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MANUAL DE PROCEDIMIENTOS PREANALITICOS ~ LABORATORIO Hospital Infanta Margarita de Cabra 7.12 LÍQUIDOS CORPORALES 7.12.1 Líquido Cefalorraquídeo (L.C.R.) 26 • El LCR es normalmente estéril y puede obtenerse mediante punción lumbar o, con menos frecuencia, por punción cisternal, cervical o ventricular; cada uno de estos procedimientos debe ser realizado por un médico con experiencia. • El LCR y el suero deberían recogerse tan simultáneamente como sea posible. • Con el fin de evitar la contaminación de la muestra, se debe transportar el líquido cefalorraquídeo en tubos limpios y estériles, cerrados herméticamente con TAPON A ROSCA (verde). • Enviar la muestra al laboratorio lo antes posible por el medio más rápido que se disponga. 7.12.2 Indicaciones especiales para la recolección de muestras de líquido cefalorraquídeo: • Utilizar guantes sin talco. • Recolectar la muestras (si es posible) en tres tubos diferentes numerándoles según el orden de llenado. • El primer tubo de los extraídos se destinará a realizar pruebas de bioquímica, el segundo será destinado a Microbiología y en caso de existir un tercero será destinado a los recuentos celulares. No obstante, el tubo más turbio se enviará a Microbiología. (ver Manual de Toma de muestras de Microbiología, pag. 39-40). 7.12.3 Líquidos Pleural, Pericárdico y Peritoneal • Se denomina paracentesis la extracción de líquido de una cavidad serosa del organismo mediante aspiración percutánea (introduciendo una aguja a través de la piel). • Basta una muestra de 15 ml para realizar un examen completo de laboratorio, a menos que se prevean pruebas especiales. • Para los estudios de bioquímica el líquido debe recogerse: - en un recipiente estéril y tapón de rosca (8-10 ml). - dejar que coagulen las muestras y eliminar el coágulo o cualquier otro material en suspensión (ej. células) mediante centrifugación. - se aconseja procesar paralelamente sangre del paciente para facilitar un valor “interno” de referencia. • Para los estudios de citología recoger: - en un recipiente estéril y tapón de rosca (8-10 ml). - añadir al tubo unas gotas de heparina (5-10 unidades/ml) o EDTA (1 mg/ml) como anticoaqulantes; no debe usarse citrato sódico u oxalato. - las células se conservan relativamente bien entre 24 y 48 horas si las muestras se mantienen refrigeradas. • Si se solicita pH en un líquido de derrame hay que: - recoger anaeróbicamente la muestra en una jeringa heparinizada, - mantenerla refrigerada y - realizarlo si es posible en los siguientes 20 minutos desde su extracción • El líquido debe transportarse rápidamente al laboratorio o, si el retraso es inevitable, debe estar refrigerado a 4º para evitar el crecimiento bacteriano y la alteración de los componentes celulares, o de la composición química, • Aunque hay casos en los que puede ser necesario extraer todo el líquido de una cavidad corporal, muchos derrames son relativamente benignos y pueden producirse complicaciones graves cuando se saca el líquido con demasiada rapidez. • Para los estudios de Microbiología es suficiente de 1 a 10 ml. Cuando se requiera la investigación de Micobacterias u Hongos, enviar más de 10 ml. (ver Manual de Toma de muestras de Microbiología, pag. 42-43)
MANUAL DE PROCEDIMIENTOS PREANALITICOS ~ LABORATORIO Hospital Infanta Margarita de Cabra 7.12.4 Líquido sinovial • La aspiración percutánea de líquido de una articulación se denomina artrocentesis y debe ser hecha en condiciones asépticas por una persona con experiencia en esta práctica. • Hay que registrar el volumen de líquido recogido. • Utilizar un frasco estéril con tapón de rosca, • heparina sódica o EDTA como anticoagulantes, • enviar lo antes posible el líquido al laboratorio y conservarlo a 4ºC si no se procesa en 48-72 horas. 7.12.5 Líquido Seminal Hay que tener presentes dos consideraciones: • La primera es que la producción celular (espermatogénesis) tiene lugar en forma de onda, no es continua, es por ello que existe una variabilidad intraindividual. • La segunda es que el ciclo de la espermatogénesis tiene una duración de 74 5 días, ello obliga a realizar todos los estudios en este período de tiempo. Es muy recomendable la realización de dos estudios dentro del mismo ciclo, ello permite objetivar con mayor seguridad el caso estudiado. Siempre que sea posible el segundo estudio se hace a las 2 semanas; si los resultados muestran diferencias marcadas debe realizarse un tercero e incluso un cuarto estudio. Recomendaciones para la obtención de la muestra seminal (entregar recomendaciones para el paciente del Anexo I). • Abstinencia sexual previa a la obtención de la muestra de semen. Es necesario un período mínimo de 3 días y un máximo de 6, preferentemente 4 días. Si durante este tiempo de espera se produce una polución nocturna, antes de obtener la muestra para el estudio, es necesario empezar a contar de nuevo el periodo de abstinencia sexual. • Las instrucciones se deben entregar por escrito y han de ser breves, claras y concretas. • La muestra de semen siempre se obtendrá por masturbación sobre un contenedor de orina estéril de boca ancha. No pueden ser aceptadas las muestras obtenidas por coitus interruptus, puesto que existen numerosos inconvenientes, tales como la posible perdida de la primera fracción, la contaminación bacteriológica y/o celular, y el descenso de la movilidad por la acción del pH vaginal. Tampoco pueden ser aceptadas las muestras obtenidas utilizando lubricantes. . No se aceptan las muestras incompletas, puesto que las diferencias entre las distintas fracciones seminales, tanto desde el punto de vista celular como bioquímico, son muy significativas. • El lugar de obtención también es importante; el más idóneo es en el domicilio puesto que las condiciones ambientales son más favorables. Sin embargo, será siempre y cuando se tenga la garantía de que la muestra llegará al laboratorio antes de los 60 minutos. • Cuando se precisen estudios microbiológicos, las muestras han de obtenerse con extremadas condiciones de asepsia. Se recomienda la ducha y posterior lavado de manos y genitales, a continuación se obtiene la muestra de orina, primer chorro, sobre un contenedor estéril, para valorar la participación bacteriana de la uretra. Seguidamente, sobre otro contenedor estéril, se coloca la muestra de semen obtenida por masturbación. • La temperatura ideal para el transporte de las muestras debe ser de 20ºC a 25ºC, evitando cambios bruscos para que la movilidad de los espermatozoides no se vea afectada. 7.12.6 Moco Nasal Su uso viene indicado en el estudio de: • Los procesos alérgicos para la cuantificación de del numero de eosinófilos en Moco y • Estudios microbiológicos que pudieran solicitarse en este tipo de muestras. Procedimiento de recogida para el estudio de eosinófilos: • Introducir un hisopo o asa calibrada en cada de uno de los orificios nasales • Distribuir el moco obtenido en un portaobjetos de la forma mas extensa posible. • Dejar secar, identificar y remitir al laboratorio 27
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MANUAL DE PROCEDIMIENTOS PREANALITICOS ~ LABORATORIO <strong>Hospital</strong> <strong>Infanta</strong> <strong>Margarita</strong> de Cabra<br />
7.12.4 Líquido sinovial<br />
• La aspiración percutánea de líquido de una articulación se denomina artrocentesis y debe ser hecha en<br />
condiciones asépticas por una persona con experiencia en esta práctica.<br />
• Hay que registrar el volumen de líquido recogido.<br />
• Utilizar un frasco estéril con tapón de rosca,<br />
• heparina sódica o EDTA como anticoagulantes,<br />
• enviar lo antes posible el líquido al laboratorio y conservarlo a 4ºC si no se procesa en 48-72 horas.<br />
7.12.5 Líquido Seminal<br />
Hay que tener presentes dos consideraciones:<br />
• La primera es que la producción celular (espermatogénesis) tiene lugar en forma de onda, no es continua,<br />
es por ello que existe una variabilidad intraindividual.<br />
• La segunda es que el ciclo de la espermatogénesis tiene una duración de 74 5 días, ello obliga a<br />
realizar todos los estudios en este período de tiempo. Es muy recomendable la realización de dos estudios<br />
dentro del mismo ciclo, ello permite objetivar con mayor seguridad el caso estudiado. Siempre que sea<br />
posible el segundo estudio se hace a las 2 semanas; si los resultados muestran diferencias marcadas debe<br />
realizarse un tercero e incluso un cuarto estudio.<br />
Recomendaciones para la obtención de la muestra seminal (entregar recomendaciones para el paciente<br />
del Anexo I).<br />
• Abstinencia sexual previa a la obtención de la muestra de semen. Es necesario un período mínimo de 3<br />
días y un máximo de 6, preferentemente 4 días. Si durante este tiempo de espera se produce una polución<br />
nocturna, antes de obtener la muestra para el estudio, es necesario empezar a contar de nuevo el periodo<br />
de abstinencia sexual.<br />
• Las instrucciones se deben entregar por escrito y han de ser breves, claras y concretas.<br />
• La muestra de semen siempre se obtendrá por masturbación sobre un contenedor de orina estéril de<br />
boca ancha. No pueden ser aceptadas las muestras obtenidas por coitus interruptus, puesto que existen<br />
numerosos inconvenientes, tales como la posible perdida de la primera fracción, la contaminación bacteriológica<br />
y/o celular, y el descenso de la movilidad por la acción del pH vaginal. Tampoco pueden ser<br />
aceptadas las muestras obtenidas utilizando lubricantes. . No se aceptan las muestras incompletas, puesto<br />
que las diferencias entre las distintas fracciones seminales, tanto desde el punto de vista celular como<br />
bioquímico, son muy significativas.<br />
• El lugar de obtención también es importante; el más idóneo es en el domicilio puesto que las condiciones<br />
ambientales son más favorables. Sin embargo, será siempre y cuando se tenga la garantía de que la<br />
muestra llegará al laboratorio antes de los 60 minutos.<br />
• Cuando se precisen estudios microbiológicos, las muestras han de obtenerse con extremadas condiciones<br />
de asepsia. Se recomienda la ducha y posterior lavado de manos y genitales, a continuación se obtiene<br />
la muestra de orina, primer chorro, sobre un contenedor estéril, para valorar la participación bacteriana<br />
de la uretra. Seguidamente, sobre otro contenedor estéril, se coloca la muestra de semen obtenida por<br />
masturbación.<br />
• La temperatura ideal para el transporte de las muestras debe ser de 20ºC a 25ºC, evitando cambios<br />
bruscos para que la movilidad de los espermatozoides no se vea afectada.<br />
7.12.6 Moco Nasal<br />
Su uso viene indicado en el estudio de:<br />
• Los procesos alérgicos para la cuantificación de del numero de eosinófilos en Moco y<br />
• Estudios microbiológicos que pudieran solicitarse en este tipo de muestras.<br />
Procedimiento de recogida para el estudio de eosinófilos:<br />
• Introducir un hisopo o asa calibrada en cada de uno de los orificios nasales<br />
• Distribuir el moco obtenido en un portaobjetos de la forma mas extensa posible.<br />
• Dejar secar, identificar y remitir al laboratorio<br />
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