Helmholtz-Gemeinschaft
Einflussfaktoren auf die Stabilität und Aktivität der ... - JuSER
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Material & Methoden<br />
Ethidiumbromid-Lösung:<br />
0,1-0,5 µg/ml Gel Ethidiumbromid<br />
Die Wanderungsgeschwindigkeit der DNA-Fragmente ist abhängig von ihrem Molekulargewicht,<br />
ihrer Konformation, der Konzentration des Agarosegels und der Stärke des<br />
elektrischen Feldes. Je nach Größe der zu trennenden DNA-Fragmente erfolgte die<br />
Auftrennung in 1% – 2%igen Agarosegelen. Hierfür wurde die entsprechende Menge Agarose<br />
(w/v) in 0,5x TBE-Puffer aufgekocht und mit Ethidiumbromid-Lösung versetzt. Die DNA-<br />
Proben wurden mit 20% 5x DNA-Probenpuffer versetzt und anschließend in die Taschen<br />
eines horizontalen Agarosegels pipettiert. Die Elektrophorese fand in Gelkammern bei einer<br />
auf 60 mA limitierter Stromstärke sowie konstanten Spannungen zwischen 8 und 12 V/cm,<br />
bezogen auf die Länge des Gels statt. Als Laufpuffer diente 0,5x TBE-Puffer. Bei jedem Gel<br />
wurde der Längenstandard „Gene Ruler 1kb DNA ladder” (Fermentas, St. Leon Rot,<br />
Deutschland) mitgeführt.<br />
3.4.3 Konzentrationsbestimmung von Nukleinsäuren<br />
Die Konzentrationen von DNA-Proben wurden mittels<br />
analytischer Agarose-Gelelektrophorese (Kapitel 3.4.2)<br />
anhand des Längenstandards „Gene Ruler 1kb DNA<br />
ladder” (Fermentas, St. Leon Rot, Deutschland),<br />
welcher distinkte Mengen an DNA beinhaltet,<br />
abgeschätzt.<br />
Abb. 15: Gene Ruler 1 kb DNA<br />
ladder.<br />
Quelle: http://www.fermentas.com<br />
3.4.4 Herstellung transformationskompetenter E. coli-Zellen<br />
TMF-Puffer:<br />
Mg 2+ -Mix:<br />
100 mM CaCl 2 500 mM MgCl 2<br />
50 mM RbCl 500 mM MgSO 4<br />
40 mM MnCl 2<br />
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