Mycotrim® RS - Irvine Scientific

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2. Aseptische Inokulation A. Für fl üssige Probekörper (z.B. bronchiale Waschungen, Pneumozentese Flüssigkeit, und Waschungen von Gewebebiopsie): 1. Flasche ca 45° neigen, siehe Bild 2, and etwa 1 mL der Probe langsam bis zur Agarmitte fliessen lassen. 2. Anschliessend die Pipette fest in den Agar pressen und einen tiefen Schnitt in die inokulierte Fläche machen. 3. Flasche anschliessend fest zuschrauben. B. Für Proben in Mycotrans: 1. Ca. 1 mL Bouillon aus der Grenzfläche Agar/Bouillon entnehmen 2. Schritt 1-3 für flüssige Proben wiederholen. ( siehe Abschnitt A). Deutsch 5/11 Bild 2
3. Proben auf Tupfern sollten in Mycotrans versandt werden und dann, wie in Abschnitt C beschrieben, verarbeitet werden. C. Für Probekörper auf Tupfern (z.B. Hals- oder Auswurfsprobekörper): 1. Flasche ca. 45° neigen ( siehe Bild 2) und den zentralen Bereich des Agars von unten nach oben abstreichen. 2. Den Tupfer in die Bouillon tauchen und anschliessend fest gegen die Innenwand pressen, damit die Probe in das Medium läuft. 3. Danach den Tupfer fest in das Zentrum des inokulierten Agars pressen. Der Tupfer hinterlässt keinen scharfen Schnitt aber auch ein unscharfer Schnitt beeinträchtigt das Ergebnis des Mycotrim <strong>RS</strong> Tests nicht. 4. Flasche fest zuschrauben. 3. Inkubation Die Flasche mit der Agarseite nach oben bei 34° C – 37°C für 72 h oder bis zum Farbwechsel des Mediums inkubieren. Die Flasche alle 24 h auf Farbwechsel überprüfen (siehe Punkt 4. Beobachtung). Temperaturen über 38° C inhibieren das Wachstum von M. pneumoniae. Bei Kontrolle des Farbwechsels die Flaschen vorsichtig aus dem Inkubator entnehmen, um zu vermeiden, dass gewachsene Kolonien durch die Bouillon vom Agar gespült werden. 4. Beobachtung A. Farbwechsel Das erste Anzeichen von M. pneumoniae in Mycotrim <strong>RS</strong> ist ein Farbwechsel im Medium. Dieser Farbwechsel kann Deutsch 6/11
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REFERENCES 1. Klein JO, Mycoplasma
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