JUILLET
CASFMV2_030915
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Remarque : L’ertapénème a été inclus car c’est<br />
le carbapénème le plus adapté pour détecter les<br />
souches productrices de carbapénèmase. La CMI de<br />
l’ertapénème a été déterminée par la méthode des<br />
bandelettes :<br />
(i) lorsque le diamètre d’inhibition autour du disque<br />
d’ertapénème (10 µg) était < 28 mm selon la<br />
méthode du CASFM avant 2014 et < 25 mm selon<br />
la méthode du CASFM/EUCAST depuis 2014<br />
(ii) lorsque la CMI estimée était > 0,5 mg/L<br />
par les systèmes automatisés. Une CMI > 0,5<br />
mg/L (méthode de la bandelette) permettait de<br />
considérer que la souche étudiée était non sensible<br />
à l’ertapénème. Au total les souches retenues<br />
comme non-sensibles à l’ertapénème avaient une<br />
CMI E-test > 0,5 mg/L.<br />
L’analyse statistique des résultats obtenus, individuels<br />
ou combinés a permis d’établir un algorithme de<br />
criblage d’une sensibilité de 100% et d’une spécificité<br />
maximale (Figure 1.)<br />
Cet algorithme a également été validé avec<br />
l’inoculum lourd CA-SFM 2014 vis à vis de 52<br />
isolats producteurs de carbapénèmases et 55<br />
isolats tirés au sort parmi les isolats non sensibles aux<br />
carbapènèmes et non producteurs de carbapénèmase.<br />
Conclusion<br />
La sensibilité du dépistage avec l’algorithme est de<br />
100% dans cette étude, sa spécificité varie de 79<br />
à 69 % selon l’utilisation ou non en complément de<br />
la gélose Mueller Hinton cloxacilline pour les isolats<br />
appartenant aux espèces d’entérobactéries du<br />
groupe 3. Pour une prévalence de 10% de souches<br />
productrices de carbapénèmase au sein des souches<br />
d’entérobactéries non sensibles aux carbapénèmes,<br />
la VPP de l’algorithme sera de 34% et la VPN proche<br />
de 100%. Les valeurs seront, respectivement, de 54 et<br />
100% pour une prévalence de 20%. L’avantage de cet<br />
algorithme applicable dans tout type de laboratoire est<br />
d’éliminer avec un maximum de certitude les souches<br />
non productrices de carbapénèmase et ainsi de réduire<br />
(i) le nombre de patients à mettre en condition drastique<br />
d’isolement de type contact et (ii) le nombre de souches<br />
à soumettre à des tests confirmant ou infirmant la<br />
production d’une carbapénèmase.<br />
Références<br />
1. Robert J, Pantel A, Merens A et al. Incidence rates of<br />
carbapenemase-producing Enterobacteriaceae clinical<br />
isolates in France: a prospective nationwide study in 2011-<br />
12. J Antimicrob Chemother 2014; 69: 2706-12.<br />
2. Dortet L, Cuzon G, Nordmann P. Dissemination of<br />
carbapenemase-producing Enterobacteriaceae in France,<br />
2012. J Antimicrob Chemother 2014; 69: 623-7.<br />
3. Robert J, Pantel A, Merens A et al. Algorithm for phenotypic<br />
screening of carbapenemase-producing Enterobacteriaceae<br />
in the routine laboratory. J Antimicrob Chemother 2014; In<br />
submission<br />
4. Hrabak J, Chudackova E, Papagiannitsis CC. Detection of<br />
carbapenemases in Enterobacteriaceae: a challenge for<br />
diagnostic microbiological laboratories. Clin Microbiol Infect<br />
2014; 20: 839-53.<br />
5. Huang TD, Poirel L, Bogaerts P et al. Temocillin and<br />
piperacillin/tazobactam resistance by disc diffusion<br />
as antimicrobial surrogate markers for the detection<br />
of carbapenemase-producing Enterobacteriaceae in<br />
geographical areas with a high prevalence of OXA-48<br />
producers. J Antimicrob Chemother 2014; 69: 445-50.<br />
6. van Dijk K, Voets GM, Scharringa J et al. A disc diffusion assay<br />
for detection of class A, B and OXA-48 carbapenemases in<br />
Enterobacteriaceae using phenyl boronic acid, dipicolinic<br />
acid and temocillin. Clin Microbiol Infect 2014; 20: 345-9.<br />
Figure 1<br />
V2.0 <strong>JUILLET</strong> 2015<br />
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