Zoología I - Facultad de Biología - Universidad Michoacana de San ...

UNIVERSIDAD MICHOACANA DE SAN NICOLAS DE HIDALGO
FACULTAD DE BIOLOGIA
MANUAL DE PRÁCTICAS
PARA LA MATERIA DE ZOOLOGÍA I
Integrantes del curso teórico-práctico
Dra. Alma Lilia Fuentes Farías
Dra. María Teresa Álvarez Ramírez
Dr. Ezequiel González Reyes
M. C Víctor S. Mondragón Noguéz
Biol. Adriana Lechuga Granados
Biol. Luz Lilia Jiménez Rico
Biol. Marco Antonio Villaseñor Ramos
Biol. Alva Acuña Luviano
Agosto 2011

Nombre del alumno(a):
Sección______________Matrícula_______________
Profesor
Técnico Académico___________________________
Ciclo Escolar
Evaluación
____________________________________________
1

PRESENTACIÓN
Como parte del nuevo currículo del plan de estudios de la Facultad de
Biología el programa de la materia de Zoología I, abarca aspectos teórico
metodológicos que el presente manual pretende complementar, a través
de la observación directa de los individuos pertenecientes a los Phyla de
mayor importancia dentro del curso.
El estudio de los invertebrados representa uno de los eslabones más
complicados de la Zoología debido a la gran variedad de formas,
estructura, función, comportamiento y el éxito evolutivo del ser vivo
depende de estos aspectos, por lo tanto, tan instructivo es estudiar el
animal en su plenitud de acción, como sus partes constitutivas.
Cada sesión práctica de este manual requiere la interacción de los alumnos
participando con la elaboración de manera resumida de las generalidades
del grupo, se les guía con los objetivos de la práctica, y se les marcan
detalladamente las técnicas y procedimientos acompañados de esquemas
didácticos, para facilitar el estudio de los organismos.
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CONTENIDO
Presentación 2
1. Técnicas de recolecta y preservación de los grupos
estudiados en el laboratorio de Zoología I 4
2. Phylum Porífera: esponjas 14
3. Phylum Cnidaria: hidras, medusas, anémonas, corales 30
4. Phylum Platyhelminthes: platelmintos (gusanos planos) 48
5. Phylum Rotifera 60
6. Phylum Acantocephala: Acantocéfalos 70
7. Phylum Mollusca: moluscos (2 SESIONES) 78
Pág.
8. Phylum Annelida: gusanos segmentados (2 SESIONES) 109
9. Phylum Bryozoa: briozoarios 125
ANEXOS
+ Reglamento para los alumnos del laboratorio de Zoología I. 133
+ Formulación y cuidados de las soluciones utilizadas 136
Lista de bibliografía de consulta y sugerida. 141
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PRÁCTICA No. 1
Técnicas de recolecta y preservación de los grupos estudiados en el
Laboratorio de Zoología I.
Filo Poríferos:
Los poríferos son animales sedentarios conocidos
vulgarmente como esponjas. Los cuerpos de estos
animales presentan una gran cantidad de poros y
canales que son utilizados para diferentes funciones (Ej.
alimentación o respiración).
Desde un punto de vista estructural el cuerpo de una
esponja se puede considerar como una masa de células
englobadas en una matriz gelatinosa, sostenidas por un
esqueleto formado por espículas de carbonato cálcico,
sílice o un compuesto proteico denominado espongina.
Carecen de órganos y verdaderos tejidos.
Se conocen unas 5.000 especies, siendo la mayoría de ellas marinas. La mayoría de las especies son
coloniales, su tamaño va desde algunos milímetros hasta los 2 o más metros de diámetro que pueden
alcanzar algunas esponjas.
Es frecuente que estos animales tengan brillantes colores, que desaparecen cuando los sacamos del
agua.
Recolección:
Las esponjas son animales sedentarios por lo que hay que buscarlos sobre los sustratos específicos:
fondos rocosos marinos, sobre conchas de moluscos, en objetos flotantes, y los de agua dulce en ríos y
arroyos, siempre de aguas limpias y poco profundas.
Tras recolectarlas es necesario disponerlas en agua de su medio, en un recipiente o bolsa de plástico, a
la sombra y durante el menor tiempo posible
Conservación:
En medio líquido: tras el lavado, las esponjas se conservan en alcohol de 60º a 96º en función del
tamaño del ejemplar. No es adecuado el formol pues destruye las espículas que constituyen el esqueleto
del animal.
En seco: Lavar y dejar secar el ejemplar en ambiente cálido, sin exponerlas directamente al sol.
Etiquetar Esqueleto: Está formado por fibras de espongina o por espículas silíceas o calcáreas. Las
espículas se pueden observar fácilmente colocando un trozo de esponja en un tubo de ensayo con unas
gotas de ácido nítrico concentrado para espículas silíceas o con hidróxido de potasio al 10% para la
calcáreas, durante unas 8 horas o haciéndolo hervir para acelerar el proceso. Después se decanta al
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ácido y se lavan las espículas varias veces, dejándolas sedimentar. Se deshidratan en alcoholes y se
transfiere una gota de espículas-alcohol a un portaobjetos, dejándola secar completamente.
Finalmente se realiza el montaje permanente en bálsamo de Canadá.
Las fibras de espongina se preparan lavando y volteando la esponja en agua dulce, dejándola secar,
desprendiendo pequeñas porciones y tiñéndolas con Safranina, Eosina o Verde luz. Posteriormente se
lavan y deshidratan pasándola por la serie de alcoholes y se monta una preparación permanente en
bálsamo de Canadá. Y guardar en ambiente seco para evitar el desarrollo de hongos.
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Filo Cnidarios:
Son animales acuáticos fundamentalmente marinos y unas cuantas formas dulceacuícolas, todos ellos
muy variables en apariencia y en modos de vida, pero con una organización básica muy similar
expresada en un cuerpo cilíndrico con simetría radial.
El grupo incluye más de 9.000 especies
conocidas (medusas, anémonas, pólipos y
corales) que suelen habitar en lugares poco
profundos, siendo común a todas ellas poseer
unos órganos urticantes denominados
nematocistos provistos de unas células que
reciben la denominación de cnidocitos. Su
tamaño es muy variable, algunos pólipos son
microscópicos y las mayores medusas alcanzan
más de tres metros de anchura.
En los ciclos vitales exhiben dos formas
corporales principales: la de pólipo y la de
medusa; los pólipos (solitarios o coloniales) son
formas cilíndricas generalmente sésiles,
presentando la boca en su extremo apical y
encontrándose rodeada de tentáculos; las medusas suelen ser de vida libre y generalmente tienen una
forma de cubo o de paraguas, situándose la boca en el centro del lado cóncavo. Los tentáculos se
encuentran provistos de cnidocitos.
Las medusas suelen ser animales gregarios, las especies
litorales pueden formar densas colonias que se acercan a
la costa preferentemente durante la primavera y el
verano. Son arrastradas por las corrientes y su máxima
actividad la despliegan cuando se suelen encontrar a
unos 10 m. de profundidad.
Todas las especies de este grupo son depredadoras, pero
no persiguen a sus presas (protoctistas, gusanos,
crustáceos, peces, etc.), sino que las capturan por
contacto, liberando a continuación substancias urticantes.
Los Cnidarios han sido agrupados en las clases siguientes:
Hidrozoos.
Captura:
Se capturan directa y manualmente. Para las formas frágiles se debe utilizar un frasco o de una red
para que no se rompan los tentáculos.
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Conservación:
Se pueden fijar directamente añadiendo formol al agua de mar hasta alcanzar una disolución del 5%.
Los hidrozoos y otras formas polipoides de Cnidarios se deben dejar expandir antes de fijarlos, para
ello se pueden anestesiar con sales de sulfato de magnesio que se agregan periódicamente (cada 20
minutos) al agua del medio durante varias horas. Cuando quedan insensibles se fijan en formol al 5%,
en Bouin o en alcohol de 70º.
Escifozoos.
Captura:
Esta Clase incluye las mayores y más peligrosas medusas que en su mayoría se encuentran en aguas
costeras, pudiéndose capturar con redes y evitando el contacto directo debido a la presencia de
numerosas células urticantes. Las Estauromedusas por su condición sésil se colectan junto a una
porción de las algas que usualmente les sirven de sustrato, también pueden hallarse adheridas a las
rocas. También pueden encontrarse a orillas del mar, hasta donde han sido arrastradas por las mareas.
Conservación:
Los Escifozoos pelágicos deben ser fijados en formol al 20% y conservados en el mismo medio diluido a
la mitad. No se requiere anestesia previa. Las Estauromedusas se transfieren directamente al
conservante (formol 10% o alcohol 70%).
Cubozoos.
Se han de aplicar los mismos métodos que para los Escifozoos.
Antozoos.
Recolección:
Las anémonas de mar pueden desprenderse directamente de las rocas mediante un cuchillo o extraerlas
de aguas más profundas con draga. Como grupos anteriores deben mantenerse aislados en frascos con
agua de mar y a la sombra.
Conservación
Todos los llamados corales, ya sean córneos o duros pueden extraerse con una draga y conservarse en
seco.
Para fijar anémonas se deben expandir previamente narcotizándolas con aceite de clavo o cloretona, o
dejar que se van insensibilicen de forma natural a medida que se acumulan las sustancias toxicas y se
agota el oxigeno del medio. Una vez que el animal queda insensible, se añade formol hasta obtener una
disolución al 5%.
Los corales blandos se fijan en formol neutro durante 15 minutos, posteriormente se dejan secar en
sitio sombreado. Para que queden más limpios se mantienen en agua durante varios días y se lavan a
presión. Después se incluyen en una disolución blanqueadora (lejía comercial al 10%), se enjuagan
repetidamente y se dejan secar.
También pueden conservarse en medio líquido (formol neutro 5%, alcohol 70º) teniendo en cuenta que
el formol concentrado destruye el esqueleto de los corales; hay que narcotizarlos previamente igual que
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se hace con las anémonas. Antes de fijarlos se debe anotar la coloración ya que la luz o el alcohol
pueden alterarla. Se guardarán en lugares oscuros.
Filo Platelmintos:
Los platelmintos son gusanos aplanados en sentido dorsoventral, de forma acingada, sin apéndices y de
cuerpo blando. Son animales acelomados, es decir, que carecen de una cavidad corporal; constituyen
uno de los primeros intentos de explotar la pluricelularidad así como la especialización de grupos
celulares, contando con un gran éxito evolutivo.
Presentan simetría bilateral que se encuentra muy relacionada con el desarrollo de movimientos activos
(natación o reptación) en el medio; esto conlleva una mejora en los sistemas sensoriales y de control
nervioso de los animales, así como el inicio de los procesos de cefalización, para concentrar un gran
número de receptores en la zona del cuerpo que explora el medio (la porción anterior).
El filo engloba a unas 15.000 especies que se agrupan en las clases siguientes:
- Clase Turbelarios. Constituida por animales acuáticos,
generalmente marinos, con coloraciones que presentan
muchas veces diversos tonos de negro, marrón o gris; su
tamaño varía desde formas microscópicas hasta animales
que pueden medir 60 cm, pero generalmente miden
menos de 10 mm; suelen ser carnívoros o carroñeros.
La epidermis que los recubre externamente es ciliada y
presenta unas estructuras denominadas rabdites, que contienen secreciones glandulares empleadas
principalmente para proteger la superficie corporal. Para capturar las presas poseen tentáculos o
glándulas que elaboran substancias adhesivas; las presas pueden ser ingeridas enteras o bien usar la
faringe, un órgano musculoso tubiforme, situado en la región ventral y que puede ser proyectado al
exterior a través de la boca, para succionar las partes blandas; la digestión y absorción de los nutrientes
se realiza en el intestino, que puede tener diversas formas empleadas en taxonomía.
Son hermafroditas y muchas de las especies se pueden reproducir asexualmente. Los turbelarios
primitivos fueron, probablemente, los antecesores de los otros grupos de platelmintos.
- Clase Monogeneos. Formada por animales parásitos con un solo hospedador. El cuerpo se encuentra
recubierto por un sincicio no ciliado y suele tener una forma ovalada o cilíndrica. La mayoría de las
especies son ectoparásitas y sus hospedadores más habituales son los peces y anfibios; poseen un órgano
de fijación posterior provisto de ganchos o ventosas y
pueden tener una ventosa oral (opisthaptor).
- Clase Trematodos. Los miembros de esta clase son
parásitos internos o externos de muchos animales,
principalmente vertebrados, a los que se adhieren
mediante unos ganchos o ventosas. Dentro de ella
encontramos las siguientes subclases: Digeneos, los
ciclos vitales implican de dos a cuatro huéspedes,
denominándose huésped primario o definitivo el
correspondiente al gusano adulto, poseen una ventosa oral bien desarrollada; subclase Aspidobotreos,
su rasgo característico es que el órgano adhesivo ocupa toda la superficie ventral del animal, y se
encuentra subdividido en varias porciones mediante septos.
- Clase Cestodos. Son parásitos internos de animales
(endoparásitos), muy comunes en el tracto digestivo de los
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vertebrados; sus larvas se desarrollan, a menudo, en más de un huésped intermediario, y son parásitos
obligados que carecen de aparato digestivo
Turbelarios.
Captura:
Se capturan manualmente en sus medios característicos (arroyos de agua corriente o otros cursos de
aguas frías y bien oxigenadas) usando pinceles, finas redes o pequeñas dragas e incluso prospectando
directamente piedras o fragmentos de vegetación sumergidos.
Conservación:
Para fíjarlos se dejan extender previamente en agua del medio en una placa de Petri. Cuando estén
extendidos se pasan al fijador caliente (50-60º) que puede ser alcohol 70% o formol 2-5% y se montan
entre dos portaobjetos con glicerina o bálsamo de Canadá
Trematodos y cestodos.
Captura:
Se han de buscar en el hospedador
específico: cavidad oral, cloaca, cámara
branquial, y órganos internos
normalmente parasitados como el
hígado, el intestino o el músculo.
Conservación:
Antes de fijarlos se limpian mediante
varios lavados con solución salina y
después se transfieren directamente a
los conservantes usuales, o también
pueden colocarse entre dos
portaobjetos con ácido acético o Bouin.
Las tenias, debido a su longitud
requieren la elaboración de varias preparaciones, una de ellas contendrá al escólex o extremo anterior,
seguido de los segmentos de la región del cuello.
Filo ROTIFERA
Formol al 10%, se anestesian con clorhidrato de benzamina
Anestésico Hidrato de cloral
Filo ACANTOCEPHALA
Parásitos de vertebrados, se ponen en OH caliente al 70% o formol al 3
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Filo Anélidos:
Los anélidos son gusanos protostomados, celomados y segmentados metaméricamente, en los que la
segmentación externa coincide con una partición corporal interna. Estos animales se encuentran en
todo tipo de hábitat acuático y terrestre, siendo la mayoría depredadores activos o carroñeros.
Muestran diversas coloraciones, a veces su coloración resulta discreta y otras pueden ser rayados o
moteados; tienen unos tamaños comprendidos entre 0.5 mm y 3 m., y son considerados los
invertebrados vermiformes que han alcanzado el mayor grado de desarrollo.
El filo se encuentra constituido por unas 9.000 especies, y en él hallamos animales muy conocidos, como
las lombrices de tierra y las sanguijuelas.
Casi todos los animales de este grupo (excepto las sanguijuelas), tienen cerdas quitinosas que podemos
dividir en dos grupos: las cerdas cortas ayudan en general a anclar al animal al substrato sobre el que
se desplaza, y las cerdas largas que ayudan a las formas acuáticas a nadar.
En este filo se pueden diferenciar dos líneas evolutivas: los Poliquetos y los Clitelados. Los Poliquetos se
caracterizan por poseer parápodos y en la mayoría de las especies sexos separados. Los Clitelados
carecen de parápodos, son hermafroditas y poseen clitelo (hipertrofia glandular tegumentaria que
afecta a segmentos concretos del tercio corporal anterior); las dos clases de animales clitelados son:
Oligoquetos e Hirudíneos.
+ Clase Poliquetos. Los poliquetos incluyen aproximadamente a los dos tercios de las especies vivientes
(5.300 especies) y localmente pueden ser muy abundantes. La mayoría de ellas son animales marinos
que nadan libremente, o poseen costumbres sedentarias (viven debajo de las rocas, o excavan agujeros
en el cieno o la arena de las playas, o habitan en tubos formados por la cementación de diversos
materiales), presentes en todo tipo de hábitat (desde la zona intermareal hasta mas de 5.000 m de
profundidad), y que raramente miden más de 10 cm de largo.
La mayoría de los segmentos tienen un par de apéndices carnosos que se extienden lateralmente y se
denominan parápodos; cada parápodo es una evaginación lateral de la pared corporal, y posee un
conjunto de púas quitinosas denominadas setas o quetas. Un parápodo típico consta de dos ramas, una
rama dorsal o notópodo y una ventral o neurópodo.
Sus hábitos alimenticios son variados, existiendo especies filtradoras, depredadoras, carroñeras,
micrófagas, etc. Tienen un papel muy importante en las cadenas tróficas marinas.
+ Clase Hirudíneos. La clase engloba más de 500 especies con el cuerpo aplastado dorso-ventralmente,
provisto de pliegues cutáneos y tubérculos; a diferencia de los otros anélidos, el número de segmentos es
constante, todas las especies tienen 33, pero el número de anillos por segmento varía según la especie y
la zona corporal que se considere. Muchas de las especies del grupo son ectoparásitos hematófagos que
habitan en las aguas dulces, algunas especies son marinas y otras se han adaptado a la vida terrestre,
pero en éste caso solamente habitan en zonas muy húmedas; la mayoría de las especies terrestres viven
en los trópicos.
Carecen de parápodos y quetas, poseen una gran variedad de formas y colores, y han desarrollado
ventosas con las que se adhieren a sus hospedadores. Son hermafroditas. La mayoría de las especies
tienen varios huéspedes preferidos y sólo unas pocas parasitan una determinada especie. Muchas
atacan al huésped sólo cuando tienen que alimentarse, pero algunas permanecen "siempre" pegadas a
su hospedador, excepto durante los períodos de cría. La aplicación de la sanguijuela común (Hirudo
medicinalis) en las prácticas médicas fue muy corriente en la Edad Media, práctica que se ha
mantenido en nuestro país hasta el siglo XX.
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+ Clase Oligoquetos. Está constituida por unas 3.000 especies;
la mayoría de ellas viven en el suelo terrestre, aunque también
hay especies acuáticas, siendo algunas de ellas marinas.
Carecen de parápodos y están provistos de pocas quetas que
suelen ser empleadas como elementos de apoyo en los
desplazamientos; así mismo el extremo anterior está reducido y
no presenta apéndices sensoriales.
Las especies dulceacuícolas españolas se alimentan
preferentemente de desechos vegetales y diatomeas, o bien de la
materia orgánica presente en los limos del fondo. Las lombrices de tierra suelen ser los oligoquetos
mejor conocidos; no les resultan propicios los suelos excesivamente ácidos, salinos, secos o muy
encharcados.
Captura:
Las especies marinas (Poliquetos) se encuentran debajo de las rocas, adheridos a las algas, sobre
objetos flotantes. A veces forman galerías en la arena en cuyo interior puede hallarse el animal. Los
arenícolas errantes se extraen con ayuda de un tamiz. Las especies terrestres (Oligoquetos) se obtienen
cavando las capas superficiales del suelo, preferentemente húmedas y ricas en materia orgánica, siendo
más abundantes y fáciles de hallar en tiempo húmedo.
Otros Oligoquetos se pueden obtener en los fondos fangosos de los charcos de agua dulce, a orillas de
los arroyos, entre la vegetación en descomposición o bajo restos de origen diverso.
La tercera clase de los Anélidos (Hirudíneos) pueden hallarse en aguas dulces de corriente lenta, casi
siempre donde existen juncos. Se pueden "pescar" con un trozo de hígado o de carne suspendido
durante rato de un cordón y sumergido en agua.
Conservación:
Los anélidos de tamaño mediano y grande se fijan en formol al 5% y se conservan en el mismo medio,
en alcohol de 70º o en alcohol isopropílico entre 50-70%.
Previamente a su conservación se anestesian los animales calentándolos hasta unos 40º C, o
narcotizándolos con sulfato de magnesio o cloretona.
Filo Moluscos:
El filo Moluscos incluye formas tan conocidas como son las almejas, los mejillones, los calamares y los
caracoles. Son animales de cuerpo blando, y provistos generalmente de una concha externa o interna.
Se han descrito unas 110.000 especies vivientes y unas 35.000 fósiles, lo que lo convierte en el segundo
filo animal en importancia (después de los artrópodos), por su abundancia y diversidad.
Nuestra relación con ellos siempre ha sido intensa. Los empleamos como alimento, algunas especies
pueden atacar nuestros cultivos y otras pueden actuar como hospedadores intermediarios de diversos
parásitos. Además hemos empleado sus conchas como botones y para hacer diversos adornos, así como
para realizar colecciones.
Estos animales suelen ser marinos aunque existen especies dulceacuícolas y terrestres. Los métodos de
captura y conservación son similares en todas las clases que se incluyen en el filo
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Habitan en ambientes acuáticos o muy húmedos; encontramos miembros de este grupo en muchos tipos
de hábitat, desde los trópicos hasta las zonas polares. Anteriormente se expuso que una gran parte de
ellos son marinos, residiendo varios en las grandes profundidades oceánicas, y la mayoría en las líneas
de marea. Solamente algunos bivalvos y gasterópodos han colonizado el hábitat salobre y de agua
dulce, y exclusivamente los gasterópodos han prosperado en las zonas húmedas terrestres.
+ Clase Poliplacóforos. Conocidos vulgarmente como
quitones, son animales marinos generalmente pequeños (la
mayoría miden entre 3 y 12 cm), de cuerpo aplanado y
ovalado, provistos de una cabeza reducida que no posee ni
ojos ni tentáculos, y que se sitúa debajo de las placas
dorsales que los protegen; se suelen adherir con fuerza a las
rocas o las conchas de otros animales.
+ Clase Escafópodos. Incluye unas 350 especies de moluscos
marinos excavadores que reciben el nombre vulgar de
colmillos o dientes de mar. La concha es una especie de tubo
con los extremos abiertos, y suele medir entre 3 y 6 cm.
+ Clase Gasterópodos. Es la más abundante (cerca de 100.000 especies descritas) y diversificada del filo.
Estos animales presentan gran diversidad de dimensiones, aunque la mayoría poseen un tamaño
comprendido entre los 1 y 8 cm; viven en hábitats muy diversos, incluyendo todos los acuáticos y
muchos terrestres. La mayoría de los gasterópodos tienen conchas constituidas por una sola pieza, las
más comunes son las espirales asimétricas enrolladas al lado derecho, siendo las enrolladas al lado
izquierdo más raras. También hay gasterópodos con conchas planas y otros carecen de ellas, como las
babosas.
+ Clase Bivalvos. A esta clase pertenecen unas 20.000
especies de moluscos marinos o dulceacuícolas. Incluye
especies como los mejillones, las ostras y los berberechos. El
cuerpo se encuentra comprimido lateralmente. La concha
que los recubre externamente está constituida por dos
piezas o valvas laterales, articuladas en posición dorsal, y
que se cierra gracias a la contracción de músculos
abductores. La forma de las conchas y su tamaño son
sumamente variables, también varían en el color y varias
especies presentan ornamentaciones externas (ej.
tubérculos o costillas).
+ Clase Cefalópodos. Los miembros de esta clase (unas 650 especies) se consideran los moluscos más
evolucionados; son animales depredadores muy activos, poseen grandes ojos muy parecidos
estructuralmente a los de los vertebrados, y son considerados como los invertebrados más avanzados.
Todas las especies son marinas, ocupando todos los océanos desde la superficie hasta los 7.000 m de
profundidad; algunas especies viven cerca del fondo marino y el resto son especies nectónicas (se
encuentran en la columna de agua, cerca de las costas o en alta mar). Entre los integrantes de este
grupo encontramos animales muy conocidos como los calamares, las jibias, los pulpos y el Nautilus.
Captura:
Aunque muchas especies se reconocen sólo con observar la concha, es conveniente conservar en medio
líquido la parte blanda del animal ya que la coloración, las branquias, y el sistema nervioso son
estructuras también utilizadas por los taxónomos. Para colectar moluscos marinos se deben prospectar
las depresiones y grietas de las rocas en la costa, sobre todo en marea baja, tamizar la arena y el fango
de las playas, y buscar con dragas o buceando.
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En aguas dulces se pueden encontrar moluscos tanto en lagos como en pantanos y arroyos de corrientes
lentas, dónde se colectan manualmente con red o un pequeño dragado.
En tierra son abundantes los caracoles y babosas que están ampliamente distribuidos y se colectan
manualmente sobre todo por la noche, dados sus hábitos nocturnos.
Conservación de conchas:
Es necesario extraer los tejidos blandos.
Los caracoles se pueden matar
sumergiéndolos en agua hirviendo,
después se enfrían, lavan y se les extrae la
masa visceral con pinzas o usando un
gancho.
Una vez limpias se pueden lustrar las
conchas frotándolas con aceite mineral
(no vegetal).
En taxonomía es útil el estudio de la
rádula, que se prepara del siguiente
modo:
1. Extraer la rádula.
2. Lavar repetidas veces.
3. Situar entre dos portaobjetos y pasar por una serie ascendente de alcoholes (20 minutos en cada
paso) de 35º, 50º, 70º, 96º.
4. Cambiar a alcohol absoluto y aclarar con xilol
5. Separar los portaobjetos, extraer la rádula y montarla en bálsamo de Canadá
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PRÁCTICA No. 2
Phylum Porífera: esponjas
INTRODUCCIÓN
Características Generales y Clasificación taxonómica.
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OBJETIVO
Reconocer por medio de algunos representantes, las diferentes formas
estructurales y tipos de esqueleto de las esponjas mediante la utilización de
material fijado y preparaciones de los mismos.
Porta y cubreobjetos.
Agujas de disección.
Navajas y / o Bisturí.
Tubo de ensaye.
Cajas de Petri
Pipetas Pasteur con bulbo
Mechero Bunsen o Lámpara de Alcohol.
Ácido Clorhídrico diluido o ácido acético.
Ácido Nítrico.
Alcohol de 90 %.
Safranina-eosina
Agua destilada.
Hipoclorito de Sodio (cloro comercial).
MATERIAL (por equipo)
Microscopio estereoscópico y compuesto.
TRABAJO PRÁCTICO A REALIZAR
1. Estudio de la morfología externa y estructura interna de esponjas.
2. Se realizará un estudio de las estructuras esqueléticas presentes en el
grupo observándose preparaciones microscópicas de espículas y fibras de
espongina.
DESARROLLO
A. Observación de formas estructurales.
Con el material de esponjas que se te facilite, observa: ósculos, ostiolos, forma
color y consistencia (rígida o esponjosa) y elabora esquemas con las estructuras
observadas.
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B. Observación del tipo de esqueleto
a. Naturaleza química del esqueleto. A un pedazo de esponja agrégale unas gotas
de ácido clorhídrico diluido o ácido acético, si la esponja se desintegra, quiere
decir que es de naturaleza calcárea.
b. Observación de espículas calcáreas: Corta una muy pequeña porción de la
esponja y aplica el siguiente procedimiento:
i. Adiciona a una pequeña porción de esponja, hipoclorito de sodio en solución al
5% (cloro comercial).
ii. Calienta y deja en ebullición hasta que el material orgánico se haya
desintegrado, esperar a que se enfrié.
iii. Resuspende la solución y pasa una gota a un portaobjetos para observar al
microscopio las espículas.
c. Observación de espículas de sílice.
i. A un trozo de esponja agrégale un poco de ácido nítrico concentrado y ponlo a
hervir durante dos minutos.
ii. Deja enfriar y observa al microscopio.
d. Observación de fibras de espongina.
i. Lava una pequeña y muy delgada porción de la esponja con agua dulce y seca.
ii. Añade unas gotas de safranina-eosina.
iii. Observa al microscopio.
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Con base en lo observado contesta:
Si es una espícula calcárea o de sílice_________________________________
¿Cuántos ejes presenta?___________________________________________
¿Cuántos radios presenta?_________________________________________
CUESTIONARIO
1. ¿Qué importancia tiene la espongina y las espículas para la esponja?
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2. ¿Qué tipo de espículas presentan estas esponjas?
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Menciona las Clases en que se clasifica el Phylum Porífera en México y sus
características
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En el esquema de la siguiente página, se muestra una esponja típica y el recorrido
del agua por su interior. Al producirse el batido del coanocito, la esponja toma
agua a través de sus poros y la expulsa por el ósculo.
Básicamente, una esponja se puede semejar a una pelota gelatinosa con zonas
de bombeo de agua, que circula por el interior gracias a la red de canales y el
esqueleto que sujeta el conjunto. Las células se disponen en tres capas en el
cuerpo.
El Pinacodermo: es la capa exterior y la más simple de todas y a diferencia del
tejido epitelial de otros animales, en las esponjas no hay una lámina basal ni
uniones intercelulares. Las células que se encuentran en ella son llamadas
pinacocitos y pueden ser de varios tipos.
El mesohilo o mesoglea, es la capa intermedia de la esponja es un tejido
conjuntivo que se encuentra bajo el pinacodermo y está formada por una matriz
gelatinosa protéica en la que localizamos células ameboides que segregan el
esqueleto de la esponja. Este esqueleto, puede ser orgánico o inorgánico, hace la
función de soporte celular y es bastante complejo, ya que puede estar formado por
espículas calcáreas, silíceas, fibras de una sustancia protéica llamada espongina
o una mezcla de las dos últimas.
El coanodermo es la capa más interna, está formado de células especializadas
llamadas coanocitos, de forma ovoide y sujetos en su parte basal por un soporte
filamentoso. Cada célula en su parte superior lleva un collar de prolongaciones
digitiformes o microvilli que rodean a un largo flagelo. Estas células tapizan la
cavidad interna de las esponjas asconoides, y la juvenil de las calcáreas, los
coanocitos producen las corrientes de agua mediante el batido de los flagelos que
apuntan y convergen hacia la zona de salida de la esponja, los coanocitos recogen
el alimento mediante la filtración que se produce en su microvilli que
posteriormente es fagocitado.
18

Tipos morfológicos de esponjas
Asconoide: estas esponjas tienen la capa externa o pinacodermo perforada por
muchos orificios pequeños llamados ostiolos o poros inhalantes que comunican
con el espongocele o atrio que es una cavidad interior tapizada por coanodermo,
que se abre al exterior por un poro de mayor tamaño llamado ósculo. Son por lo
general esponjas pequeñas, como las calcáreas,
Siconoide: es un nivel de organización más evolucionado y complejo, presentan
un plegamiento de la pared del cuerpo, formando una especie de sacos que
penetran en el cuerpo de la esponja desde el exterior (canales incurrentes) y una
21

serie de evaginaciones que se proyectan al exterior desde el espongocele
(canales radiales o inhalantes) El coanodermo se encuentra ramificado y forma
canales radiales o flagelados al interior del cuerpo, consiguiendo así una
capacidad de bombeo mayor. Los diferentes tipos de sacos están conectados por
unos pequeños poros llamados prosópilos, equivalentes a los poros inhalantes de
las asconoides.
Leuconoides: son las esponjas con un sistema de canales más complejos y
evolucionados. Los canales flagelados se han transformado para originar una
serie de cámaras vibrátiles, de coanocitos o flageladas, donde se encuentran los
coanocitos. El agua entra atravesando los ostiolos y se dirige a los canales
incurrentes ramificados, desemboca en las cámaras flageladas y sale atravesando
otro poro el apópilo. Desde aquí pasa a los canales excurrentes cubiertos por
pinacocitos y otros poros internos se van engrosando a medida que se unen hasta
que por medio del canal más grueso sale al exterior por el ósculo. El mesohilo es
bastante grueso y los porocitos se encargan de formar los ostiolos, apópilos. La
mayoría de las esponjas pertenecen a éste nivel de organización más complejo,
pueden tener formas incrustantes, masivas, lobuladas erectas, etc.
22

Las espículas son de formas muy variadas, se usan para identificar las especies
atendiendo a cinco características:
-Composición química, diferenciando entre calcáreas y silíceas
23

-Tamaño, distinguiéndose entre megascleras (entre 100-1000 micras) y
microscleras (entre 10 y 100 micras). Las primeras forman el diseño del esqueleto
y las segundas las partes más blandas del animal.
-Fusión de las espículas, generalmente se encuentran solitarias y distribuidas
por el mesohilo, pero a veces se fusionan unas a otras.
-Distribución de las espículas, la localización de las espículas en determinadas
zonas es un fenómeno común. Es posible encontrar así espículas corticales en los
canales principales o dentro de las fibras de espongina, auxiliares (fuera de las
fibras) o accesorias (perpendiculares a las fibras, a modo de púas)
-Geometría de la espícula dada la gran variedad de formas, este carácter es el
principal para determinar las especies en numerosas ocasiones. Así las
megascleras se clasifican atendiendo a:
-Número de ejes: hay espículas monoaxónicas, triaxónicas y
tetraxonas con uno tres y cuatro ejes.
-Número de radios: monoactinias (un radio con una zona de
crecimiento, siendo los dos extremos por tanto asimétricos) diactinas
(un radio con dos zonas de crecimiento, siendo los extremos
simétricos) o tetractinas (con dos radios creciendo por sus extremos)
24

Además de las espículas y las fibras de colágeno características del tejido
conjuntivo, en algunas especies existen fibras de espongina. Cuando aparecen
éstas, las espículas se encuentran inmersas entre las fibras que son las que
forman el esqueleto principal e incluso en muchas esponjas las espículas han
desaparecido. Estas fibras son de varios tamaños y se pueden diferenciar así
entre primarias, secundarias y terciarias, presentando además varios tipos de
ramificación que sirven para su clasificación.
26

Esponjas de mar
Clionidae, familia a la que pertenece Cliona celata, esponja perforante. Esta especie desde larva,
se asienta sobre rocas, conchas o corales, retira el carbonato cálcico del sustrato y va
introduciendo su cuerpo en el mismo; una vez alcanzada cierta profundidad pasa a desarrollar una
forma masiva cubriendo el sustrato por completo. Es una esponja fácil de identificar por su color
amarillento, con tonos verdosos en ocasiones y sus ósculos dispuestos en fila, además de tener
papilas inhalantes tubulares cortas (fotografía GEAS)
27

Axinelidae: son esponjas muy características por su forma erecta, erguida, pedunculada o ramificada. La más
común Axinelia polypoides, tiene forma arborescente, con ramas cilíndricas de extremos redondeados, es de
color amarillo (fotografía David Serrano)
Hymeniacidonidae: a esta familia pertenecen esponjas coloniales e incrustantes, como Hymeniacidon
sanguínea de color rojo fuerte, coloniza grietas de las rocas, creciendo incluso sobre algas calcáreas.
(Fotografía Juan Luis Méndez)
Halichondridae, familia a la que pertenece el “pan de gaviota”, Halichondria panicea, de color pálida,
incluso grisácea o verdosa, pero ligeramente más gruesa que la anterior. (Fotografía Juan Luis Méndez)
28

GLOSARIO
-Arqueocito: Célula del mesohilo que tiene la capacidad de transformarse en
otros tipos celulares
-Ascón: Nivel básico de organización corporal de una esponja
-Atrio: Cavidad inferior de las esponjas
-Coanocito: Célula provista de un collar en forma de embudo que rodea la base
de un flagelo
-Coanodermo: Capa interna de las esponjas provista de células flageladas,
también recibe la denominación de coanosoma
-Esclerocito: Célula encargada de la formación de las espículas
-Espículas: Esqueleto microscópico de las esponjas. Pueden ser de sílice o de
carbonato cálcico
-Espongina: Compuesto que forma el esqueleto de algunos tipos de esponjas
como la de baño.
-Espongocele: Cavidad o sistema de cavidades
-Leucón.: Grado más alto de complejidad estructural de las esponjas, los canales
radiales se pliegan para formar cámaras
-Mesohilo: Matriz proteínica de consistencia gelatinosa
-Ósculo: Orificio mayor de las esponjas y por donde sale el agua ya filtrada.
-Ostiolo: Abertura de la pared corporal por la que penetra el agua
-Pinacodermo: Capa exterior de las esponjas
-Pinacocito.: Célula con forma de placa del epitelio dérmico de las esponjas
-Porocito: Célula porosa
-Reproducción asexual: Forma de reproducción que consiste en que un solo
individuo (progenitor) produce nuevos descendientes (ejemplo: las esponjas). Las
especies que poseen reproducción asexual también realizan la reproducción
sexual.
-Reproducción sexual: Forma de reproducción en la que se necesitan dos
individuos para producir nuevos descendientes. En este caso se habla de
individuos de sexo masculino (los que producen espermatozoides) y de sexo
femenino (los que producen óvulos). Todos los invertebrados poseen reproducción
sexual.
-Sésil: Animal que vive fijo en fondo marino o sobre una roca, alga u otro animal
(ejemplo: las esponjas).
-Sycon.: Primeras etapas de plegamiento de la pared corporal de las esponja
-Taxones: Cada una de las categorías en las que los taxónomos agrupan a los
seres vivos: Reino, Filum, Clase, Orden, Familia, Género y Especie.
-Taxonomía: Rama de la Biología que se ocupa de clasificar a los seres vivos.
Para ello utiliza unas categorías denominadas taxones.
-Taxónomos: Las personas que clasifican a los seres vivos.
29

PRACTICA No. 3
Phylum Cnidaria: hidras, medusas, anémonas, corales
INTRODUCCIÓN
Características Generales y Clasificación taxonómica.
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OBJETIVO
Reconocer las características morfológicas distintivas deL Phylum Cnidaria
mediante la observación de representantes del grupo.
Agujas de disección.
Pinceles.
Cajas de Petri.
Pinzas
Porta y cubre objetos
Bisturí y / o navaja
Guantes desechables
Cubre bocas
MATERIAL (por equipo)
Microscopio estereoscópico y compuesto.
Muestras de plancton marino.
Muestras de Corales y de Anémonas.
DESARROLLO
A. Mediante observación al microscopio de muestras de zooplancton marino trata
de identificar y separar Cnidarios.
B. Con base en sus características morfológicas trata de definir la clase a la que
pertenece el organismo que estas observando: fase Pólipo o Medusa; Medusa con
o sin velo (Hidrozoa o Sciphozoa)
31

Hidras
33

Fragata portuguesa Foto: David Tafolla Venegas
1. Clase Hidrozoa:
Uno de los hidrozoarios más comunes en las costas Michoacanas es una especie
parecida a la Physalia (fragata portuguesa). Esta es una colonia compuesta de
individuos medusoides y polipoides modificados, en la mayor parte de los cuales
se aprecia un grado notable de polimorfismo, presenta además, un saco de gas
que actúa como flotador para toda la colonia.
Si tienes un ejemplar de esta especie, trata de identificar los diferentes tipos de
pólipos especializados.
34

Aurelia aurita
2. Clase Sciphozoa:
Foto: Alva Acuña Luviano
Agrupa a las conocidas como verdaderas medusas son medusas marinas muy
grandes vistosas y peligrosas, domina la fase medusa , normalmente con una fase
pólipo muy reducida o inexistente pertenece a esta clase la medusa luna Aurelia
aurita muy frecuente en el mediterráneo.
a. Localiza la exumbrella y subumbrella
b. ¿Presenta margen festonado?_____________________________________
c. ¿Qué estructuras se observan en la subumbrella?_____________________
d. Ubica tentáculos, velo, manubrio y boca. (Realiza esquemas)
e. ¿En donde se localizan las gónadas?_______________________________
35

Actinia equina
3. Clase Anthozoa:
Todos los representantes de esta clase son pólipos, nunca presentan el estadio
medusa incluye corales, madréporas, actinias y anémonas de mar. Algunos
organismos viven de forma aislada y otros forman colonias como los corales y las
gorgonias.
a. Pólipo colonial o solitario_________________________________________
a. Forma de la colonia_____________________________________________
b. Si se observan pólipos, indica cuantos tentáculos presentan_____________
c. ¿Como esta conformado el esqueleto?______________________________
d. ¿Es posible observar la medula y corteza?___________________________
36

Anémonas
37

Diversidad de corales
Realiza esquemas de las tres clases con los organismos observados
CUESTIONARIO
1. Menciona cuatro características que diferencian a los hidrozoos de las otras
clases de Cnidarios.
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____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
2. ¿Qué importancia ecológica y económica tienen los Corales
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
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____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
38

A. Physalia, la fragata portuguesa es un sifonóforo muy grande, con flotador
horizontal y sin campana natatoria.
B. Parte de una colonia de fragata portuguesa
Fotografía cortesía de la New York Zoological Society, B. Según Lane.
39

Pelagia noctiluca es una medusa de hábitat pelágico
Pertenece a la Clase Sciphozoa:
Clase Sciphozoa:
(Aurelia aurita) fotografiado en Monterey Bay Aquarium.
1. Photo by | Talk Dante Alighieri
40

La clase Anthozoa es la clase más diversa cuenta con especies polipoides,
solitarias o coloniales, que nunca pasan por la fase medusa.
Coral cerebro Arrecife de coral
41

Gorgonia (detrás) y castañuela (Chromis chromis) delante
Pennatula phosphorea Col. del Museo Nacional de Ciencias Naturales
No. Cat. 2.04/950. Es un coral colonial plumoso
42

Coral Arborescente: colonia típica de los Gorgonáceos (coral rojo)
Corallium rubrum. Col. Museo Nacional de Ciencias Naturales (No. De
cat.2.04/173)
Anthopleura xanthogrammica Es un Antozoo
De la Subclase Hexacoralaria Orden Actinaria
43

Estructura de una anémona marina A. Sección longitudinal. (Barnes, 1995)
Estructura de una anémona marina. B, Corte transversal a nivel de la faringe
(Barnes, 1995)
44

Anémonas
45

Anémona incrustante
GLOSARIO
-Amebocito: Cualquier célula que es capaz de moverse mediante pseudópodos
-Cavidad gastrovascular: Cavidad digestiva con una sola abertura
-Celenterón: cavidad interna
-Cenénquima: Tejido que une los pólipos o zooides de un coral
-Cenosarco: Parte viva de un pólipo colonial
-Cnidocito.: Célula que alberga al nematocisto
-Craspedota: Que cuenta con un velo
-Exumbrela: Superficie convexa superior de una medusa
-Gastrodermis: Revestimiento de la cavidad digestiva
-Gastrozooide: Pólipo de tipo alimenticio
-Hipostoma: Prominencia en la que se localiza la boca en los pólipos de los
hidrozoos.
-Manubrio: Elevación de forma cónica del extremo distal de los pólipos de los
hidrozoos.
-Medusa. Etapa libre del ciclo de vida de muchos cnidarios, tiene forma de
sombrilla
-Mesoglea: Capa localizada entre la epidermis y la gastrodermis
-Pólipo: Etapa sésil del ciclo de vida de los cnidarios
-Nematocisto. Aguijón con forma de filamento que contiene una sustancia
46

paralizante o venenosa
-Reproducción alternante: Modo de reproducción de algunas especies de
cnidarios en los que alternan una fase pólipo (vida fija) con una fase medusa (vida
libre).
-Sésil: Animal que vive fijo en fondo marino o sobre una roca, alga u otro animal
(ejemplo: los pólipos).
-Simetría radial. A través del eje longitudinal que pasa por la boca el cuerpo del
animal puede ser dividido en mitades iguales por más de dos planos.
-Subumbrela: Superficie cóncava interna de la campana medusoide
-Teca: Cubierta protectora
-Velo: Membrana que se proyecta hacia el interior desde el borde de la campana
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PRACTICA No. 4
Phylum Platyhelminthes: platelmintos (gusanos planos)
INTRODUCCIÓN.
Características Generales y Clasificación taxonómica.
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OBJETIVOS
-Estudiar la morfología de especies representativas de Platelmintos de vida libre y
parásitos
- Determinar las características diferenciales entre las clases del grupo.
MATERIAL
Microscopio estereoscópico y compuesto.
Cubreobjetos y portaobjetos.
Bisturí
Pinzas
Cajas de Petri
Tijeras de disección
Pinceles
Guantes desechables
Cubrebocas
Azul de metileno.
Material vivo y preparaciones permanentes de platelmintos.
Hígado de res.
Vísceras de res sin lavar (recién extraídas del animal).
CLASE TURBELLARIA. (Planaria)
DESARROLLO
Se estudiarán preparaciones de ejemplares completos en donde se observará la
estructura general, diferenciando la región cefálica (cabeza) con forma triangular y
2 aurículas laterales en las que se concentran gran cantidad de células
sensoriales. En la región cefálica se observan un par de ocelos u ojos, a modo de
manchas de color negro. En la región media ubicar la faringe, encerrada en una
bolsa o vaina faríngea. Se encuentra invaginada en el interior del cuerpo, pero es
49

evertida cuando el animal se alimenta. La mayoría de los órganos internos se
encuentra bajo las ramas del aparato digestivo, que se observan claramente. El
aparto digestivo de estos animales está formado por tres ramas: un ciego anterior
y 2 ciegos posteriores, uno a cada lado de la faringe de forma lobulada y
arborescente.
Es necesario diferenciar la zona dorsal de la ventral por medio de la epidermis
ciliada en la parte ventral. Debe localizarse la musculatura circular, longitudinal y
haces de musculatura dorso-ventral.
Si se cuenta con material fresco, coloca una planaria en un portaobjeto y encima
de este un cubreobjeto, para la observación de los cilios. ¿Se distribuyen
uniformemente en la superficie del cuerpo?_________________
A B
Sistema excretor (A) y sistema nervioso (B) de una planaria.
50

Vista lateral de la faringe evaginada de la planaria, para alcanzar una masa de
comida (Tomado de Barnes, 1995).
Anatomía de una planaria tipo
Realiza esquemas de lo observado.
51

Fasciola hepática o (duela del hígado)
Parte izquierda Parte derecha
CLASE TREMATODA. Fasciola hepatica (Duela del Hígado)
Esta especie presenta la forma foliácea característica, con la parte anterior
sobresaliente y en forma de cono. En su extremo se puede observar una Ventosa
oral, no muy definida, que rodea la Boca. Algo más abajo, en la base del cono, se
encuentra la Ventosa ventral (visible cambiando el enfoque con el micrométrico).
La boca comunica con un Faringe bulbosa de la que parten 2 ramas intestinales
muy ramificadas (enmascaradas por el reproductor en la mayoría de las
preparaciones).Por detrás de esta bifurcación, y situada entre las 2 ventosas,
podemos observar la región del atrio genital común, donde (en ciertas
preparaciones) se puede diferenciar un Cirro, en ocasiones evaginado, y la
porción final del útero, cargada de huevos de color oscuro.
Por detrás de la ventosa ventral se aprecia el tramo proximal del útero cargado de
huevos (le dan una coloración variable, desde casi transparente a pardo oscuro).
Debe observarse el Ovario, de pequeño tamaño y con una estructura digitiforme
que confluye, junto con el útero, en una zona media del cuerpo denominada
52

Ootipo. Este ootipo está rodeado por las glándulas de Mehlis, que desembocan en
el mismo. Al ootipo también llegan unos conductos que atraviesan
transversalmente el cuerpo (= Conductos vitelógenos) y proceden de las
Glándulas vitelógenas (dos masas racimosas que recorren los laterales del
cuerpo). Rodeados por estas glándulas se encuentran dos desarrollados testículos
que ocupan casi los dos tercios finales del animal.
53

Dibuja lo observado.
54

CLASE CESTODA. (Taenia sp.)
Son platelmintos parásitos muy modificados morfológicamente. Presentan un
mecanismo de anclaje anterior o escólex compuesto por varias ventosas y
ganchos. El cuerpo está compuesto por una serie de unidades denominadas
proglótides que se desarrollan en la parte del cuello justamente posterior al
escólex, siendo por tanto las proglótides más viejas (maduras) las más alejadas
del escólex. (El conjunto de las proglótides o “cuerpo” es denominado estróbilo).
Estos animales no poseen aparato digestivo ya que se alimentan absorbiendo los
nutrientes a través del tegumento.
Se estudiará una preparación que presenta 3 porciones del animal. Una anterior
donde deben observarse las ventosas, el rostelo, armado de ganchos en su
periferia, y el cuello, a partir del cual se producen por estrobilación proglótides
jóvenes. Es aconsejable comparar la estructura inmadura de estas proglótides con
las de las otras porciones del animal.
55

En la porción con proglótides maduras debe observarse con detalle la estructura
de una de ellas que son más estrechas en la porción anterior. En uno de los lados
se observa un poro genital (Gonoporo), al que llegan 2 conductos desde la línea
media del cuerpo. El más anterior es el espermiducto que es grueso y se presenta
replegado, se ramifica en la zona central de la proglótide para comunicar con los
conductos eferentes que parten de la multitud de pequeños testículos, que se
pueden diferenciar por toda la proglótide. El conducto posterior, de los que
desembocan en el poro genital, corresponde en realidad a una larga vagina que se
prolonga hacia la parte central posterior de la proglótide. En esa zona deben
diferenciarse 2 masas correspondientes al ovario, una posterior que es la glándula
vitelógena y un útero grande, en posición central, que se extiende hacia la parte
anterior. En la porción con proglótides grávidas, se observa el útero cargado de
huevos que ocupa prácticamente la totalidad de la proglótide.
En las porciones con proglótides deben identificarse los conductos excretores
longitudinales, localizados a ambos lados y comunicados entre sí por canales
transversales, situados en la parte posterior de cada segmento.
56

Escólex de Tenia, el último esquema presenta corona de ganchos.
Anatomía generalizada de escólex
57

Taenia saginata adulta Detalle de Proglótido
Dibuja lo observado
Parte anterior de Taenia Pisciformis
58

CUESTIONARIO
1. ¿Con base en el material observado y la consulta bibliográfica, enumera las
diferencias entre un platelminto de vida libre y un parásito?
VIDA LIBRE PARASITO
1________________________________ 1____________________________
2_________________________________2____________________________
3_________________________________3____________________________
4_________________________________4____________________________
5_________________________________5____________________________
2. Menciona las características (Comunes o similares) a los organismos de las
tres Clases observadas dentro del Phylum.
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
GLOSARIO
-Cercaria: larva final de los platelmintos digenéticos de forma oblonga y con
apéndice caudal.
-Cisticerco: estado larvario que consta de un saco lleno de fluido que contiene
un escólex invaginado.
-Cucúrbitas: anillos grávidos repletos de huevos de los cestodos.
-Escólex: extremo anterior de una tenia
-Estróbilo: conjunto de proglotidios de una tenia
-Germario: una división del ovario de los platelmintos
-Metacercaria: estadio larvario posterior a la cercaria
-Miracidio: primera larva de los platelmintos digenéticos
-Oncomiracidio: forma inmadura ciliada de los monogéneos
-Opisthaptor: ventosa o disco posterior de los tremátodos
-Proglotidios: segmentos corporales de una tenia
-Prohaptor: órgano adhesivo anterior de los trematodos
-Rabdito: cuerpo corto, con forma de bastón, de las células epidérmicas de los
turbelarios
-Redia: estadio larval de ciertos trematodos
-Vitelario: una división del ovario de los platelmintos.
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PRACTICA No. 5
Phylum Rotifera
INTRODUCCIÓN.
Características Generales y Clasificación taxonómica.
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OBJETIVOS.
1. Estudiar la morfología de especies representativas de rotíferos
2. Manejar las diferentes técnicas de narcotización, fijación y montaje de
Formol
Rojo neutro
laminillas.
MATERIAL (por equipo).
Mentol, sulfato o cloruro de magnesio, hidrato de cloral o aceite de clavo
Bálsamo de Canadá
Glicerina o Agar
Microscopio compuesto y estereoscópico
Cajas de Petri
Vidrios de reloj
Pipetas Pasteur con bulbo
Muestras frescas de organismos
DESARROLLO
Los Rotíferos son organismos microscópicos comunes y abundantes en ambientes
dulceacuícolas. En la preparación de estudio aparecen ejemplares de la Clase
Bdelloidea. Estos ejemplares presentan un cuerpo cilíndrico y alargado dividido en
3 regiones: Cabeza, Tronco y Pie.
En el extremo anterior debe diferenciarse la corona de cilios, corona, que es la
estructura que utilizan para la locomoción y la obtención de alimento mediante la
creación de corrientes de agua que conducen las partículas hacia la boca. En
muchos ejemplares se observan los 2 discos trocales que conforman esta corona.
61

EL tronco es una región notablemente ensanchada respecto al resto del cuerpo, y
se adelgaza en su región posterior para formar el pie. Éste es largo, telescópico y
lleva, en su base, espolones.
La boca abre por detrás de la corona y conduce a la región faríngea muscular que
contiene el aparato masticador característico del grupo, el Mástax. A grandes
aumentos se distinguen un conjunto de piezas más teñidas que son realmente las
que conforman este mástax.
En posición posterior a la faringe se encuentra el esófago, rodeado por las
glándulas salivares. Internamente en el tronco se diferencia con facilidad el
estómago como una estructura sacciforme y voluminosa. De forma superpuesta
al estómago se encuentran los ovarios o germovitelarios. En ejemplares que se
encuentran en visión lateral, en la región dorsal cerca de la corona se puede
distinguirla antena dorsal, órgano sensorial impar culminado por sedas
sensoriales.
OBSERVACIÓN.
a. Observaciones en vivo. En laboratorio, para observar al estereoscópico se
colocan gotas de muestra en un portaobjetos con la ayuda de una pipeta y se le
agrega rojo neutro para observar mejor. Si los movimientos de los organismos aun
son rápidos, podemos narcotizar (ver párrafos adelante narcotización) o emplear
soluciones acuosas más viscosas como glicerina o agar.
Mediante la realización de dibujos esquemáticos y con el apoyo de los de las
figuras, identifica y describe las estructuras corporales de los organismos tales
como, corona ciliar, boca, faringe o mástax y células en flama del sistema
excretor, trata de identificar el sexo de los ejemplares a través de las
características del germovitelario. Observa sus movimientos y formas de captura
de partículas (alimentación).
62

Narcotización y fijación. Para aislar a los organismos se dejan los frascos que
contienen las muestras destapados en dirección a la luz. Al consumirse el oxígeno
se concentrarán hacia la superficie del agua para retirarlos mediante pipetas
posteriormente.
Para la observación de lóricas pueden fijarse directamente en formol al 10% (la
contracción producida facilita la observación de esta estructura)
En el resto de los casos es preferible antes de fijar narcotizar. A continuación se
enlistan algunos narcóticos que podemos utilizar opcionalmente y su forma de
aplicación:
Acetona.: agregando gota a gota a pequeños volúmenes de agua.
Cloruro de Magnesio al 2.5 %. Aplicar unas gotas después de diluirlo en agua
corriente.
Hidrato de Cloral al 10%. Aplicar unas gotas después de diluirlo en agua corriente.
Mentol en solución saturada. Aplicar gota a gota.
Se recomienda narcotizar en vidrios de reloj o cajas de Petri.
Luego de cualquier proceso de narcotización se conservan en formol al 10%.
Preparaciones permanentes. El montaje de preparaciones permanentes se lleva
a cabo en Bálsamo de Canadá o resina añadiéndose en gotas. Los ejemplares
pueden colorearse con rojo neutro o hematoxilina de Delafield o Erlich.
63

CUESTIONARIO
1. ¿En las muestras analizadas, que proporción de machos y hembras
observaste?, ¿Por qué se da esta?
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
____________________________________________________________
2. Esquematice las diferentes formas de mástax observadas en los Rotíferos.
3. Describa algunas las formas de movimiento de los
Rotíferos_____________________________________________________
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A continuación se muestran fotografías de algunos rotíferos
Asplachna Brachionus
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Conochilus Euchlanis
Kellicottia Keratella
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Ptychura Rotatoria
Synchaeta Testudinella
GLOSARI0
-Corona: Es la estructura que utilizan los rotíferos para la locomoción y la
obtención de alimento mediante la creación de corrientes de agua que conducen
las partículas hacia la boca.
-Tronco: es una región notablemente ensanchada respecto al resto del cuerpo, y
se adelgaza en su región posterior
-Pie. Estructura larga y telescópica del cuerpo de los rotíferos, lleva, en su base,
espolones.
-Mástax: aparato masticador característico del grupo
-Antena dorsal, órgano sensorial impar de rotíferos culminado por sedas
sensoriales
-Germovitelarios: estructura superpuesta al estómago donde se almacenan los
huevos.
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PRACTICA No. 6
Phylum Acantocephala: acantocéfalos
INTRODUCCIÓN.
Características Generales y Clasificación taxonómica.
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OBJETIVOS.
1. Conocer la morfología externa e interna del grupo.
2. Aprender las técnicas de colecta, fijación y realización de preparaciones
permanentes.
Microscopio estereoscópico y compuesto
Cajas de Petri
Porta y cubre objetos
Pinzas de disección
Bisturí
Guantes desechables
Cubrebocas
Agujas de disección
Tijeras de disección
MATERIAL (Por equipo)
Formol al 10% ó alcohol al 70% (alcohol 96ª)
Agua destilada
Alcohol etílico absoluto
Bálsamo de Canadá
Carbonato de litio
Creosota
Xilol
Hematoxilina (de Delafield o de Ehrlich)
Paracarmin de Mayer
Material fresco: chapulines, grillos, cucarachas de campo, peces, vísceras de
pollo, acantocéfalos recolectados en el rastro.
DESARROLLO
Acantocéfalos.
a. Colecta. Visita el rastro de tu localidad equipado con guantes, frascos grandes
de boca ancha, estuche de disección, pinzas largas, fijadores y si es posible con
71

otas de plástico. Revisa las vísceras de cerdo y /o vacas, removiendo los tejidos
con pinzas y agujas de disección. Si encuentras algún organismo, colócalo en un
frasco con agua.
b. Fijación. Los acantocéfalos se refrigeran de 3 a 8 hrs en agua destilada para
que relajen la proboscis y la evaginen. Posteriormente se procede a la fijación de
los ejemplares. Los animales de gran tamaño se pueden fijar directamente en
alcohol o formol.
c. Observación. Un acantocéfalo hallado comúnmente en el rastro es
Macracanthorhynchus hirudinaceaus, es importante observar, su forma de
implantación y lo que esta produce en los tejidos del hospedero. Ya en el
laboratorio, antes de proceder a la disección del organismo se observa la
morfología externa, diferencias entre hembras y machos.
La disección se realiza bajo el microscopio estereoscópico iniciando con un corte
longitudinal del organismo, iniciando en el extremo anterior para observar los
ganchos de la proboscis. Una vez terminado el corte se estira el organismo
fijándolo a una superficie plana (lamina de hielo seco)
En el interior de la hembra observarás, material granular que corresponde a
huevos que suelen ser numerosos y las masas ovígeras grandes en tamaño.
Sepáralas y disuélvelas en solución salina y prepara una laminilla para
observación. La larva acantor se ve a través de las envolturas del huevo, pero
para su mejor observación presiona sobre el cubreobjetos con una aguja de
disección con el fin de que la larva sea liberada. Descríbela y realiza esquemas.
Disección de peces para obtención de Acantocéfalos.
Coloca el pez en una charola de disección y realiza una incisión ventral desde la
región a anal hasta la cefálica (con tijeras), retira el tracto digestivo cortando desde
72

el esófago hasta su terminación el ano y colócalo en una caja de Petri con agua o
solución salina al n7%. Extiende el tracto digestivo retirando los mesenterios y
restos de tejidos que lo mantienen unido entre si y con otros órganos.
Revisamos adentro y afuera desgarrando con agujas de disección. Al encontrar
algún acantocéfalo, anota el órgano sobre el que se encuentra, tamaño, color y
movimientos. Observa detalles de la armadura de la proboscis y del tronco.
Realiza esquemas.
Los organismos pequeños (unos mm hasta 5 o 6 cm) se aplanan ligeramente
entre porta y cubreobjetos para hacer la preparación temporal, utilizando como
medio de montaje el agua destilada, esta agua se elimina por absorción.
Posteriormente procede a sumergir la laminilla en el fijador (Bouin o AFA) en una
caja de Petri de 12 a 24 hrs, manteniéndola tapada para evitar la cristalización y/o
evaporación del fijador. Pasado este tiempo, se desmontan los organismos y se
dejan libres en el fijador por otras 24 hrs. Al final se lavan con alcohol hasta que
pierdan el color del fijador para posteriormente mantenerlos fijados en alcohol al
70%.
Todos los ejemplares deben ir acompañados de sus respectivos datos.
Tinción.
Posterior a lo anterior se puede proceder si así se desea a la tinción de los
ejemplares para lo cual existen dos métodos.
1. Hematoxilina (Erlich o Delafield)
- Deshidratar en alcoholes graduales 50 y 30% (5 a 10 min.)
- Agua destilada (5 a 10 min.)
- Teñir en hematoxilina (checar tiempo)
- Lavar con agua destilada
- En caso de sobretinción, decolorar con agua acidulada al 2% con HCl
73

- Lavar en agua de la llave o carbonato de litio
- Deshidratar hasta alcohol etílico absoluto (10 min.)
- Montar.
2. Paracarmin de Mayer
- Colocar en alcohol del 96% (5 a 10 min.)
- Teñir con Paracarmin de Mayer (checar tiempo)
- Lavar en alcohol al 96%
- Si hay sobretinción, decolorar en alcohol 96% acidulado al 2% con HCl.
- Lavar en alcohol 96% por 5 min.
- Deshidratar en alcohol etílico absoluto
- Montar
CUESTIONARIO.
1. ¿Qué particularidades presentan los acantocéfalos?
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2. Describe las estructuras de alimentación de los acantocéfalos.
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Fotografía: Sofía Escoto Hernández/Banco de imágenes CONABIO
GLOSARIO.
-Acantor : es una larva fusiforme de espinas y en la parte anterior tiene ganchos.
Esta larva se desarrolla en el tracto digestivo del huésped intermediario y luego
penetra las paredes de este tracto llegando a la cavidad del cuerpo donde se
convierte en acantela.
-Acantela: en esta etapa es notable la probóscide, saco de la prob2scide y
órganos reproductores.
-Citacanto: se forma al enquistarse la acantela.
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PRACTICA No. 7
Phylum Mollusca: moluscos
INTRODUCCIÓN.
Características Generales y Clasificación taxonómica.
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OBJETIVOS
Establecer características diferenciales de las clases más sobresalientes
del Phylum Molusco (Gasterópodos, Bivalvos, Poliplacóforos,
Cephalópodos, Monoplacóforos, Scaphopodos)
Identificar algunos ejemplares y diferenciar tipos de conchas
Observar la morfología externa e interna de algunos organismos
representativos del Phylum, con el fin de realizar un análisis comparativo.
MATERIALES
Microscopio estereoscópico
Cajas de Petri
Charola de disección
Unicel
Equipo de disección (Bisturí, navaja, alfileres de costura, agujas de
disección, pinzas de relojero y entomológicas, tijeras de disección).
Guantes desechables
Material biológico
METODOLOGÍA
Caracoles de jardín
Caracoles marinos
Conchas de bivalvos, ostiones, almejas, pulpos, calamares, quitones,
y una concha de Nautilus.
La práctica se divide en dos sesiones:
Primeramente se realizará un estudio de la estructura morfológica de las conchas
de grupos de moluscos. Se pretende iniciar al alumno en la terminología básica
para la determinación de ejemplares mediante el estudio de las conchas de
Gasterópodos y Bivalvos. También se realizará un estudio morfológico de
79

ejemplares correspondientes a los Poliplacóforos y se mencionaran las
características morfológicas en un cuadro comparativo de Monoplacóforos
Escafópodos y Cefalópodos.
Estudio de la estructura morfológica de Poliplacóforos.
Se caracterizan por la presencia de un pie bien desarrollado y un aplanamiento
dorsoventral del cuerpo. La cara ventral muestra, en su parte central, el pie
musculoso y cubierto por el epitelio externo. Entre el pie y la pared del cuerpo se
encuentran 2 surcos profundos, uno a cada lado, que forman la cavidad paleal,
en cuyo interior se encuentran los ctenidios o branquias, los orificios excretores
y genitales (ambos son difíciles de observar). En la parte anterior se observa la
boca situada en una pequeña prominencia, en la zona posterior (detrás del
extremo posterior del pie) está el ano.
La cavidad paleal está limitada externamente por un pliegue de la pared del
cuerpo denominado cintura o cinturón.
En la cara dorsal se observan las placas calcáreas en número de 8 (= Ceramas),
colocadas en hilera. Las placas suelen presentar un color mate similar a las rocas
sobre las que viven. La primera y última son semicirculares y las intermedias
aproximadamente cuadrangulares. Las placas están imbricadas entre sí (a modo
de las tejas de un tejado) de manera que la parte posterior de cada una, recubre la
parte anterior de la siguiente.
Foto: Armando Sosa Yáñez
80

Estudio de la estructura morfológica de conchas de Gasterópodo.
Helix sp (Conchas)
En sus ejemplares vivos de Gasterópodos terrestres identifica las
estructuras externas que pueda haber; pie y surco pedal, cabeza, tentáculos
táctiles- bucales o inferiores, tentáculos oculares, palpos bucales, margen del
manto, nefridioporo, ano y neumostoma.
82

Helix sp. La concha típica de un Gasterópodo se puede considerar como un cono
alargado arrollado en espiral alrededor de un eje central, que recibe el nombre de
columnilla o columela. La concha se inicia en el ápice o vértice conformado por
83

las vueltas más antiguas. Las vueltas, cada vez de mayor tamaño, pueden
arrollarse en el sentido de avance de las agujas del reloj (= Concha dextrorsa) o
en el sentido contrario (= Concha sinestrorsa). Para determinar este carácter
basta colocar la concha con el ápice hacia arriba y la abertura hacia abajo y frente
al observador: Si la abertura queda a la derecha de la columnilla, la concha es
dextrorsa; en el caso contrario es sinestrorsa.
Las distintas vueltas de la concha están delimitadas entre sí por un surco llamado
sutura. Al conjunto de todas las vueltas menos la última se le denomina espira.
La última vuelta suele ser mayor a las demás y termina en la abertura de la
concha (impropiamente llamada boca). Todo el borde de la abertura se denomina
peristoma, y su porción libre, es decir, la exterior, es denominada labro. Cuando
el labro se continúa sin interrupción por la parte superior del peristoma y
desciende recubriendo la columela, se dice que el peristoma es completo.
Cuando el labro finaliza en el punto de contacto con el cuerpo de la concha se
denomina peristoma incompleto, quedando el margen interno de la abertura
constituido por la columela.
El peristoma también puede ser entero, es decir, sin que presente ninguna
muesca (= discontinuidad aparente o escotadura que interrumpa su recorrido),
entonces la concha se denomina holóstoma. Otras veces el peristoma está
hendido por una escotadura en forma de canal más o menos pronunciado, el
canal sifonal. Este canal a veces forma un auténtico tubo, que puede ser muy
largo y presentarse recto o curvado. En caso de presentarse un canal sifonal, la
concha se denomina sifonóstoma.
La columela (eje central) puede ser maciza o hueca; en este último caso se abre
por un orificio en la parte inferior de la concha, denominado ombligo. A estas
conchas se las denomina umbilicadas.
La altura de una concha es la longitud de su eje de enrollamiento, y se mide
desde el ápice hasta la base, incluido el canal sifonal cuando existe. La anchura
es la dimensión máxima medida perpendicularmente al eje ápice-base.
84

Para determinar estos parámetros debe colocarse la concha en posición
normalizada, esto es, con el ápice hacia arriba y la abertura hacia abajo y frente al
observador.
La superficie de la concha puede ser lisa o presentar estrías de crecimiento más
o menos finas (siempre paralelas al borde o labro). Además puede presentar
diversos tipos de ornamentación, como espinas, costillas, tubérculos, etc.
Considera la variación dentro de algunas clases e identifica los ejemplares
representativos de la clase Gasterópoda, mediante el uso de claves y bibliografía
especializada
85

Estudio de la estructura morfológica de conchas de Bivalvos.
Se estudiarán los parámetros morfológicos descriptores de una concha de Bivalvo.
Se recomienda realizar esquemas de las conchas analizadas indicando los
parámetros morfológicos.
La concha típica de un bivalvo está constituida por 2 valvas que presentan
exteriormente líneas concéntricas (= estrías de crecimiento), dispuestas
alrededor de una zona denominada umbo o vértice, que representa la parte más
antigua de la concha. Por delante del umbo puede marcarse una zona distinguible,
más o menos ovalada o lanceolar, limitada por un surco (= lúnula). Ésta no
aparece en todas las especies.
Las 2 valvas, que cubren lateralmente el cuerpo del animal, se articulan entre sí
mediante la charnela, que es un sistema de dientes y pequeñas fosetas, que se
encuentran en posición dorsal respecto al cuerpo. La charnela sirve de articulación
para al apertura y cierre de las valvas y evita desplazamientos entre ellas. Según
las características de los dientes que la constituyen se distinguen 2 tipos de
charnelas: o Charnela Taxodonta: Formada por numerosos dientecillos de
tamaño pequeño y bastante uniformes, muy juntos entre sí y alineados en una fila
recta o en arco simétrico respecto al umbo o Charnela heterodonta: Con pocos
dientes, de tamaño muy diferente y dispuestos de forma variable.
Las valvas están unidas entre sí por un ligamento, de color oscuro y naturaleza
córnea que determina la abertura de la concha, oponiéndose a la acción de los
músculos aductores insertos es la cara interna de las valvas. Ese ligamento
puede ser externo o interno. Cuando el ligamento es externo se aprecia
perfectamente desde el exterior aun con las valvas cerradas. Si el ligamento es
interno no puede verse desde el exterior, y las valvas desarrollan estructuras
especiales para albergarlo, las fosetas ligamentarias o condróforos.
88

En lo referente a las características de las valvas podemos realizar una doble
clasificación de las conchas, la primera comparando las 2 valvas que la conforman
y la segunda comparando las porciones de una misma valva. De este modo,
hablaremos de:
(1A) Equivalvas: Cuando las 2 valvas son iguales entre sí, imágenes especulares.
(1B) Inequivalvas: Cuando las 2 valvas no son iguales, no son imágenes
especulares.
(2A) Equilateral: Cuando, en cada valva, las 2 porciones situadas a cada lado del
umbo son iguales.
(2B) Inequilateral: Cuando no son iguales las 2 porciones a cada lado del umbo.
Para determinar estos parámetros habrá de situarse la concha con el umbo hacia
arriba y el borde ventral hacia abajo. Trazando una línea imaginaria desde el umbo
hacia abajo, perpendicular al borde ventral, observaremos si las dos partes son
más o menos iguales (= Valva equilateral), o el caso contrario (= Valva
inequilateral).
El interior de las valvas es en cierto modo reflejo de la anatomía interna del
animal, ya que se pueden localizar gran cantidad de marcas o impresiones
dejadas por estructuras como los músculos y el manto. Las impresiones de los
músculos aductores son típicamente 2, independientes y situadas en posición
anterior y posterior. Según éstas se pueden dividir las conchas en:
- Monomiarias: Con una sola impresión muscular.
- Dimiarias: Con 2 impresiones musculares, que a su vez se diferencian
- Isomiarias u Homomiarias (= las 2 impresiones de tamaño similar) y
- Anisomiarias o Heteromiarias (= tamaño de las impresiones notablemente
diferentes).
La impresión dejada por el manto paleal (= impresión paleal) está representada
por una línea que une las dos impresiones musculares. En función de esta
impresión las conchas se dividen en:
- integropaleadas: Con la impresión paleal regularmente convexa.
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- Senopaleadas: Cuando la línea presenta un entrante o concavidad llamado seno
paleal.
90

Parte II.
Previamente a la disección.
a) Coloca al caracol en un frasco lleno de agua (hasta que derrame, para
evitar que quede aire), tápalo herméticamente, dejándolo allí 24 horas antes
de realizar la práctica..
Procede a hacer las siguientes disecciones:
1.1 CARACOL DE JARDÍN
Disección de Hélix.
92

Para obtener el animal detenemos fijamente la concha y estiramos el cuerpo
en dirección de las espigas. Si es difícil, optamos por romper la concha con
cuidado y con la ayuda de pinzas.
Después de haber eliminado la concha, a simple vista podemos observar la
cavidad del manto, la arteria y plexo pulmonar, intestino o recto, uréter y riñón.
(Aurícula y ventrículo) y hepatopáncreas (Café). Fije el pie con alfileres al
unicel.
Desde la región cefálica hasta el collar del manto haga una incisión en la parte
dorsal del pie no muy profunda, para dejar al descubierto la zona del tubo
digestivo anterior. Además elimine la cavidad del manto (pulmonar), haciendo a
un lado la membrana pulmonar. Fije las Aletillas resultantes con alfileres.
Entonces Observara esófago, glándulas salivales, por un lado, observando con
cuidado, el oviducto y espermiducto laterales, el pene, saco del dardo, glándula
mucosa, flagelo y espermateca, todos órganos de la porción terminal del
aparato reproductor hermafrodita. Ayúdese con los diagramas.
Dentro de la cabeza observe la masa bucal, note que sobre y debajo de la
primera porción del esófago esta un anillo nervioso. Dentro de la masa visceral
observamos el estomago secular. Seguimos a este, que forma el intestino
adyacente al hepatopáncreas, muy grande. Desenrollando este, observamos la
glándula de albúmina, adyacente a esta encontramos el receptáculo seminal.
Entre la porción ultima del hepatopáncreas observamos la gónada
hermafrodita. La masa bucal la puede separar para que la desmiembre y así
obtener rádula y odontóforo a simple vista.
También puede obtenerlos disolviendo los tejidos carnosos en blanqueador.
Haga esquemas con sus nombres de cada uno de los órganos observados.
93

1.2 BIVALVO
a) Abre las valvas, desprendiéndolas en la zona de la charnela.
b) Observa el manto que cubre a las vísceras, así como las masas
musculares que abren y cierran la concha. Localiza la cavidad
pericárdica hacia la región dorsal del músculo posterior y, cerca de éste
el riñón.
c) Levanta el manto, y en la orilla de la concha, localiza las branquias.
d) Sitúa la boca rodeada por los palpos labiales hacia la región de la
charnela. Continúa el contorno del tubo digestivo hasta localizar el ano.
Sobre el digestivo se encuentra la gónada, una masa blancuzca que en
muchas ocasiones ocupa la mayor parte del interior de la concha.
96

Foto: Alva Acuña Luviano
97

Fotos: Alva Acuña Luviano
1.3 Pulpo o calamar.
a) Determina la posición de la boca, brazos, cabeza, saco visceral y
cavidad paleal.
b) Coloca al organismo sobre la charola de disección de manera que los
brazos queden dispuestos hacia ti y el saco visceral hacia el lado
contrario; el embudo debe quedar hacia arriba.
c) Corta el manto desde la orilla de la cavidad paleal hasta la punta dorsal
del saco visceral.
d) Separa el manto, el hígado y la bolsa de la tinta sin dañarlos, separa de
éste el conducto digestivo, observa y dibuja cada una de sus porciones;
lo mismo en el caso del aparato genital. Ubica las partes principales del
sistema circulatorio que están bajo las vísceras.
e) Localiza y extrae la pluma y el pico durante la disección.
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RESULTADOS
Define las características externas más importantes para unificar dentro del
Phylum Mollusca a los organismos observados
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Lista de estructuras identificadas acompañadas de un esquema, para cada
organismo observado.
CUESTIONARIO
1. Basado en las características externas de los individuos, determina cuáles son
las que se podrían usar para diagnosticar el Phylum y cuáles son las que
permiten diferenciar entre si a las Clases.
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2. ¿Qué modificaciones estructurales muestran los gasterópodos y bivalvos para
adaptarse a los diferentes hábitats y tipos de alimentación?
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3. Menciona la importancia económica, biológica y ecológica del Phylum
Mollusca.
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GLOSARIO
-Charnela: Articulación de las valvas de los bivalvos (Moluscos).
-Concha: Cubierta que protege el cuerpo de los moluscos y que constituye su esqueleto. Los
moluscos se clasifican según el número de conchas que posean.
-Detritívoro: Animal que se alimenta de materia orgánica en descomposición, especialmente de
los sedimentos que se encuentran en el suelo.
-Dorsal: Dorso, espalda o lomo (vista dorsal: vista en la que se ve el dorso del animal).
-Exoesqueleto: Esqueleto externo. Propio de los animales invertebrados. En este caso, el
esqueleto puede estar hecho de carbonato cálcico como en moluscos.
-Glándula del biso: Glándula que poseen algunos bivalvos (Moluscos) que produce unos
filamentos (biso) para permanecer agarrados a las rocas (ejemplo: el mejillón).
-Hermafrodita: Animal que es capaz de producir óvulos y espermatozoides (ejemplos: algunos
gasterópodos como el caracol).
-Malacólogos: Las personas que estudian los moluscos.
-Parápodos: Expansiones laterales que presentan las especies pertenecientes a la Clase
Poliquetos (Filum Anélidos).
-Pico de loro: Aparato masticador de los cefalópodos (Moluscos).
-Valva: Cada una de las conchas, generalmente articuladas a través de una charnela, de los
bivalvos (Moluscos).
-Ventral: Vientre o relativo a él (vista ventral: vista en la que se ve el "vientre" del animal).
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PRACTICA No. 8
Phylum Annelida: gusanos segmentados
INTRODUCCIÓN
Características Generales y Clasificación taxonómica.
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OBJETIVO
1. Conocer las características morfológicas internas y externas de los anélidos,
diferenciar los segmentos que los constituyen y las características básicas que
determinan su clasificación.
MATERIALES
Microscopios estereoscópico y compuesto.
Bisturí
Pinzas de disección
Tijeras de disección
Unicel
Solución salina y azul de metileno.
Alfileres de costura
Cajas de Petri
Agujas de disección.
Guantes de plástico.
Material fijado de poliquetos.
Lombriz de tierra.
Sanguijuelas.
DESARROLLO DE LA PRÁCTICA
Observación de material fijado y montado.
Estudio de la morfología externa y estructura interna de ejemplares
representativos del Filo Anélidos. Se realizará un estudio morfológico de
Poliquetos, Oligoquetos e Hirudíneos
Con el material proporcionado por el profesor laboratorista haz esquemas y
descripciones.
110

Poliquetos.
Se diferenciará la porción anterior o cefálica, formada por el prostomio. Tras el
prostomio se inicia el tronco con el peristomio La boca es una hendidura en el
peristomio, ventral al prostomio, y a través de ella puede evaginarse la faringe (en
muchos de los ejemplares se encuentra evaginada, no confundir con el
prostomio). La faringe, muy voluminosa y musculada, está armada de gran
cantidad de dientes córneos o paragnatos y un par de mandíbulas quitinosas
El tronco está compuesto por un gran número de segmentos. Cada segmento
presenta en ambos lados unos apéndices denominados podios. Los podios le
sirven al animal, básicamente, para desplazarse y respirar. Cada uno se compone
de 2 ramas, el notopodio (dorsal) y el neuropodio (ventral), armados por varios
penachos de sedas y los cirros dorsal y ventral. El extremo del cuerpo se
encuentra el pigidio, en donde se sitúa el ano (muchos ejemplares están
fragmentados y no presentan este extremo terminal).
Poliqueto penacho
Nereis es un poliqueto errante
111

Oligoquetos.
Tubo de Poliqueto sedentario
112

a) Observación de morfología externa.
Para la Morfología de Oligoquetos se e estudiará un ejemplar de Lumbricus sp.
Observando un ejemplar bajo la lupa . En la región anterior debe diferenciarse el
prostomio, que se presenta dorsalmente como un lobulito por encima de la boca.
Ésta aparece en el peristomio. A diferencia de los poliquetos, la región anterior de
la lombriz de tierra carece de elementos sensoriales. El ano lo presentan
justamente en el último anillo.
Los oligoquetos carecen de podios, pero cada segmento lleva 4 pares de sedas,
que deben ser observadas. No obstante, dependiendo de las especies la
disposición de las sedas es diferente, generalmente 2 pares ventrales y 2 pares
113

laterales. Centralmente deben observarse los poros genitales. Buscar el segmento
13, 15 ó 17; en uno de ellos hay un par de poros genitales masculinos, muy
evidentes por estar rodeados de unos salientes a modo de ojal. Desde allí y hasta
el clitelo se observarán los surcos seminales por los que se desplaza el esperma
durante el apareamiento.
En algunos ejemplares se pueden diferenciar los poros genitales femeninos en el
segmento 14. Por delante del clitelo, y en posición ventral, podrán observarse las
denominadas sedas genitales, que se presentan como unos pequeños
abultamientos. En el tercio anterior de la mayoría de ejemplares se diferencia el
clitelo, que se extiende, aproximadamente, a partir del segmento 35 (su posición
exacta es un carácter sistemático). Centralmente el clitelo presenta unos
abultamientos longitudinales, los tubérculos pubertarios. Éstos sólo aparecen en la
madurez sexual y sirven para facilitar la cópula.
En las aguas dulces viven oligoquetos pequeños, a veces microscópicos, como
Tubifex tubifex de color rojo. Este suele vivir en colonias, en el fondo de los ríos y
lagos, viven en aguas pobres en oxígeno. En éste se puede observar en cada
segmento las branquias externas a manera de filamentos.
114

) En el microscopio estereoscópico con
luz intensa y en los ejemplares pequeños
observa el vaso sanguíneo dorsal y los
pseudocorazones. Trata de observar los
cinco pares. Además observa sus
contracciones rítmicas a todo lo largo del
cuerpo. También es posible observar el
tubo digestivo (faringe, esófago, buche,
molleja e intestino), las vesículas
seminales. Externamente distingue la región clitelar, los segmentos y sus
respectivos poros dorsales. Distingue las quetas en 4 pares en cada segmento.
Contando los segmentos localiza las siguientes regiones:
115

- 1er. Segmento Boca (Prostomio)
- 9 a 10 Receptáculos seminales
- 10 a 11Receptáculos seminales
- 14 Abertura de los oviductos (ventrales 2)
- 15 Abertura de conductos espermáticos (ventrales 2)
- 7 al último segmento poros dorsales en pares
- 32 al 37 clitelo
- 7 al último segmento pigidio
Quetas de Lombríz de tierra
c) Disección de lombriz de tierra (Lombricus terrestris)
Antes de realizar la disección es necesario mantener las lombrices grandes
durante algún tiempo en un recipiente humedecido con papel filtro mojado, con
esto se logra que el animal expulse la tierra que contiene su intestino y quede
vacío; si no es así, al abrirlos, el intestino que está distendido se desgarra.
Sacrificio de la lombriz de tierra, para evitar una completa contracción del
animal se añade poco a poco alcohol al 70% al agua en donde este la lombriz.
Otro método consiste en colocar a los ejemplares en 100 ml de agua destilada,
adicionada de 5 ml de ácido nítrico. Entonces se lava, para eliminar la mucosidad
y se inicia la disección.
116

Sobre una charola en unicel, coloca el ejemplar con alfileres de costura; corta la
pared corporal dorsal, introduciendo la punta de unas tijeras o una navaja nueva
en la porción posterior del cuerpo y corta hacia delante, cuidando de no dañar los
órganos internos.
Delimita los segmentos con ayuda de los septos:
- Del 1er. al 3er. segmento es la región bucal.
- Del 3º. al 6° está la faringe y;
- Del 6° al 13° o 14° el esófago.
Puede haber variaciones. Enseguida del esófago, el buche, región ensanchada,
después la molleja. Determina los segmentos donde se hallan el buche y la
molleja. Enseguida está el intestino. Debajo del intestino localiza el cordón
nervioso y el vaso sanguíneo ventral. Localiza las espermatecas y vesículas
seminales anterior y posterior a la altura del esófago. En cada segmento localiza
los nefridios. A la altura del buche localiza los ovarios y testículos.
117

118

119

120

Hirudineos.
Observación en vivo
121

Antes de fijar, describe su movimiento, coloración y tamaño en extensión y
reposo. Anestesia agregando alcohol al 70% gota a gota al medio donde se hallen,
hasta cesar el movimiento. Entonces describe las ventosas, boca y ano, manchas
sensoriales, poros nefridiales y orificios genitales. Trata de localizar los ojos.
Observa que al fijar generalmente expulsan la faringe.
Ya anestesiados los ejemplares, fíjalos aplanando entre dos portaobjetos
con Bouin. Lo anterior para organismos grandes y pequeños. Podemos dejarlos
indefinidamente en Bouin o pasar a alcohol al 70%. Para hacer preparaciones
usaremos los ejemplares pequeños.
Podemos montar en resina o Bálsamo de Canadá. Por transparencia
observaremos el sistema digestivo: cavidad bucal, faringe, esófago, estómago,
ciegos o sacos digestivos, intestino y ano.
Podemos hallar los ovarios y los varios pares de testículos unidos por un
espermiducto. Ayudémonos con los esquemas. Haz dibujos y descripciones.
122

CUESTIONARIO
1. ¿Qué es el celoma?
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2. ¿Cuál es la importancia filogenética del metamerismo, el celoma y la cefalización?
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3. ¿Qué es la metamerización?
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_______________________________________________________________________________
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4. Mencione 2 grupos afines a los anélidos. ¿Por qué?
a)__________________________
b)_____________________________¿Porqué_________________________________________
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_______________________________________________________________________________
123

5. ¿Qué es el mesodermo?
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6. ¿Qué significa origen triploblástico?
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GLOSARIO
-Ceratóforo: parte basal de los tentáculos de los poliquetos
-Ceratostilo: región terminal de los tentáculos de los poliquetos
-Neurópodo: lóbulo ventral del parápodo de poliquetos
-Notópodo: lóbulo dorsal del parápodo de los poliquetos
-Palpóforo: artejo basal del palpo de poliquetos
-Parapodio: cada una de las protuberancias pares localizadas en los laterales de los segmentos
de los poliquetos.
Parápodo: apéndice propio de los anélidos provisto de cerdas o sedas y que sirve para la
locomoción.
-Paratostilo: artejo distal del palpo de los poliquetos
-Peristomio: segmento postoral de los anélidos.
-Prostomio: segmento preoral de los anélidos.
-Protandria: condición de los hermafroditas consistente en que los gametos masculinos maduran y
se desprenden antes que los femeninos.
-Protoginia: condición de los hermafroditas consistente en que los gametos femeninos maduran y
se desprenden antes que los masculinos.
-Segmentados: Aquellos animales que poseen el cuerpo formado a partir de una sucesión de
anillos (ejemplo: los anélidos).
-Tiflosolio: pliegue longitudinal dorsal y mediano del intestino de anélidos.
124

PRÁCTICA No. 9
Phylum Bryozoa: briozoarios
INTRODUCCIÓN
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OBJETIVO
Determinar en algunos representantes del Phyllum, las características más
sobresalientes e importantes utilizadas para su clasificación.
Reconocer los diferentes tipos de estructuras que se pueden encontrar en
los ectoproctos, relacionándolos con su forma y función.
Conocer las técnicas de captura y preservación del Phyllum Bryozoa.
MATERIAL
- Microscopio estereoscópico.
- Cajas de Petri.
- Charola de disección.
- Pinzas de relojero.
- Agujas para disección.
- Claves de Identificación
MATERIAL BIOLOGICO
Piedras, conchas de Gasterópodos, Bivalvos o Poliplacóforos, restos de algas
Phaeophytas, Rodophytas o Clorophytas con Colonias de Bryozoos.
METODOLOGIA
Reconozca (o sitúe) los siguientes elementos o estructuras morfológicas: zoario,
zooide, zoecio, abertura, opérculo, ovicela, avicularias, vibracularias, zona distal,
zona proximal.
RESULTADOS
Dibuje las estructuras mencionadas anteriormente.
Observe fragmentos de colonias del Orden Cheilostomata en las cuales la pared
frontal es membranosa (Subórdenes Malacostega y Flustrina) y donde esta última
está protegida por una pared frontal calcárea (Suborden Ascóphora).
Dibuje un zooide y parte de la colonia de al menos una especie de cada suborden.
Señale en qué sector de la colonia se sitúa el lofóforo (proximal, distal, en el
centro).
126

Observe fragmentos de colonias del Orden Cyclostomata.
Dibuje la colonia observada
Determine el tipo de colonia en que puede ser situado cada ejemplar de briozoo
disponible y determine su consistencia ya sea Quitinosa, calcáreo-quitinosa o
calcárea.
Mencione el nombre de cada una de las estructuras morfológicas de los Bryozoos
que se presentan a continuación
Sosa-Yañez 2011
Sosa-Yañez 2011
Sosa-Yañez 2011
Sosa-Yañez 2011
Sosa-Yañez 2011
Sosa-Yañez 2011
127

Foto: Armando Sosa Yáñez
Morfologia de Bryozoos marinos. (Tomado de Brusca y Brusca 2005, modificada por
Sosa-Yañez 2011).
128

GLOSARIO
Se describieron las especies utilizando los siguientes términos, que se obtuvieron de
Brusca (1980) Barnes(1984 y 1997) Osburn (1950-1953) (fig. 2):
Abertura. La abertura por la cual sale el lofóforo (órgano que alimenta), (el término es usado por
algunos autores como la parte no calcificada de la pared frontal en algunos cheilostomas de
Anasca).
Ancéstrula. El individuo primario de una colonia, derivado por la metamorfosis de la larva que
nada libre.
Asco. En cheilostoma, es una bolsa cuticular debajo de la pared frontal que abre al exterior por la
parte de la abertura o por un poro especial, el ascóporo.
Autozoide. El individuo que alimenta en una colonia, equipado con un lofóforo funcional.
Avicularia. Miembros especializados de una colonia de bryozoarios que parecen la cabeza de un
ave. En cheilostomas, estructura (probablemente un heterozoide) con un opérculo modificado,
llamado mandíbula, cerrado como una mandíbula en pico. La función es desconocida,
posiblemente de defensa.
Basal. El lado conectado al sustrato, el contrario de frontal.
Bryozoario. Animales musgosos; colonias de algunas especies, de bellas y delicadas
ramificaciones, que se confunden con algas, otras especies de aspecto de encaje sobre las rocas.
Cardeles. Dentículos laterales en la abertura, para la fijación del opérculo, generalmente falta en
los Anasca.
Costules. Espinazo radiado que forman el pericisto fronterizo en el Cribimorpha, espinas
marginales modificadas.
Cribimorfo. El zoecio con un frente costulado (Cribilinidae, etc.).
Criptocisto. Extensión calcificada hacia dentro desde el anillo en los Anasca, a menudo vestigial.
Entre éste y el ectocisto hay un espacio, el hipostege, el cual sirve como una cámara hidrostática
cuando salen o entran los tentáculos.
Dietellae. Cavidades pequeñas alrededor de la base de la pared zoecial, en los cuales se localizan
los poros de comunicación.
Distal. Del centro a la orilla de la colonia; el contrario de proximal
Ectocisto. Membrana quitinosa que cubre el zoecio.
Endocisto. Membrana delgada delineando el zoecio y envolviendo los órganos del cuerpo.
Espina dorsal. En cheilostoma, espina ahuecada, tubular, a menudo proyecciones calcificadas de
márgenes del zooide, especialmente cerca de la abertura. Distinto de perillas y espigones de
carbonato de calcio, que es sólido, no ahuecado.
Epistoma. Labio dorsal que se encuentra por encima de la boca.
Frontal. El lado lejos del substrato, el contrario de basal.
129

Gimnocisto. Área calcificada de la membrana frontal en Anasca. Se limita generalmente al
extremo proximal y a menudo es vestigial o falta.
Heterozoide. Un individuo modificado en una colonia; un zooide de otra manera que un zooide
(autozoide) que alimenta, derivado durante la evolución de un autozoide.
Hiperstomial. Refiriéndose a la ovocélula externa. Éstas se empotran a menudo más o menos en
el gimnocisto del zoecio subsiguiente, pero una disección cuidadosa mostrará que ellas se
levantan de la pared distal del zoecio al que pertenecen.
Hipostege. Una cavidad entre el ectocisto (membrana frontal) y el criptocisto en el Anasca, cámara
hidrostática.
Lacunae. Los poros entre el costae de los cribimorphos.
Lofóforo. Prominencia en forma de herradura o circular con una serie de tentáculos ciliados
alrededor de la boca de los bryozoarios.
Lyrula. Dentículo mediano o plataforma sobre el borde proximal de la abertura primaria.
Mandíbula. En cheilostomas, la "mandíbula" movible cuticular de una avicularia.
Oecium. Cámaras incubadoras formadas del cuerpo entero del zoide fértil en el cyclostoma y unos
pocos bryozoa de cheilostoma (usado por algunos autores como un sinónimo de ovocélula).
Olocisto. Capa o cubierta calcificada primariamente por lo general delgada, pero algunas veces
fuertemente calcificada.
Opecio. El gran orificio debajo de la membrana frontal de Anasca; a menudo ocupando casi toda el
área frontal.
Opérculo. En cheilostoma, una solapa cuticular (raramente calcificada) de la pared del cuerpo que
cierra la abertura, como un escotillón pequeño.
Ovocélula. Cámaras de incubación en la mayoría de los bryozoa de cheilostoma. También
llamada oecium
Pedunculote. Elevación en un tallo o pedicelo, normalmente refiriéndose al Avicularia.
Pericisto. Frontal calcificado sobre el ectocisto en algunos Anasca, normalmente formado por la
fusión de espinas marginales.
Peristoma. Un cuello calcáreo alrededor de la abertura, o alrededor de un cojinete de tubo con la
abertura en la punta. Margen elevado alrededor de la abertura.
Pico. En cheilostomas, la base reforzada de una avicularia en la cual finaliza la mandíbula.
Poro aureolar. Una o más corridas o filas de poros alrededor del margen del frente zoecial.
Proximal. El equivalente opuesto de trasero; el contrario de la dirección de en ciernes, del centro
al margen de la colonia; el contrario de distal.
Quincunx. El arreglo como de cordón (listón) zoide en la mayoría de las colonias. Se parece al
"lazo corriente" del lazo o el estándar en el enladrillado.
Esclerito. Un margen engrosado u otro opérculo o mandíbula.
Septulae. Los poros de comunicación muy pequeños en las paredes del zoecio; ellos o se
esparcen individualmente, o se agregan en grupos (uniporos o roseta laminar multiporosa).
130

Tremocisto. Capa calcificada secundariamente de la pared frontal sobre el olocisto; generalmente
toda perforada y desarrollada eventualmente desde los poros frontales en lugar de crecer hacia
adentro desde el borde.
Vibracularia. En cheilostoma, un heterozoide con un látigo largo como " setum " movible que
funciona como defensa.
Zooide. En animales coloniales, el individuo en una colonia. Véase también autozoide,
heterozoide.
131

ANEXO.
REGLAMENTO PARA LOS ALUMNOS DEL LABORATORIO DE ZOOLOGÍA I.
I.- Durante el trabajo en el laboratorio de Zoología el alumno elaborará su material de disección,
realizará sus observaciones, elaboración de esquemas e identificación de organismos
correspondientes y preparación de material biológico, actividades que se deberán llevar a cabo con el
debido cuidado, limpieza y orden.
II. Se recomienda que el alumno revise las prácticas antes de presentarse al Laboratorio, así como el
investigar el fundamento ó antecedentes de la práctica correspondiente, principalmente con el fin de
conocer qué materiales biológicos deberá aportar a la práctica y de esta manera poder organizar el
trabajo en la sesión del laboratorio.
III. Además de los manuales de prácticas, deberá llevar una libreta para anotar datos, resultados etc.,
que servirán para la elaboración de su reporte.
IV. En forma obligatoria, el alumno deberá usar la bata durante la realización de su práctica en el
laboratorio.
V. El alumno no deberá consumir ningún alimento, durante la realización de su práctica del laboratorio.
VI. El alumno no deberá utilizar aparatos de sonido ni audífonos. El teléfono celular en modo de
silencio durante la realización de su práctica, evitar su uso a excepción solamente en el caso de tomar
fotografías de los especímenes que se obtengan y sean necesarios.
LOS LINEAMIENTOS QUE A CONTINUACIÓN SE ENUMERAN, DEBERAN SER CUMPLIDOS POR
LOS ALUMNOS EN TODAS LAS SESIONES DEL LABORATORIO.
1. Puntualidad en la entrada a la sesión de laboratorio, la lista de asistencia se pasará dentro de
los primeros 15 minutos. Después de los 30 minutos aunque el alumno se presente contará
como falta. Tres retardos se sumaran para contar como falta.
2. Mantener su lugar limpio, depositando los desechos en los cestos de basura y no en el suelo.
Lavar su material de trabajo al finalizar la sesión ó después de usarlo, microscopios, mesas de
trabajo, etc. La limpieza es un indicador del buen desempeño en su trabajo.
3. Trabajar en orden (seguir las indicaciones de su profesor) evitando distraer a sus
compañeros con platicas ó bromas. No debe de entrar y salir continuamente del
laboratorio. El alumno desordenado será suspendido de la sesión en curso.
4. Quien no acate el reglamento, y reincida será suspendido de sus prácticas.
132

5. Los materiales biológicos proporcionados, ya sea organismos preservados ó en preparaciones
permanentes, se deberán tratar con el debido cuidado, con la finalidad que se cumplan los
objetivos correspondientes. En caso de ser dañado éste será reintegrado por el alumno
responsable.
6. Será obligatorio llevar el material biológico para la práctica correspondiente con las
indicaciones que se le proporcionaron, lo que cuenta como créditos para su evaluación final.
LINEAMIENTOS DEL REPORTE DE ZOOLOGÍA.
1. En cada sesión se revisará el desarrollo y resultado de la práctica correspondiente.
2. En cada sesión se reportará el resultado en el mismo manual ó por la parte posterior de las hojas de
este.
3. EL REPORTE debe de contener los siguientes datos:
a. Nombre y número de la práctica
b. Datos personales.
c. Introducción (Antecedentes)
d. Objetivos
e. Material y métodos
f. Resultados.
g. Conclusiones
h. Cuestionario
i. Bibliografía.
4. EL REPORTE ES INDIVIDUAL, solo tendrá calificación si el alumno asistió a la práctica.
LINEAMIENTOS DE EVALUACIÓN PARA ACREDITAR EL CURSO DE ZOOLOGÍA.
1. Se realizarán dos exámenes prácticos durante el semestre, a mitad del semestre y al final de
este y la calificación será de 0 a 10.
2. Se requerirá el 80% de asistencia al total de la sesiones del laboratorio, para tener derecho a la
calificación final. Para examen extraordinario el 50%, de acuerdo al reglamento general de la
UMSNH.
3. Se calificará de 0 a 10 cada informe de la práctica, de acuerdo a la calidad del mismo.
4. La evaluación total del laboratorio se obtendrá de las calificaciones sumadas de los reportes,
exámenes, material biológico y la participación personal del alumno.
5. Para acreditar la Materia de Zoología deberá tener calificaciones aprobatorias, tanto en las
sesiones prácticas como en las teóricas.
6. El valor de las prácticas de su laboratorio será el 40%, 10 % del trabajo de investigación (con
material biológico) y 50% de la parte teórica.
133

FORMULACIÓN Y CUIDADOS DE LAS SOLUCIONES UTILIZADAS DURANTE EL MANEJO,
FIJACIÓN Y PRESERVACIÓN DEL MATERIAL BIOLOGICO.
INTRODUCCIÓN
Todos los seres vivos mantenemos un pH y concentraciones de minerales, nutrientes y agua
constantes con el objetivo de conservar la homeostasis del organismo, por lo que es importante
que durante las observaciones de organismos vivos mantenerlos húmedos, con solución salina
isotónica o con solución de Ringer. Así también para su fijación, transparentación y preservación
se pueden utilizar soluciones de alcohol, soluciones de formol, glicerina, ácido acético y ácido
pícrico.
OBJETIVO
Formular las soluciones más comunes que se utilizan durante el desarrollo de sus prácticas
de Zoología 1.
MATERIALES Y REACTIVOS
o Agua destilada.
o Frascos de plástico.
o Alcohol etílico.
o Glicerina.
o Ácido pícrico.
o Ácido acético.
o Formol.
o Cloruro de Sodio. (Sal de cocina).
o Glucosa. (Azúcar de caña).
PROCEDIMIENTO
1. Formular la solución salina isotónica (SSI). Colocar 8.5 gr. de Cloruro de sodio en un litro de
agua destilada, procurando que su pH sea de 7.4.
2. Formular la solución salina de Ringer isotónica (SRI). Colocar 8.5 gr. de Cloruro de sodio, más
10 gr. de glucosa en un litro de agua destilada, procurando que su pH sea de 7.4.
3. Formular la solución de formaldehído al 4%. Colocar 10 ml. de Formaldehído en un litro de agua
destilada, procurando que su pH sea de 7.4.
4. Formular la solución fijadora de alcohol al 70% (OH/70%). Colocar 70 ml. de alcohol en 25 ml.
de agua destilada, procurando que su pH sea de 7.4.
5. Formular la solución fijadora de helmintos. Colocar 50 ml., de alcohol etílico, 10 ml. de
formaldehído, 4 ml. de ácido acético, 10 ml. de glicerina y 50 ml. de agua destilada.
6. Formular la solución aclaradora de Bouin. Colocar 75ml. de solución sobresaturada (SSap) de
ácido pícrico y 5 ml. de formaldehído en 100 ml. de agua.
134

CUIDADOS.
El formaldehído debe de manejarse bajo campana con extractor, en caso de caer en la piel lavar
con abundante agua.
Durante el manejo del ácido acético o de otro ácido se debe de manejar bajo campana con
extractor, en caso de caer en la piel lavar con abundante agua y neutralizar con una solución de
carbonato de sodio. Y posteriormente colocar glicerina.
Durante el manejo de bases como el Hidróxido de sodio o de Potasio, debe de manejarse bajo
campana con extractor, en caso de caer en la piel lavar con abundante agua, y neutralizar con una
solución de ácido ascórbico. Y posteriormente colocar glicerina.
NOTAS AUXILIARES PARA LAS RECOLECTA Y PRESERVACIÓN DE LOS FILA DE LA
MATERIA DE ZOOLOGIA I
FIJADORES COLORANTES Y ANESTÉSICOS
Para la observación de estructuras morfológicas internas o externas; aspectos fisiológicos
como absorción, digestión, movimientos; para la conservación de ejemplares para estudios
posteriores, etc. Es necesario conocer los diferentes compuestos químicos que nos sean útiles
para estudios biológicos.
FIJADORES Y MÉTODOS DE FIJACIÓN
Para Los organismos tratados en el curso, ningún fijador debe usarse sin previo
conocimiento de su especificidad.
La mayor parte de los fijadores actúan precipitando los constituyentes proteicos, de tal forma que la
célula y su contenido mantienen en cierto grado la forma que tenían en vida.
a) FORMALDEHÍDO
Es un gas que se disuelve en el agua al 40% y después es vendido como formol
líquido. Añadiendo 7 volúmenes de agua por un volumen de formol se obtiene solución
al 5%, ésta es la concentración más usada. Para organismos marinos delicados, la
dilución debe ser hecha con agua de mar, para evitar distorsiones derivadas de
cambios osmóticos.
El formol es ácido, por lo que se recomienda su empleo para animales con esqueleto
calcáreo o espículas, aunque puede usarse neutro.
b) ALCOHOL ETÍLICO
Para las diluciones de alcohol de 96 grados
Alcohol 96% H20 Destilada Alcohol a obtener
10 vol 1.5 vol 80%
10 vol. 3.0 vol 70%
10 vol 8.5 vol 50%
10 vol 20.5 vol 30%
El más usado es el 70%: Para animales de cuerpo blando o de constitución delicada,
narcotizar primero o aplicar gradualmente alcoholes a partir de 30%-
c) LIQUIDO DE BOUIN
Se conserva indefinidamente. Los ejemplares se fijan 12 horas o más y luego se pasan
directamente al alcohol al 70%
135

El material se puede dejar en Bouin indefinidamente. Es un fijador excelente para
invertebrados marinos y la mayor parte de tejidos mamíferos.
Si los animales se contraen rápidamente al fijarlos, es necesario calentar el fijador
a 30-60 ° C, para el caso de fijar larvas de poliquetos.
COLORANTES Y MÉTODOS DE COLORACIÓN
a) AZUL DE METILENO al 5%
Azul de metileno 0.5 g
Agua destilada 100ml
Poner el colorante en un mortero, añadir agua y triturar hasta disolver completamente, calentar
suavemente la solución, dejar enfriar, reposar 1 día.
b) LUGOL
Yodo Q.B. 50 g
Yoduro de Potasio Q, P. 100g
Agua destilada hasta completar un litro.
Mezclar los solutos en mortero hasta pulverizar. Disolver con agua.
c) HEMATOXILINA DE DELAFIELD
Hematoxilina 4 g
Alcohol etílico absoluto 25 ml
Disolver la hematoxilina y mezclar con solución acuosa saturada de alumbre de amonio 400 cc.
Exponer a la luz varios días en frasco tapado con algodón.
Filtrar y añadir: glicerina 100ml
Alcohol metílico 100 m
Guardarse en un frasco oscuro y dejar reposar cuando menos dos meses. Se puede usar varios
años conservando tapada la solución.
Los especímenes deben ser hidratados antes de teñirse.
d) HEMATOXILINA DE EHRLICH
Hematoxilina 2 g Alcohol absoluto 100ml
Ácido acético glacial 10 ml Agua 100 ml
Glicerina 100 ml Alumbre De potasio al 2.5 % acuosos 100 ml
Disolver la hematoxilina en alcohol, añadir ácido, glicerina y agua: dejar madurar dos meses (color
rojo oscuro). El ejemplar pasarlo del alcohol 70% al colorante. Teñir hasta un color azul- negro.
Lavar en alcohol 70%. Diferenciar en alcohol ácido (color rojizo). Se azulea con agua de la llave.
e) PARACARMIN DE MAYER
Ácido crómico 1g
Cloro de aluminio hidratado 0.5 g
Alcohol de calcio anhidro 4g
Alcohol etílico de 70% 100 ml
Se puede teñir directamente del alcohol.
f) ROJO NEUTRO
Rojo neutro 1 g
Agua destilada 100ml
136

ANESTÉSICOS Y MÉTODOS DE ANESTESIA
Si es posible evitar la narcosis. La exposición prolongada a cualquier narcótico,
influye adversamente sobre la estructura celular y termina en citolisis. No obstante, a
menudo es necesario narcotizar para evitar la distorsión y rotura por fijación y al trabajar
sobre tejidos y organismos vivos. Narcotizar siempre suavemente añadiendo gradualmente
el narcótico sin excitación mecánica violenta.
a) ALCOHOL AL 10%
Para Asquelmintos y animales de agua dulce: añadir al medio, gota por gota, Alcohol al
10%, y esperar cada vez a que se remita la excitación. Tarda de unos minutos a una hora.
b) MENTOL
Para animales sésiles o no, marinos o de agua dulce. Dejar que el animal se extienda en
un sitio tranquilo y en agua limpia, esparcir unos pocos cristales de mentol sobre la
superficie y dejarlo 12 horas.
c)
Añadir agua de sifón al agua en la que viven los animales.
d) CALENTAMIENTO SUAVE
Subir lentamente la temperatura hacia el punto de muerte 30-35° C. Así, se produce
parálisis del sistema nervioso de un organismo relajado.
e) AGUA CLOROFORMADA
Añadir Unos mililitros de cloroformo a una gran cantidad de agua. Mata lombrices y otros
anélidos, equinodermos y otros organismos.
MEDIOS DE MONTAJE
a) BÁLSAMO DE CANADA
b) RESINAS ARTIFICIALES
c) GLICERINA (sellando los bordes del cubreobjetos)
OTRAS SOLUCIONES
a) FENOL AL 5%
Fenol AP 50g
Agua destilada 1000ml
Solución antiséptica. Para desinfectar material de vidrio, instrumentos, mesas, guantes
b) LACTOFENOL
Fenol 10g
Ácido láctico 10 ml
Glicerina 10 ml
Agua destilada 10 ml
Almacenar la mezcla en una botella obscura. Aclarador de Nematodos, los cuales se
pueden poner en la solución al sacarlos del OH al 70% o meterlos en éste después del
LACTOFENOL.
c) SOLUCIÓN SALINA NORMAL (ISOTÓNICA) AL 0.85%
Cloruro de sodio 8.5 g
Agua destilada 1000 ml
137

-El agar es una sustancia obtenida de algas. Se usa como medio de cultivo en bacteriología, al
añadirle sangre, glucosa, peptona etc. Al enfriar toma un estado coloidal
-Xilol. Hidrocarburo líquido antiséptico, aclarador y disolvente (para limpiar preparaciones de
resina y bálsamo).
-Creosota
Incolora y oleosa. Anestésico y antiséptico
-Hipoclorito
Para disolver tejidos. Para la obtención de estructuras como espículas a partir de las paredes
corporales (poríferos, Holoturoidea
138

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