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5.9 RMN Bidimensional

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Resonancia Magnética Nuclear<br />

Mezcla.- Consta de una secuencia retro-INEPT. Aquí las coherencias X en antifase con el protón<br />

se reconvierten por transferencia de polarización en coherencias protónicas en antifase con X y al<br />

final de la etapa quedan como coherencias protónicas en fase.<br />

Detección.- Las coherencias protónicas evolucionan de acuerdo a sus desplazamientos químicos y<br />

n<br />

acoplamientos homonucleares P PJBHHB eliminándose el acoplamiento heteronuclear con X mediante<br />

el desacoplador.<br />

Tenemos entonces:<br />

13<br />

Evolución durante tB1B: δ (P<br />

PC*)<br />

1<br />

13 n<br />

Detección durante tB2B: δ (P PH-unidos a P<br />

PC*) + P PJBHHB<br />

La diferencia fundamental con el HMQC radica en que en la dimensión FB1B están ausentes los<br />

acoplamientos homonucleares, por lo que los anchos de línea en esta dimensión están<br />

apreciablemente reducidos en el HSQC. Cuando se desea una buena resolución en FB1B por la<br />

presencia de un gran número de señales, el experimento a escoger es el HSQC. Así, el espectro<br />

15<br />

1 15<br />

patrón para caracterizar una proteína marcada con P<br />

PN es el P PH-P<br />

PN-HSQC, que debe mostrar un<br />

número de picos equivalentes al de residuos aminoacídicos en la estructura. En la Figura 5.133 se<br />

1 15<br />

muestra el espectro P PH-P<br />

PN-HSQC de una proteína.<br />

1 15<br />

Figura 5.133 Espectro (sección) P PH-P<br />

PN-HSQC 600 MHz de<br />

la fracción soluble de un citocromo c (100 residuos AA)<br />

Cada uno de los picos de cruce en el espectro anterior corresponde al grupo N-H de un residuo<br />

aminoacídico. Obsérvese el gran número de señales que pueden distinguirse en esta parte del<br />

207

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