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UNIVERSIDAD COMPLUTENSE DE MADRID - Biblioteca de la ...

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incubación <strong>de</strong> esta disolución amoniacal a 54ºC durante<br />

un tiempo <strong>de</strong> 5 a 12 horas permite <strong>la</strong> <strong>de</strong>sprotección <strong>de</strong><br />

todas <strong>la</strong>s bases <strong>de</strong> <strong>la</strong> secuencia y <strong>la</strong> obtención <strong>de</strong>l<br />

fragmento <strong>de</strong> DNA en solución acuosa.<br />

3.1.2. Purificación <strong>de</strong> oligonucleótidos.<br />

Existen varios métodos <strong>de</strong> purificación <strong>de</strong><br />

oligonucleótidos. El más cómodo y rápido consiste en <strong>la</strong><br />

utilización <strong>de</strong>l l<strong>la</strong>mado cartucho <strong>de</strong> purificación <strong>de</strong><br />

oligonucleótidos (OPC; <strong>de</strong>l inglés: Oligonucleoti<strong>de</strong><br />

Purification Cartridge). Se llevan a cabo los siguientes<br />

pasos:<br />

-Inyección a través <strong>de</strong>l cartucho (flujo <strong>de</strong> 1 a 2 gotas<br />

por segundo) <strong>de</strong> 5 ml <strong>de</strong> acetonitrilo grado HPLC.<br />

-Inyección a través <strong>de</strong>l cartucho (flujo <strong>de</strong> 1 a 2 gotas<br />

por segundo) <strong>de</strong> 5 ml <strong>de</strong> acetato <strong>de</strong> trieti<strong>la</strong>mina<br />

(TEAA) 2 M, a pH 7.0.<br />

-Inyección a través <strong>de</strong>l cartucho <strong>de</strong> 1 ml <strong>de</strong><br />

amoníaco, seguido <strong>de</strong>l volumen <strong>de</strong> <strong>la</strong> solución <strong>de</strong><br />

oligonucleótido obtenida (habitualmente 0.5 ml) y<br />

<strong>de</strong> 0.5 ml <strong>de</strong> agua bi<strong>de</strong>sti<strong>la</strong>da.<br />

-Recoger el eluyente y hacerlo pasar <strong>de</strong> nuevo por el<br />

mismo cartucho.<br />

-Lavar el cartucho con 5 ml <strong>de</strong> amoníaco diluido, 3<br />

veces.<br />

-Lavar el cartucho con 5 ml <strong>de</strong> agua bi<strong>de</strong>sti<strong>la</strong>da, 2<br />

veces.<br />

-Lavar el cartucho con 5 ml <strong>de</strong> TEAA al 2%, 2<br />

veces.<br />

-Lavar el cartucho con 5 ml <strong>de</strong> agua bi<strong>de</strong>sti<strong>la</strong>da, 2<br />

veces.<br />

-Inyectar al cartucho 1 ml <strong>de</strong> acetonitrilo al 20%: el<br />

eluyente que se recoge contiene el oligonucleótido<br />

purificado.<br />

-Desecar <strong>la</strong> solución en una centrífuga conectada a<br />

vacío.<br />

3.1.3. Precipitación <strong>de</strong> oligonucleótidos.<br />

El procedimiento para eliminar <strong>la</strong>s sales <strong>de</strong>l<br />

oligonucleótido seco es el siguiente:<br />

- Añadir 100 µl <strong>de</strong> acetato sódico 2M pH 4.5 y<br />

resuspen<strong>de</strong>r por pipeteo.<br />

-Añadir 900 µl <strong>de</strong> etanol absoluto. Homogeneizar <strong>la</strong><br />

mezc<strong>la</strong>. Enfriar 60 min a -70ºC<br />

- Centrifugar a 4ºC a 14000 rpm. Desechar el<br />

sobrenadante a vacío o por pipeteo.<br />

- Secar en centrífuga a vacío, teniendo cuidado <strong>de</strong><br />

no sobresecar.<br />

- Resuspen<strong>de</strong>r en 100 µl <strong>de</strong> agua bi<strong>de</strong>sti<strong>la</strong>da.<br />

3.1.4. Medición espectrofotométrica <strong>de</strong><br />

oligonucleótidos.<br />

Una dilución que consta <strong>de</strong> 3 µl <strong>de</strong> oligonucleótido<br />

resuspendido en 297 µl <strong>de</strong> agua bi<strong>de</strong>sti<strong>la</strong>da, se mi<strong>de</strong> al<br />

Eduardo Gómez Casado<br />

Material y Métodos 58<br />

espectrofotómetro a una longitud <strong>de</strong> onda <strong>de</strong> 260 nm.<br />

La concentración <strong>de</strong>l oligonucleótido en <strong>la</strong> solución<br />

original se obtiene aplicando <strong>la</strong> siguiente fórmu<strong>la</strong>:<br />

Factor <strong>de</strong> dilución x A 260 * x 100<br />

Concentración (µM) = -----------------------------------------------<br />

---<br />

1,54A + 0.75C + 1.17G + 0.92T<br />

* Valor <strong>de</strong> <strong>la</strong> medición a longitud <strong>de</strong> onda <strong>de</strong> 260 nm.<br />

3.1.5. Oligonucleótidos empleados.<br />

Los oligonucleótidos utilizados en <strong>la</strong> amplificación y<br />

oligotipaje <strong>de</strong> los loci HLA-A y -B se muestran en <strong>la</strong><br />

tab<strong>la</strong>s 4, 6 y 7. Los oligonucleótidos utilizados en <strong>la</strong><br />

secuenciación <strong>de</strong> alelos <strong>de</strong> c<strong>la</strong>se I y c<strong>la</strong>se II se muestran<br />

en <strong>la</strong>s tab<strong>la</strong>s 4, 8 y 9.<br />

4. AMPLIFICACIÓN Y OLIGOTIPAJE <strong>DE</strong> LOS<br />

LOCI HLA <strong>DE</strong> CLASE I<br />

4.1. AMPLIFICACIÓN <strong>DE</strong> LOS LOCI HLA <strong>DE</strong> CLASE I<br />

4.1.1. Locus HLA-A.<br />

A partir <strong>de</strong> <strong>la</strong>s secuencias exónicas (Arnett y<br />

Parham 1995) e intrónicas (Summers y col. 1993) <strong>de</strong> los<br />

alelos HLA-A, se diseñaron primers específicos para<br />

este locus (Tab<strong>la</strong> 4). La amplificación conjunta <strong>de</strong> los<br />

dos alelos HLA-A para cada individuo estudiado, rin<strong>de</strong><br />

fragmentos <strong>de</strong> aproximadamente 1000 pb y compren<strong>de</strong><br />

<strong>la</strong>s regiones nucleotídicas completas <strong>de</strong>l exón 1, intrón<br />

1, exón 2, intrón 2, exón 3 y el intrón 3 <strong>de</strong> forma<br />

parcial. Un esquema <strong>de</strong> <strong>la</strong> amplificación se muestra en<br />

<strong>la</strong> figura 24.<br />

4.1.2. Locus HLA-B.<br />

La obtención <strong>de</strong> secuencias no codificantes <strong>de</strong><br />

intrones 1, 2 y 3, permitió a Cereb y col. (1996)<br />

establecer un dimorfismo en el intrón 1 para alelos <strong>de</strong><br />

HLA-B. En base a este dimorfismo, los alelos HLA-B<br />

pue<strong>de</strong>n c<strong>la</strong>sificarse en dos grupos diferenciados (ver<br />

Tab<strong>la</strong> 5). El diseño <strong>de</strong> dos primers para el extremo 5'<br />

específicos <strong>de</strong> cada grupo, y <strong>de</strong> un primer 3' genérico <strong>de</strong><br />

todos los alelos HLA-B (ver Tab<strong>la</strong> 4), permite aplicar a<br />

un mismo DNA <strong>la</strong>s dos amplificaciones <strong>de</strong> grupo. Si el<br />

DNA amplifica sólo para uno <strong>de</strong> los dos grupos, bien<br />

grupo CG bien grupo TA, indicará que los dos alelos<br />

pertenecen a este grupo. De lo contrario, el individuo<br />

será heterocigoto <strong>de</strong> grupo para HLA-B. Esta<br />

separación específica en <strong>la</strong> PCR nos va a facilitar <strong>la</strong><br />

resolución <strong>de</strong> los alelos HLA-B en el oligotipaje.<br />

Las amplificaciones rin<strong>de</strong>n fragmentos <strong>de</strong><br />

aproximadamente 900 pb, y compren<strong>de</strong> <strong>la</strong>s regiones<br />

nucleotídicas <strong>de</strong>l intrón 1 (parcial), exón 2, intrón 2,<br />

exón 3 y el intrón 3 (parcial). Un esquema <strong>de</strong> <strong>la</strong>

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