metodos_estudio_interaccion_planta_patogeno
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ESTUDIO DE LAS<br />
INTERACCIONES PLANTA- PLANTA<br />
HONGOS PATOGÉNICOS<br />
PATOG NICOS<br />
Clase I - conceptos<br />
Marciel J. Stadnik<br />
CC<br />
LABFITOP<br />
UFSCV<br />
UFSCV<br />
stadnik@cca.ufsc.br<br />
Clasificación Clasificaci n de hongos:<br />
Cuanto a la relación relaci n parasitaria:<br />
Parásitos Par sitos obligados: obligados:<br />
Ciclo de vida ocurre<br />
exclusivamente en el tejido vivo del huésped hu sped<br />
Parásitos Par sitos no obligados<br />
Saprófitos Sapr fitos facultativos<br />
Patógenos Pat genos facultativos<br />
Preguntas? Preguntas?<br />
> Respuestas<br />
Cual órgano rgano y tejido es infectado por el hongo?<br />
Como ocurre la infección? infecci n? directa o indirecta?<br />
Cuales células c lulas del huésped hu sped son colonizadas?<br />
(epidermis, mesófilo mes filo, , etc.)<br />
Cuáles Cu les son los mecanismos involucrados con<br />
la defensa de la <strong>planta</strong> contra el hongo?<br />
Clasificación Clasificaci n de hongos<br />
Cuanto a las relaciones nutricionales (Luttrell ( Luttrell,1974): ,1974):<br />
Necrotrófico<br />
Necrotr fico (Pertotrofico<br />
Pertotrofico): ): patógeno pat geno mata<br />
las células c lulas do huésped hu sped antes de colonizarlas<br />
Alternaria spp.<br />
Hemibiotrófico<br />
Hemibiotr fico: patógeno pat geno forma inicialmente una asociación asociaci n<br />
con células c lulas vivas del huésped, hu sped, y mas tarde se vuelve<br />
necrotrófico<br />
necrotr fico<br />
Ex: Colletotrichum spp.<br />
Biotrófico Biotr fico: patógeno pat geno se nutre de tejido vivo<br />
Oídios dios, , Rojas<br />
Características<br />
Caracter sticas<br />
organismos biotróficos<br />
biotr ficos<br />
estructuras de infección infecci n altamente<br />
desarrolladas<br />
baja actividad de enzimas líticas l ticas<br />
camadas interfaciales que separan las<br />
membranas plasmáticas plasm ticas del hongo y <strong>planta</strong><br />
mecanismos de supresión supresi n de defensa del<br />
huésped hu sped<br />
haustórios haust rios<br />
(Mendgen Mendgen & Hahn, Hahn,<br />
2002).<br />
1
Modo de infección infecci n y<br />
colonización<br />
colonizaci<br />
Rojas (basidiomycota<br />
basidiomycota)<br />
Oídios dios (ascomycota<br />
ascomycota) )<br />
Colletotrichum lindemuthianum y<br />
Colletotrichum gloeosporioides<br />
= presentan diferentes tipos y grados de<br />
desarrollo biotrófico biotr fico. .<br />
Uromyces appendiculatus<br />
Roja de la soja<br />
(Phakopsora<br />
Phakopsora pachyrhizi)<br />
pachyrhizi<br />
Penetración directa !<br />
Koch et al. (1983)<br />
Rojas<br />
(biotr biotróficos ficos del mesófilo)<br />
mes filo)<br />
Formación Formaci n de apresório<br />
apres rio en<br />
respuesta a características<br />
caracter sticas<br />
topográficas<br />
topogr ficas<br />
Microscopía Microscop de luz<br />
Tests in vitro sobre papel celofán<br />
celof<br />
Allen et al. (1991)<br />
2
Oídios dios<br />
(biotr biotróficos ficos de la epidermis)<br />
epidermis<br />
Proceso de infección infecci n de<br />
Blumeria Blumeria graminis graminis<br />
MICROSCOPÍA DE<br />
FLUORENCIA<br />
COMPUESTOS FENÓLICOS<br />
MICROSCOPÍA<br />
ELECTRÓNICA DE<br />
VARREDURA<br />
SUPERFICIE<br />
Análisis An lisis inmunocitológicas<br />
inmunocitol gicas y geles<br />
Microscopia de<br />
fluorescencia (MF)<br />
Padrón Padr n de expresión expresi n de ARD1<br />
- Arabitol Desidrogenase<br />
(A) Representación Representaci n de las<br />
estructruras de infección infecci n de la<br />
roja: 1, uredósporo<br />
ured sporo (SP); 2, tubo<br />
germinativo (GT) 4 h después despu s de<br />
la germinación; germinaci n; 3–6, 3 6, estructuras de<br />
infección infecci n in vitro en estadíos estad os<br />
siguientes: 3, apresório apres rio (AP) (6 h);<br />
4, vesícula ves cula subestomatal (SV) (12<br />
h); 5, hifa de infección infecci n (IH) (18 h);<br />
6, célula c lula-madre madre haustorial (HM)<br />
estadío estad (21 h); 7, haustório haust rio (HA);<br />
8, hojas infectadas; 9, no<br />
infectadas (estructuras 2–6 2 6 obtidas<br />
in vitro).; vitro).;<br />
NB, gola do pescoço; pesco ;<br />
EM, matriz extrahaustorial.<br />
extrahaustorial.<br />
(B) Gele de agarosa<br />
(C) Northern blot de geles<br />
descritos en (B). ( ).<br />
Blumeria graminis<br />
Link et al. (2005)<br />
Luz incidente 100 a 400nm<br />
Filtro antes de la lente objetiva permite apenas<br />
el pasaje de luz excitada<br />
Componentes autofluorescentes (ex.<br />
compuestos fenólicos) fen licos)<br />
Fluorocromos como sondas<br />
En materiales fijados y no fijados<br />
Proteínas Prote nas fluorescentes (expresadas<br />
( expresadas o<br />
microinyectadas)<br />
microinyectadas)<br />
en células lulas vivas.<br />
3
Electron microscopy<br />
Live-cell Live cell imaging<br />
1- Staining<br />
- Conidia collected from 7-16 16 old cultures and<br />
suspended in water (1x10 6 conidia/mL)<br />
conidia/mL)→<br />
inoculate PDB in slide culture chamber. chamber<br />
- Incubated for 24h,48 and 72h.<br />
- Calcofluor White(0,12 M)→ M) for cell wall<br />
- DAPI→ DAPI for nuclei<br />
- DiCO 6 → for mitochondria<br />
- Carboxy-DFDA<br />
Carboxy DFDA → for vacuoles<br />
- Inverted microscope equipped with blue<br />
diode and argon ion lasers<br />
Spores collected by<br />
touching a 15-day 15 day old<br />
culture with nylon<br />
hybridisation membrane,<br />
membrane,<br />
or fixed and mounted<br />
directly pod. pod<br />
from de bean<br />
Técnicas cnicas microscópicas microsc picas para la<br />
evaluación evaluaci de anastomosis conidial<br />
Labelling<br />
GFP<br />
Live‐cell imaging<br />
Carboxy‐DFDA<br />
Electron microscopy<br />
Staining Scanning Transmission<br />
DAPI<br />
DiCO 6<br />
Calcofluor White<br />
Microscópio<br />
Microsc pio óptico ptico &<br />
GUS e GFP<br />
Expresión Expresi génica nica a nivel celular mediante el uso de<br />
genes repórteres rep rteres visualmente detectables<br />
GUS (β-D-glucoronidasa<br />
( glucoronidasa)<br />
Marcadores histoquímicos histoqu micos y genes repórteres rep rteres<br />
Son introducidos em el hongo de interés. inter . Amuestras<br />
son colectadas y colocadas para reaccionar con el<br />
substrato de GUS(5-bromo<br />
GUS(5 bromo-4-cloro cloro-3-indolyl indolyl-β-D-<br />
glucorónido<br />
glucor nido (X-GlcA GlcA) ) → precipitado azul<br />
http://www.springerlink.com/content/w751815875t11p4<br />
0/fulltext.pdf<br />
2- Labelling with GFP<br />
- Protoplast obtained from young mycelia in NaCl as osmotic<br />
stabilizer<br />
- Incubation of protoplasts for 3h with Lyzing Enzymes. Enzymes<br />
- Tranformation of protoplasts with the plasmid pMF357 which<br />
carried hH1-sgfp hH1 sgfp gene and hph gene for hygromycin<br />
resistance<br />
- Mixture transfered to regeneration agar and hygromycin B<br />
- Conidia obtained from transformants were spread onto PDA<br />
containing hygromycin.<br />
hygromycin<br />
- Single conidia expressing hH1-sFGP hH1 sFGP were selected using a<br />
fluorescence stereo microscope with GFP filter set<br />
4
Propidium iodide<br />
(nuclei)<br />
DAPI (nuclei) Carboxy‐DFDA (vacuoles)<br />
Calcofluor White (cell walls) hH1 ‐GPF<br />
Metodologia<br />
1) Colecta de discos de tejido foliar después de la inoculación<br />
1) Solución I: (etanol/ácido acético glacial; 3:1, v/v) para fijación y clareamento de<br />
los tejidos.<br />
- 24 -48 h/ cambios de soluciones<br />
2) Solución II: lactoglicerol (ác. lático, glicerol y agua)<br />
para continuar el clareamento y conservación.<br />
4) Visualización al microscopio óptico (hasta 3 meses)<br />
Stadnik e Buchenauer (2000):<br />
Puntos importantes:<br />
- Conducción con máximo cuidado para evitar el desprendimiento de esporas adheridos<br />
suavemente en las hojas.<br />
- Las estructuras del hongo son teñidas con azul de anilina en lactofenol (0,1%) o Coomansie<br />
blue o tripan blue.<br />
- El porcentaje de germinación, la formación de apresórios y la penetración son evaluados<br />
sobre cada disco foliar, observando-se 100 esporas/disco.<br />
Crecimiento del hongo in in<br />
<strong>planta</strong> <strong>planta</strong><br />
Incubar por 12 h y<br />
substituir la solución<br />
de clareamento por<br />
glicerol 70%.<br />
Incubación con solución de<br />
coloración (azul de tripan<br />
2,5 mg/mL em lactofenol + 2<br />
volúmenes de etanol) a<br />
100°C por 1 min.<br />
Incubar por 6 h y<br />
substituir la solución<br />
de clareamento por<br />
una nueva.<br />
Weigel e Glazebrook (2002)<br />
Resfriar el<br />
material por 1 h a<br />
temperatura<br />
ambiente.<br />
Remover la solución<br />
de coloración y<br />
adicionar cloral<br />
hidratado (2,5 g/mL).<br />
Metodología Metodolog básica sica<br />
SOLUCIÓN DE CONSERVACIÓN<br />
DISCOS FOLIARES<br />
SOLUCIÓN PARA<br />
CLAREAMENTO<br />
Fitopatologia Brasileira, 31 (supl.) 79-80, 2006<br />
Detección Detecci de la reacción reacci de<br />
hipersensibilidad en<br />
Arabidopsis<br />
Arabidopsis<br />
Incubar en solución<br />
de diaminobenzidina<br />
(1 mg/mL) por 8 h<br />
Weigel e Glazebrook (2002)<br />
Decoloración en<br />
etanol 100% por 3h.<br />
Solución de<br />
conservación<br />
(glicerol 70%)<br />
5
Detección Detecci de la reacción reacci de<br />
hipersensibilidad en poroto<br />
Conservación en<br />
ácido láctico: glicerol:<br />
agua (1:1:1, v/v/v)<br />
Decoloración en ácido<br />
tricloroacético 0,15%<br />
p/v; en etanol:<br />
clorofórmio (4:1)<br />
Foto: Reacción Reacci de<br />
hipersensibilidad<br />
Hϋckelhoven (1999)<br />
Solución de<br />
diaminobenzidina<br />
(1mg/mL)<br />
Desarrollo biotrófico<br />
biotr fico de<br />
los oídios o dios<br />
A<br />
Fotos: Crecimiento del hongo<br />
in in <strong>planta</strong> <strong>planta</strong><br />
Plantas inoculadas con una gota de 10uL de una<br />
suspensión suspensi de esporas de A. brassicicola (10 6<br />
conídios/mL)<br />
con dios/mL)<br />
Evaluación Evaluaci realizada a los 4 dias después despu de la<br />
inoculación inoculaci<br />
Metodología Metodolog básica sica<br />
SOLUCIÓN DE CONSERVACIÓN<br />
DISCOS FOLIARES<br />
SOLUCIÓN PARA<br />
CLAREAMIENTO<br />
Técnicas cnicas histoquímicas<br />
histoqu micas<br />
Johansen (Capítulo (Cap tulo IX)<br />
Clareamiento y tinción tinci de los tejidos<br />
6
Oídio dio del Pepino<br />
Podosphaera Podosphaera xanthii xanthii<br />
Hemibiotróficos<br />
Hemibiotr ficos<br />
(Colletotrichum<br />
Colletotrichum lindemuthianum)<br />
lindemuthianum<br />
Antracnose del frijol<br />
Tipos de haustórios<br />
haust rios<br />
Hemibiotróficos<br />
Hemibiotr ficos<br />
(dos “faces faces” de un patógeno<br />
pat geno)<br />
Colletotrichum lindemuthianum<br />
7
Colletotrichum lindemuthianum (24 hai)<br />
Colletotrichum Colletotrichum gloeosporioides<br />
gloeosporioides<br />
Manzano<br />
?<br />
Colletotrichum gloeosporioides (48 hai)<br />
8