campioni di plasma di<br />

pazienti genotipizzati (vedere tabella sottostante)<br />

Intervalli per le ratio tipici per plasma di pazienti genotipizzati effettuati<br />

con differenti analizzatori per determinare i tempi di coagulazione<br />

KC-4/-10 A Micro<br />

Genotipo FV:Q 506 n Intervallo della Ratio (min/max)<br />

negativo 99 > 3.0<br />

eterozigote 166 1.3 – 1.9<br />

omozigote 25 0.9 – 1.1<br />

BCS ® (Behring Coagulation System)<br />

Genotipo FV:Q 506 n Intervallo della Ratio (min/max)<br />

negativo 143 > 3.0<br />

eterozigote 170 1.4 – 2.2<br />

omozigote 27 0.9 – 1.1<br />

CA-1500 / CA-7000<br />

Genotipo FV:Q 506 n Intervallo della Ratio (min/max)<br />

negativo 235 > 3.0<br />

eterozigote 56 1.5 – 1.8<br />

omozigote 2 1.0 – 1.1<br />

ACL 9000<br />

Genotipo FV:Q 506 n Intervallo della Ratio (min/max)<br />

negativo 127 > 3.0<br />

eterozigote 119 1.4 – 2.1<br />

omozigote 24 0.9 – 1.2<br />

STA ® C<br />

Genotipo FV:Q 506 n Intervallo della Ratio (min/max)<br />

negativo 134 > 2.9<br />

eterozigote 83 1.3 – 1.8<br />

omozigote 27 0.9 – 1.1<br />

AMAX CS-190<br />

Genotipo FV:Q 506 n Intervallo della Ratio (min/max)<br />

negativo 74 > 3.0<br />

eterozigote 62 1.2 – 2.3<br />

omozigote 10 0.9 – 1.1<br />

SI RACCOMANDA di determinare i valori degli intervalli di ratio del<br />

laboratorio usando campioni di pazienti genotipizzati.<br />

Attenzione: gli aspetti indicate nella sezione “Limitazioni ed interferenze”<br />

possono cambiare gli intervalli specifici di ratio, cosicché la differenziazione<br />

dei campioni diviene impossibile.<br />

CONTROLLI DI QUALITÀ (C1 e C2)<br />

Il controllo negative o wild-type (neg) mostra normale risposta alla <strong>APC</strong><br />

laddove il controllo eterozigote (het) mostra risposta alla presenza della<br />

mutazione eterozigote di FV:Q 506 . si raccomanda di eseguire il controllo ad<br />

ogni seduta di lavoro. In caso si ottengano risultati fuori dall’intervallo<br />

certificato si raccomanda di controllare tutti I reattivi e di Ripetere l’analisi.<br />

Se il problema persiste controllare anche lo strumento e Ripetere<br />

nuovamente l’analisi.<br />

STRUMENTO C1 FV-L-<br />

Negativ<br />

Control<br />

C2 FV-L<br />

Heterozygous<br />

Control<br />

KC-4/-10 A Micro > 5,1 1,4 – 1,8<br />

BCS ® (Behring<br />

System)<br />

Coagulation > 4,0 1,4 – 2,1<br />

CA-1500 / CA-7000 > 4,0 1,6 – 2,0<br />

ACL 9000 > 4,0 1,3 – 2,4<br />

AMAX CS-190 > 2,4 1,3 – 2,0<br />

STA ® -C > 3,1 1,4 – 1,7<br />

In caso si ottengano nuovamente risultati fuori dagli intervalli considerare la<br />

seduta non valida allo scopo diagnostico.<br />

In caso I controlli siano usati in combinazione con un altro test idoneo o su<br />

un altro strumento I valori di ratio potrebbero essere diversi dall’atteso e<br />

vanno quindi ricalcolati in base alle nuove condizioni di lavoro appropriate.<br />

SPECIFICITÀ E SENSIBILITÀ<br />

La determinazione dei campioni di plasma genotipizzati finora effettuata con<br />

il kit <strong>APC</strong> <strong>Resistance</strong> ha indicato valori di sensibilità del 100% e di<br />

specificità del 100% per il fattore V Leiden (FV:Q 506 ) etero- ed omozigote. I<br />

risultati sono stati rilevati con i seguenti strumenti: BCS ® (n=340), KC-4/-10<br />

A micro (n=290), CA-1500/CA-7000 (n=293), ACL 9000 (n=270), STA®<br />

C (n=244) e AMAX CS-190 (n=146).<br />

In base alla tecnica di rilevazione funzionale si suppone che il test<br />

determini anche altre mutazioni del Fattore V che conducono al fenotipo<br />

<strong>APC</strong>-R. Tuttavia la loro prevalenza è molto bassa paragonata alla<br />

mutazione del fattore V Leiden.<br />

LIMITAZIONI ED INTERFERENZE DEL TEST<br />

Per i risultati non sono state osservate differenze significative tra campioni<br />

di plasma fresco, di plasma congelato o plasma scongelato più volte.<br />

L'utilizzo di plasma citrato tamponato vs plasma citrato non tamponato non<br />

interferisce sulla misurazione dei risultati. Non esistono influenze rilevanti<br />

sulla ratio o perdite di sensibilità nel caso di deficienza fino al 100% di<br />

fibrinogeno, della protrombina, del FVIII, del FX, della ATIII, della Proteina<br />

C o della Proteina S o nel caso di eccesso fino a 5 volte al di sopra dei<br />

valori normali di fibrinogeno, del FVIII, della ATIII o del TFPI. Nel caso di<br />

strumenti con metodo di rilevazione meccanica il test non è condizionato da<br />

campioni di sangue emolitici o da campioni di sangue contenenti piastrine.<br />

Nel caso di strumenti con metodo di rilevazione ottica il test può essere<br />

condizionato da campioni di sangue emolitici o da campioni di sangue<br />

lipemici. Inoltre gli anticorpi lupus anticoagulanti non interagiscono con il<br />

test. Una deficienza severa del fattore V (


<strong>APC</strong> <strong>Resistance</strong> Kit<br />

DESCRIPCIÓN DEL PRODUCTO<br />

USO PREVISTO<br />

<strong>APC</strong> <strong>Resistance</strong> Kit es una prueba de coagulación funcional para la<br />

determinación de la resistencia a la proteína C activada causada por una<br />

mutación en el factor V Leiden (FV:Q 506 ). La causa más frecuente de la<br />

afección hereditaria trombosis venosa profunda de las piernas es una<br />

resistencia a la proteína C activada (<strong>APC</strong>). En más del 95% de los casos,<br />

ésta se manifiesta fenotípicamente debido a una mutación del FV Leiden<br />

(FVL) [1,2,3,4,5,6]. El FVL se debe a una mutación puntual en el gen del<br />

FV, en el que se ha producido un cambio del aminoácido 506 arginina por<br />

glutamina [2,3,7]. La condición heterocigota (het) está asociada a un<br />

aumento del riesgo de trombosis de 5 a 10 veces, mientras que la<br />

condición homocigota (hom) está asociada a un aumento de este riesgo de<br />

50 a 100 veces [5,8,9]. La determinación del fenotipo FVL se realiza en el<br />

plasma mediante una prueba de coagulación funcional [1] y la del genotipo<br />

se realiza mediante métodos basados en la PCR [10].<br />

PRINCIPIO DEL TEST<br />

A diferencia de otras pruebas de coagulación funcional comerciales, en el<br />

caso del <strong>APC</strong> <strong>Resistance</strong> Kit, la activación del complejo de protrombina se<br />

produce por un activador de la protrombina dependiente del factor FVa,<br />

aislado del veneno de la víbora tigre australiana (Notechis scutatus), lo cual<br />

elimina potenciales interferencias debidas a factores de la cascada de<br />

coagulación acumulados. Esta menor interferencia y especificidad de la<br />

prueba se ve favorecida, además, por el hecho de ser independiente del<br />

calcio endógeno. Las interferencias producidas en la muestra de sangre<br />

por heparina no fraccionada (UFH), heparina de bajo peso molecular<br />

(LMWH) o por Pentasacárido, también se neutralizan por la adición de<br />

Polibreno (un inhibidor de la heparina) a los reactivos 1 y 2. El plasma<br />

problema se mezcla con el reactivo 4 (Dilution Plasma) y se incuba a 37°C,<br />

en presencia o ausencia de <strong>APC</strong>, con un activador del factor V (RVV-V),<br />

aislado del veneno de víbora de Russel (Daboia russelli). La coagulación se<br />

desencadena en ausencia de calcio por la adición del activador de la<br />

protrombina dependiente del FVa. Se determinan los tiempos de<br />

coagulación y se calcula el cociente (tiempo de coagulación en presencia<br />

de <strong>APC</strong> / tiempo de coagulación en ausencia de <strong>APC</strong>).<br />

COMPOSICIÓN<br />

3 x 2<br />

3 x 2<br />

3 x 4<br />

3 x 2<br />

1 x 1<br />

1 x 1<br />

mL<br />

1 x 2<br />

1 x 2<br />

1 x 4<br />

1 x 2<br />

1 x 1<br />

1 x 1<br />

Reactivo Otros Datos<br />

R1 <strong>APC</strong> / RVV-V (+<strong>APC</strong>)<br />

R2 RVV-V (-<strong>APC</strong>)<br />

R3 Reactivo PTA<br />

R4 Dilution Plasma<br />

C1 FV-L Control Negativo<br />

C2 FV-L Control<br />

Heterocigoto<br />

<strong>APC</strong>, RVV-V, Polibreno,<br />

Hepes, BSA, liofilizados<br />

RVV-V, Polibreno, Hepes,<br />

BSA, liofilizados<br />

Activator de la Protrombina,<br />

EDTA, Hepes, BSA, liofilzados<br />

Plasma humano liofilizado,<br />

procesado<br />

Plasma humano liofilizado<br />

Plasma humano liofilizado<br />

El kit Control <strong>APC</strong> REF 5344512 contiene un Control Negativo C1 FV-L y<br />

un Control Heterocigoto C2 FV-L.<br />

MATERIAL NECESARIO (no incluido en el kit)<br />

- Agua destilada<br />

- Pipetas calibradas<br />

- Aparatos de coagulación automatizados o semi-automatizados,<br />

que utilizan métodos de detección mecánicos u ópticos.<br />

Nota: Cuando utilice aparatos de coagulación automatizados o<br />

semiautomatizados siga las instrucciones de uso o solicite protocolos<br />

de adaptación detallados.<br />

ADVERTENCIAS Y MEDIDAS DE PRECAUCIÓN<br />

- Sólo para su uso en diagnóstico in vitro.<br />

- Todas las muestras de sangre y plasma y productos deben considerarse<br />

como potencialmente infecciosos y manipularse con el correspondiente<br />

cuidado y de conformidad con las normas de seguridad aplicables,<br />

siendo por tanto desechados como residuos del hospital.<br />

- Los reactivos R1, R4, C1 y C2 que contienen productos derivados de<br />

sangre humana y las muestras deben ser tratadas como potencialmente<br />

infecciosas, esto es, manipuladas con el apropiado cuidado y de<br />

acuerdo con las normas de seguridad vigentes y desechadas como<br />

residuos hospitalarios. Los reactivos preparados a partir de sangre<br />

humana y cada uno de los plasmas usados, son negativos para las<br />

siguientes pruebas: Antígeno de superficie de la Hepatitis B (HBsAg),<br />

VIH 1/2 Ab y HCV Ab.<br />

ESTABILIDAD Y ALMACENAMIENTO<br />

Este kit sin abrir y almacenado a una temperatura entre 2º y 8°C se<br />

conserva hasta la fecha de caducidad impresa en su etiqueta.<br />

Estabilidad de los reactivos tras la reconstitución:<br />

Estabilidad +15...25°C +2...8°C -20°C<br />

R1 <strong>APC</strong> / RVV-V (+<strong>APC</strong>), lio.<br />

R2 RVV-V (-<strong>APC</strong>), lio.<br />

R3 Reactivo PTA, lio.<br />

R4 Dilution Plasma<br />

C1 FV-L Control Negativo<br />

C2 FV-L Control Heterocigoto<br />

24 horas<br />

24 horas<br />

24 horas<br />

24 horas<br />

8 horas<br />

8 horas<br />

14 días<br />

14 días<br />

14 días<br />

14 días<br />

8 días<br />

8 días<br />

6 meses<br />

6 meses<br />

6 meses<br />

6 meses<br />

6 meses<br />

6 meses<br />

Los reactivos congelados deberán descongelarse a 37°C y ser mezclados<br />

cuidadosamente antes de su uso. Congelar sólo una vez.<br />

REALIZACIÓN DEL TEST<br />

OBTENCIÓN DE SANGRE Y PREPARACIÓN DE LAS MUESTRAS<br />

DE PLASMA<br />

El paciente deberá estar en reposo durante 10 minutos como mínimo antes<br />

de la extracción de la muestra. Para la obtención del plasma se mezclará<br />

cuidadosamente 1 parte de citrato sódico (104 Mm o 129 Mm) con 9 partes<br />

de sangre venosa, evitando en todo momento la formación de espuma.<br />

Centrifugar inmediatamente después, durante al menos 20 minutos a<br />

temperatura ambiente y a 2000xg como mínimo. Al extraer el plasma<br />

deberá evitarse la contaminación con trombocitos. Por regla general, no se<br />

debería usar ninguna muestra de plasma hemolítica. El plasma sin diluir y<br />

en alícuotas deberá congelarse inmediatamente a -70°C. Congelar sólo<br />

una vez. Evitar ciclos repetidos de congelación-descongelación. Para evitar<br />

pérdidas de actividad de los factores de coagulación más lábiles y la<br />

formación de crioprecipitados; la descongelación se deberá realizar de<br />

forma rápida (en el plazo de 5 minutos) en un baño de agua a 37°C. Puede<br />

obtener más información en el documento NCCLS H21 A2 [11].<br />

Estabilidad de las muestras sin diluir (plasma):<br />

-80 ° C -20 ° C + 2...8°C + 15...25 °C<br />

Al menos 1 año 2 meses 24 horas 4 horas<br />

PREPARACIÓN DE LOS REACTIVOS<br />

Los reactivos liofilizados son disueltos con el volumen de agua destilada<br />

indicado en el vial.<br />

Incubar las soluciones reconstituidas de R1-R4 y de los controles C1 y C2<br />

en viales cerrados durante 30 min. a temperatura ambiente y agitar con<br />

delicadeza antes de su uso.<br />

REALIZACIÓN DEL TEST<br />

Prepare los reactivos como se describe en el apartado anterior.<br />

Descongele las muestras como se describe más arriba dando por hecho<br />

una insignificante pérdida de actividad de los factores lábiles de<br />

coagulación y ausencia de crioprecipitados. Mezcle las muestras<br />

descongeladas cuidadosamente, evitando la formación de espuma.<br />

Determine los tiempos de coagulación en presencia (+<strong>APC</strong>) y en ausencia<br />

(-<strong>APC</strong>) de la proteína C activada y calcule el cociente (ratio) de acuerdo<br />

con el siguiente esquema:<br />

+ <strong>APC</strong> - <strong>APC</strong><br />

Muestra o plasma control 30 µL 30 µL<br />

R4 Dilution plasma 20 µL 20µL<br />

Mezclar antes de<br />

usar<br />

ES<br />

Mezclar antes de<br />

usar<br />

R1 Reactivo <strong>APC</strong>/RVV-V (+<br />

<strong>APC</strong>)<br />

50 µL<br />

R2 Reactivo RVV-V (-<strong>APC</strong>) - 50 µL<br />

Incubación 3 min, 37°C 3 min, 37°C<br />

R3 Reactivo PTA 50 µL 50 µL<br />

Determinación Determinación<br />

del tiempo de del tiempo de<br />

coagulación coagulación<br />

Cociente<br />

Tiempo de coagulación +<strong>APC</strong><br />

= ------------------------------------------<br />

Tiempo de coagulación -<strong>APC</strong>


ANÁLISIS DE LOS RESULTADOS<br />

INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS<br />

La distinción entre homocigotos, heterocigotos y muestras negativas<br />

respecto al FVL se basa en los intervalos típicos del cociente determinados<br />

en las muestras de plasma de pacientes genotipados (véase las tablas<br />

siguientes).<br />

Intervalos de cocientes típicos obtenidos a partir de muestras de plasma de<br />

pacientes PCR-genotipados en diferentes aparatos se muestran en la<br />

siguiente tabla:<br />

KC-4/-10 A Micro<br />

Genotipo FV:Q 506 n Intervalo del conciente (min/máx)<br />

negativo 99 > 3.0<br />

heterocigoto 166 1.3 – 1.9<br />

homocigoto 25 0.9 – 1.1<br />

BCS ® (Behring Coagulation System)<br />

Genotipo FV:Q 506 n Intervalo del conciente (min/máx)<br />

negativo 143 > 3.0<br />

heterocigoto 170 1.4 – 2.2<br />

homocigoto 27 0.9 – 1.1<br />

CA-1500 / CA-7000<br />

Genotipo FV:Q 506 n Intervalo del conciente (min/máx)<br />

negativo 235 > 3.0<br />

heterocigoto 56 1.5 – 1.8<br />

homocigoto 2 1.0 – 1.1<br />

ACL 9000<br />

Genotipo FV:Q 506 n Intervalo del conciente (min/máx)<br />

negativo 127 > 3.0<br />

heterocigoto 119 1.4 – 2.1<br />

homocigoto 24 0.9 – 1.2<br />

STA ® C<br />

Genotipo FV:Q 506 n Intervalo del conciente (min/máx)<br />

negativo 134 > 2.9<br />

heterocigoto 83 1.3 – 1.8<br />

homocigoto 27 0.9 – 1.1<br />

AMAX CS-190<br />

Genotipo FV:Q 506 n Intervalo del conciente (min/máx)<br />

negativo 74 > 3.0<br />

heterocigoto 62 1.2 – 2.3<br />

homocigoto 10 0.9 – 1.1<br />

Se recomienda determinar intervalos de cociente específicos de laboratorio<br />

con muestras de pacientes genotipadas.<br />

Atención: Los factores que se mencionan en el apartado “Limitaciones e<br />

Interferencias” pueden cambiar los intervalos de cociente específicos, de tal<br />

modo que la diferenciación de las muestras puede resultar imposible.<br />

CONTROLES DE CALIDAD (C1 y C2)<br />

El control negativo o el tipo salvaje “wild-type” (neg) muestra una respuesta<br />

normal frente a la <strong>APC</strong> mientras que el control heterocigoto (het) muestra<br />

respuesta en presencia de la forma heterocigota de la mutación FV:Q 506 .<br />

Se debería utilizar un control cada vez que se realiza el test. Si se obtienen<br />

valores fuera del rango (ratio), debería de hacerse un completo chequeo de<br />

los reactivos y repetir el análisis. Si el problema persiste, se debería hacer<br />

una comprobación completa de los instrumentos y los análisis deberían ser<br />

repetidos.<br />

Instrumento: C1 FV-L-<br />

Control<br />

Negativo<br />

C2 FV-L<br />

Control<br />

Heterocigoto<br />

KC-4/-10 A Micro > 5,1 1,4 – 1,8<br />

BCS ® (Behring<br />

System)<br />

Coagulation > 4,0 1,4 – 2,1<br />

CA-1500 / CA-7000 > 4,0 1,6 – 2,0<br />

ACL 9000 > 4,0 1,3 – 2,4<br />

AMAX CS-190 > 2,4 1,3 – 2,0<br />

STA ® -C > 3,1 1,4 – 1,7<br />

Si se obtienen valores fuera de estos rangos, los resultados del test no son<br />

válidos y no deberían usarse para diagnóstico. Cuando se usan controles<br />

en combinación con otro test o instrumento aplicable, los valores del<br />

cociente esperados pueden ser diferentes y han de ser determinados<br />

localmente bajo unas condiciones apropiadas.<br />

ESPECIFICIDAD Y SENSIBILIDAD<br />

Con las muestras testadas hasta el momento, <strong>APC</strong> <strong>Resistance</strong> Kit presenta<br />

una sensibilidad y especificidad del 100% para la detección de los<br />

portadores heterocigotos y homocigotos de la mutación FV:Q506. Las<br />

determinaciones se han realizado mediante los siguientes aparatos: BCS®<br />

(n=340), KC-4/-10 A micro (n=290), CA-1500/CA-7000 (n=293), ACL<br />

9000 (n=270), STA® C (n=244) y AMAX CS-190 (n=146).<br />

Debido a la técnica de detección funcional, el test tiene que ser capaz de<br />

detectar otras mutaciones de FV que dan lugar también a un fenotipo <strong>APC</strong>-<br />

R. Sin embargo, su prevalencia comparada con la de la mutación FV<br />

Leiden es muy pequeña.<br />

LIMITACIÓN E INTERFERENCIAS<br />

No se observan diferencias significativas cuando se utilizan muestras de<br />

plasma frescas o congeladas. Asimismo, la utilización de plasma citratado<br />

tamponado o no tamponado tampoco tiene ninguna influencia sobre los<br />

resultados de la determinación.<br />

En los estudios experimentales se ha demostrado que una deficiencia de<br />

hasta el 100% de los factores fibrinógeno, protrombina, FVIII, FX, ATIII,<br />

proteína C y proteína S, así como un exceso de hasta 5 veces el valor<br />

normal de fibrinógeno, FVIII, ATIII y TFPI no afectan en absoluto al<br />

cociente o a la sensibilidad de la prueba. Ni las muestras de sangre<br />

hemolítica ni las muestras que contienen residuos de plaquetas alteran los<br />

métodos de determinación mecánicos. Por el contrario, los métodos de<br />

determinación ópticos pueden verse alterados por el uso de plasmas<br />

hemolíticos o lipémicos. Los anticuerpos anticoagulantes lupus no<br />

interfieren en el test. Sin embargo, una deficiencia grave de FV (

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