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Einflussfaktoren auf die Stabilität und Aktivität der ... - JuSER

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Material & Methoden<br />

Ethidiumbromid-Lösung:<br />

0,1-0,5 µg/ml Gel Ethidiumbromid<br />

Die Wanderungsgeschwindigkeit der DNA-Fragmente ist abhängig von ihrem Molekulargewicht,<br />

ihrer Konformation, der Konzentration des Agarosegels und der Stärke des<br />

elektrischen Feldes. Je nach Größe der zu trennenden DNA-Fragmente erfolgte die<br />

Auftrennung in 1% – 2%igen Agarosegelen. Hierfür wurde die entsprechende Menge Agarose<br />

(w/v) in 0,5x TBE-Puffer aufgekocht und mit Ethidiumbromid-Lösung versetzt. Die DNA-<br />

Proben wurden mit 20% 5x DNA-Probenpuffer versetzt und anschließend in die Taschen<br />

eines horizontalen Agarosegels pipettiert. Die Elektrophorese fand in Gelkammern bei einer<br />

auf 60 mA limitierter Stromstärke sowie konstanten Spannungen zwischen 8 und 12 V/cm,<br />

bezogen auf die Länge des Gels statt. Als Laufpuffer diente 0,5x TBE-Puffer. Bei jedem Gel<br />

wurde der Längenstandard „Gene Ruler 1kb DNA ladder” (Fermentas, St. Leon Rot,<br />

Deutschland) mitgeführt.<br />

3.4.3 Konzentrationsbestimmung von Nukleinsäuren<br />

Die Konzentrationen von DNA-Proben wurden mittels<br />

analytischer Agarose-Gelelektrophorese (Kapitel 3.4.2)<br />

anhand des Längenstandards „Gene Ruler 1kb DNA<br />

ladder” (Fermentas, St. Leon Rot, Deutschland),<br />

welcher distinkte Mengen an DNA beinhaltet,<br />

abgeschätzt.<br />

Abb. 15: Gene Ruler 1 kb DNA<br />

ladder.<br />

Quelle: http://www.fermentas.com<br />

3.4.4 Herstellung transformationskompetenter E. coli-Zellen<br />

TMF-Puffer:<br />

Mg 2+ -Mix:<br />

100 mM CaCl 2 500 mM MgCl 2<br />

50 mM RbCl 500 mM MgSO 4<br />

40 mM MnCl 2<br />

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