HYDRAGEL HEMOGLOBIN(E) K20
HYDRAGEL HEMOGLOBIN(E) K20 - Sebia Electrophoresis
HYDRAGEL HEMOGLOBIN(E) K20 - Sebia Electrophoresis
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Fixation avec la solution de fixation :<br />
1. Placer le gel dans un portoir (fourni dans le kit accessoires <strong>HYDRAGEL</strong> <strong>K20</strong> SEBIA).<br />
2. Remplir un bac (fourni dans le kit accessoires <strong>HYDRAGEL</strong> <strong>K20</strong> SEBIA) avec 150 mL de solution de fixation.<br />
3. Immerger le gel dans la solution de fixation pendant 15 minutes.<br />
4. Sortir le gel et le sécher sous air chaud à 80 °C dans l’incubateur-sécheur.<br />
IMPORTANT : Le gel doit être parfaitement sec.<br />
<strong>HYDRAGEL</strong> <strong>HEMOGLOBIN</strong>(E) <strong>K20</strong> - 2005/03<br />
III. COLORATION - DÉCOLORATION<br />
1. Immerger le gel sec et refroidi dans la solution colorante pendant 5 minutes.<br />
2. Décolorer par trois bains successifs minimum de décolorant jusqu’à obtention d’un fond parfaitement clair.<br />
3. Éliminer l’excès de liquide en surface du gel avec un papier ouaté et sécher le gel sous air chaud à 80 °C. Si nécessaire, nettoyer le dos du<br />
gel (support plastique) avec un papier ouaté humide.<br />
IV. LECTURE<br />
Lire au densitomètre / scanner avec un filtre jaune ou à 570 nm : sur les densitomètres HYRYS ou DVSE, positionner la fraction A 2<br />
sur le repère 5 mm<br />
du plateau de lecture de façon à placer le zéro sur le point le plus bas entre la fraction anhydrase carbonique et la fraction A 2<br />
.<br />
NOTE : Afin d’assurer les résultats les plus exacts et cohérents :<br />
- Ajuster la longueur de lecture à 30 mm de façon à inclure le profil électrophorétique entier.<br />
- Positionner les minima de façon à encadrer au plus près la fraction A 2<br />
.<br />
Il est recommandé d’analyser les profils électrophorétiques le plus rapidement possible. Les gels conservés à l’obscurité, dans un endroit sec et à<br />
l’abri de toute source de chaleur peuvent être interprétés qualitativement dans un délai de trois mois.<br />
RÉSULTATS<br />
Contrôle Qualité<br />
Pour chaque série d’analyses, il est recommandé d’inclure un sang de contrôle ou un échantillon de contrôle contenant des hémoglobines A, F, S<br />
et C.<br />
Valeurs<br />
La lecture à 570 nm par densitométrie permet de définir les concentrations relatives (pourcentages) de chaque fraction.<br />
Les valeurs normales (moyennes ± 2 écarts types) pour chaque fraction dans la technique <strong>HYDRAGEL</strong> <strong>HEMOGLOBIN</strong>(E) <strong>K20</strong>, ont été établies à<br />
partir d’une population de 200 adultes (hommes et femmes), en bonne santé :<br />
Hémoglobine A ≥ 96,5 %<br />
Hémoglobine F < 2,0 % (*)<br />
Hémoglobine A 2<br />
≤ 3,5 %<br />
(*) cf Interférences et limites<br />
Il est recommandé à chaque laboratoire d’établir ses propres valeurs normales.<br />
Interprétation<br />
1. Anomalies qualitatives : Hémoglobinopathies<br />
La plupart sont des anomalies de structure, dues au remplacement par mutation d'un acide aminé par un autre sur l'une ou l'autre chaîne. Les<br />
conséquences de la mutation varient suivant la position de l'acide aminé muté et de celui qui le remplace, l'intégrité de certaines parties de la molécule<br />
étant plus particulièrement nécessaire à sa viabilité et à son bon fonctionnement.<br />
Plus de 200 variants de l'hémoglobine adulte sont actuellement définis et décrits. Les premières hémoglobines anormales étudiées, et les plus<br />
nombreuses, sont dues à une modification de la charge électrique globale de la molécule, entraînant une détection facile par électrophorèse.<br />
Quatre hémoglobines anormales principales présentent un intérêt particulier, d'un point de vue anthropologique et médical : S, C, E et D.<br />
Le kit <strong>HYDRAGEL</strong> <strong>HEMOGLOBIN</strong>(E) <strong>K20</strong> est destiné à la détection des hémoglobinopathies et des thalassémies. Dès qu’une anomalie est détectée,<br />
il est conseillé de la confirmer à l’aide de tests complémentaires tels que l’électrophorèse sur gel acide.<br />
Hémoglobine S<br />
La plus fréquente, due à une mutation d’un acide glutamique de la chaîne ß (acide aminé acide) par une valine (acide aminé neutre) : la mobilité est<br />
dans ce cas diminuée. Dans la technique <strong>HYDRAGEL</strong> <strong>HEMOGLOBIN</strong>(E) <strong>K20</strong>, en tampon alcalin, l'hémoglobine S migre en position médiane entre<br />
les fractions A et A 2<br />
.<br />
Hémoglobine C<br />
La mutation est due à un acide glutamique de la chaîne ß, remplacé par une Iysine (acide aminé basique), la mobilité est dans ce cas très réduite.<br />
Dans la technique <strong>HYDRAGEL</strong> <strong>HEMOGLOBIN</strong>(E) <strong>K20</strong>, les hémoglobines C et E se trouvent parfaitement superposées à la fraction A 2<br />
. Quand cette<br />
fraction est supérieure à 15 %, la présence d’hémoglobines C et E peut alors être suspectée.<br />
Hémoglobine E<br />
Un acide glutamique de la chaîne ß est remplacé par une Iysine. Dans la technique <strong>HYDRAGEL</strong> <strong>HEMOGLOBIN</strong>(E) <strong>K20</strong>, cette hémoglobine migre<br />
exactement comme l'hémoglobine C. En tampon acide [technique <strong>HYDRAGEL</strong> ACID(E) <strong>HEMOGLOBIN</strong>(E) <strong>K20</strong>], elle ne se sépare pas des<br />
hémoglobines A et A 2<br />
, ce qui permet de la différencier de l’hémoglobine C.<br />
Hémoglobine D<br />
Un acide glutamique de la chaîne ß est remplacé par une glutamine. Dans la technique <strong>HYDRAGEL</strong> <strong>HEMOGLOBIN</strong>(E) <strong>K20</strong>, cette hémoglobine migre<br />
exactement comme l'hémoglobine S. En tampon acide [technique <strong>HYDRAGEL</strong> ACID(E) <strong>HEMOGLOBIN</strong>(E) <strong>K20</strong>], elle ne se sépare pas des<br />
hémoglobines A et A 2<br />
, ce qui permet de la différencier de l’hémoglobine S.<br />
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