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14 Editorial UnQ el virus JuNíN SERIE DIGITAL 10 / CIEnCIA y TECnoLoGíA Como antes se indicó, el virus Junín es un miembro de la familia Arenaviridae que comparte las características propias de este conjunto de patógenos animales. el reservorio natural del junv es la laucha manchada (Calomys musculinus), aunque también ha sido aislado de la laucha chica (Calomys laucha), del ratón de pastizal pampeano (Akodon azarae), y del ratón colilargo menor (Oligorizomys flavescens) (maiztegui, 1975; mcCormick, 1990). todos estos son roedores sigmodontinos, originarios de américa. sin embargo, el junv, ocasionalmente, también fue aislado del ratón común (Mus musculus), un animal originario del viejo mundo. esta situación revela la capacidad de adaptación de los arenavirus, dado que este microbio se puso en contacto, a lo sumo, hace cinco siglos, con el roedor europeo. esta característica tiene especial relevancia respecto a la epidemiología de la fha. en particular, porque aumenta el riesgo de que especies diferentes, con distintos nichos ecológicos, se conviertan en potenciales nuevos reservorios. en los roedores susceptibles, el virus cumple un ciclo que asegura su mantenimiento en la naturaleza. es así que, por lo general, se encuentran títulos virales altos en casi todos los órganos y fluidos corporales, como la sangre y, particularmente, la saliva del animal. los animales afectados presentan infecciones crónicas inaparentes, con eliminación persistente del virus al medio ambiente. esto mostraría una relación ancestral, la cual ha permitido una convivencia que permite la supervivencia de ambas entidades biológicas. el junv posee un genoma segmentado conformado por los arn s y l. la molécula menor codifica la proteína n (factor mayoritario del virión) y el precursor de las glicoproteínas virales (gpc). durante el ciclo infeccioso, la gpc producida es procesada por la maquinaria celular, para dar lugar a tres fragmentos que corresponden al péptido señal (ps) y a las glicoproteínas g1 y g2. estos polipéptidos se ubican en la envoltura del virión y se asocian entre sí de manera no covalente, constituyendo unas espículas claviformes de 5-10 nm de longitud. el precursor gpc es un polipéptido que, en su forma no glicosilada, tendría aproximadamente 56 kda. Para lcm, dentro de esta secuencia se establecieron tres regiones definidas: el péptido señal, desde el aminoácido 1 al 58, que permite el direccionamiento de la proteína al retículo endoplasmático rugoso; la glicoproteína g1, desde el aminoácido 59 al 247; y la glicoproteína g2, desde el aminoácido 248 al 485 (buchmeier y oldstone, 1979). el procesamiento proteolítico de este precursor se produce, de manera ordenada, en dos eventos independientes y mediados por dos enzimas celulares diferentes. en un primer paso, el ps es separado por acción de la peptidasa señal celular, antes de que el polipéptido abandone el retículo endoplasmático. el fragmento separado es miristoilado y permanece asociado de forma no covalente con las glicoproteínas virales (york et al., 2004). esta asociación sería necesaria para el correcto direccionamiento del precursor hacia el aparato de Golgi (agnihothram
15 Editorial UnQ SERIE DIGITAL 10 / CIEnCIA y TECnoLoGíA et al., 2006). el segundo clivaje ocurre entre el Golgi medio y el trans-Golgi, mediante la subtilasa ski-1/s1p, generando así las proteínas g1 y g2 (burns y buchmeier, 1993). la conformación de las glicoproteínas en el virión maduro estaría dada por un homopolímero de g1 unido no covalentemente a un homopolímero de g2, el cual se encuentra asociado al ps. la evidencia experimental revela que estas proteínas se asocian en forma de trímeros (eschli et al., 2006). g1 es una proteína periférica, mientras que g2 posee tres regiones diferentes. en el extremo amino terminal se encuentra el dominio externo, de interacción con g1; en el centro de la proteína existe una región hidrofóbica de anclaje a membrana; y por último, en el extremo carboxilo terminal se encuentra el dominio interno que, aparentemente, interactúa con la proteína viral z (Figura 4). Figura 4. interacción de las proteínas del virus Junín. el esquema representa la estructura de las membranas del virión según la evidencia experimental vigente. el trímero de g1 mira hacia el exterior, mientras que z, n y las moléculas de arn forman parte del interior del virus Junín. el arn genómico mayor contiene el marco de lectura que codifica la proteína l (polipéptido con actividad de arn polimerasa dependiente de arn), responsable de la replicación del genoma viral. en el extremo 5’ de la misma molécula, se encuentra codificada la proteína z (inicialmente denominada p11), que posee un motivo de tipo zinc finger en el dominio central de la molécula, lo que le valió su nombre. se ha propuesto que la proteína z tendría funciones regulatorias negativas de la replicación y transcripción (lópez et al., 2001; Cornu y de la torre, 2002) y que, además, podría funcionar en los arenavirus como el equivalente de la proteína de matriz de los virus con genomas de arn simple de cadena y polaridad negativa (Perez et al., 2003).
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et al., 2006). el segundo clivaje ocurre entre el Golgi medio y el trans-Golgi,<br />
mediante la subtilasa ski-1/s1p, generando así las proteínas g1 y g2 (burns y<br />
buchmeier, 1993).<br />
la conformación <strong>de</strong> las glicoproteínas en el virión maduro estaría dada por<br />
un homopolímero <strong>de</strong> g1 unido no covalentemente a un homopolímero <strong>de</strong><br />
g2, el cual se encuentra asociado al ps. la evi<strong>de</strong>ncia experimental revela que<br />
estas proteínas se asocian en forma <strong>de</strong> trímeros (eschli et al., 2006). g1 es una<br />
proteína periférica, mientras que g2 posee tres regiones diferentes. en el extremo<br />
amino terminal se encuentra el dominio externo, <strong>de</strong> interacción con g1; en el<br />
centro <strong>de</strong> la proteína existe una región hidrofóbica <strong>de</strong> anclaje a membrana; y por<br />
último, en el extremo carboxilo terminal se encuentra el dominio interno que,<br />
aparentemente, interactúa con la proteína viral z (Figura 4).<br />
Figura 4. interacción <strong>de</strong> las proteínas <strong>de</strong>l virus Junín. el esquema representa la<br />
estructura <strong>de</strong> las membranas <strong>de</strong>l virión según la evi<strong>de</strong>ncia experimental vigente. el<br />
trímero <strong>de</strong> g1 mira hacia el exterior, mientras que z, n y las moléculas <strong>de</strong> arn forman<br />
parte <strong>de</strong>l interior <strong>de</strong>l virus Junín.<br />
el arn genómico mayor contiene el marco <strong>de</strong> lectura que codifica la proteína l<br />
(polipéptido con actividad <strong>de</strong> arn polimerasa <strong>de</strong>pendiente <strong>de</strong> arn), responsable<br />
<strong>de</strong> la replicación <strong>de</strong>l genoma viral. en el extremo 5’ <strong>de</strong> la misma molécula, se<br />
encuentra codificada la proteína z (inicialmente <strong>de</strong>nominada p11), que posee un<br />
motivo <strong>de</strong> tipo zinc finger en el dominio central <strong>de</strong> la molécula, lo que le valió<br />
su nombre. se ha propuesto que la proteína z tendría funciones regulatorias<br />
negativas <strong>de</strong> la replicación y transcripción (lópez et al., 2001; Cornu y <strong>de</strong><br />
la torre, 2002) y que, a<strong>de</strong>más, podría funcionar en los arenavirus como el<br />
equivalente <strong>de</strong> la proteína <strong>de</strong> matriz <strong>de</strong> los virus con genomas <strong>de</strong> arn simple <strong>de</strong><br />
ca<strong>de</strong>na y polaridad negativa (Perez et al., 2003).