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Dissertation 2012 Sophie Oesau Heft 193 1 - Institut für Tierzucht ...

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Aus dem <strong>Institut</strong> <strong>für</strong> <strong>Tierzucht</strong> und Tierhaltung<br />

der Agrar- und Ernährungswissenschaftlichen Fakultät<br />

der Christian-Albrechts-Universität zu Kiel<br />

ERFASSUNG UND BEWERTUNG VON LEISTUNGSMERKMALEN IM RAHMEN<br />

DER ZUCHTWERTSCHÄTZUNG BEIM STEINBUTT<br />

(SCOPHTHALMUS MAXIMUS)<br />

<strong>Dissertation</strong><br />

zur Erlangung des Doktorgrades<br />

der Agrar- und Ernährungswissenschaftlichen Fakultät<br />

der Christian-Albrechts-Universität zu Kiel<br />

vorgelegt von<br />

M.Sc.<br />

SOPHIE OESAU<br />

aus Bad Oldesloe<br />

Kiel, <strong>2012</strong><br />

Dekanin: Prof. Dr. K. Schwarz<br />

Erster Berichterstatter: Prof. Dr. G. Thaller<br />

Zweiter Berichterstatter: Prof. Dr. C. Schulz<br />

Tag der mündlichen Prüfung: 12. Juli <strong>2012</strong><br />

Die <strong>Dissertation</strong> entstand mit dankenswerter finanzieller Unterstützung des Ministeriums <strong>für</strong> Wissenschaft,<br />

Wirtschaft und Verkehr des Landes Schleswig-Holstein, dem Zukunftsprogramm Wirtschaft und der EU.


Schriftenreihe des <strong>Institut</strong>s <strong>für</strong> <strong>Tierzucht</strong> und Tierhaltung<br />

der Christian-Albrechts-Universität zu Kiel; <strong>Heft</strong> <strong>193</strong>, <strong>2012</strong><br />

© <strong>2012</strong> Selbstverlag des <strong>Institut</strong>s <strong>für</strong> <strong>Tierzucht</strong> und Tierhaltung<br />

der Christian-Albrechts-Universität zu Kiel<br />

Olshausenstraße 40, 24098 Kiel<br />

Schriftleitung: Prof. Dr. Dr. h.c. mult. E. Kalm<br />

ISSN: 0720-4272<br />

Gedruckt mit Genehmigung des Dekans der Agrar- und Ernährungswissenschaftlichen<br />

Fakultät der Christian-Albrechts-Universität zu Kiel


INHALTSANGABE<br />

ALLGEMEINE EINLEITUNG<br />

.....................................................................................................................................................1<br />

KAPITEL 1<br />

Application of PIT tags for individual identification of turbot (Scophthalmus maximus)<br />

.....................................................................................................................................................9<br />

KAPITEL 2<br />

Prediction of performance traits using simple body features in turbot<br />

(Scophthalmus maximus)<br />

...................................................................................................................................................24<br />

KAPITEL 3<br />

Phenotypic comparison of performance traits among two strains of turbot<br />

(Scophthalmus maximus) and consideration of sexual dimorphism<br />

...................................................................................................................................................49<br />

ALLGEMEINE DISKUSSION<br />

...................................................................................................................................................71<br />

AUSBLICK<br />

...................................................................................................................................................83<br />

ALLGEMEINE ZUSAMMENFASSUNG<br />

...................................................................................................................................................93<br />

GENERAL SUMMARY<br />

...................................................................................................................................................96<br />

DANKSAGUNG<br />

...................................................................................................................................................97<br />

LEBENSLAUF<br />

...................................................................................................................................................98


TABELLENVERZEICHNIS<br />

Tabelle 1.1<br />

Size range and mean values of the two turbot origins at the time of<br />

tag implantation.<br />

13<br />

Tabelle 2.1<br />

Tabelle 2.2<br />

Mean and standard deviation of body weight, fillet weight, fillet<br />

yield, area, thickness, length and width calculated for all fish, fish<br />

of different strains and different sex.<br />

Correlation coefficients between body weight, fillet weight, fillet<br />

yield, length, thickness and width.<br />

31<br />

30<br />

Tabelle 2.3<br />

Goodness of fit for the complete model used for body weight, fillet<br />

weight and fillet yield for all fish, for each population and for sex.<br />

34<br />

Tabelle 2.4<br />

Tabelle 2.5<br />

Tabelle 2.6<br />

Body measurement models: different combinations of body<br />

measurements used for regressions of body weight, fillet weight<br />

and fillet yield plus the corresponding R 2 , RMSEP, SEP, BIAS and<br />

r 2 .<br />

Cross-validation performance of body measurements for prediction<br />

of fillet weight trained on Norwegian fish and tested on Icelandic<br />

fish and trained on Icelandic fish and tested on Norwegian fish.<br />

Cross-validation performance of body measurements for prediction<br />

of fillet weight trained on 500 fish and tested on 3,764 fish.<br />

41<br />

42<br />

43<br />

Tabelle 3.1<br />

Body weight and area of Norwegian and Icelandic turbot at<br />

synchronized age and standard deviation.<br />

55<br />

Tabelle 3.2<br />

Mean initial and final body weights of fish divided into three<br />

growth groups (slow, medium and fast) and standard deviation.<br />

55<br />

Tabelle 3.3<br />

Weight and area of Norwegian and Icelandic turbot at comparable<br />

age at the end of the trial period and standard deviation.<br />

57<br />

Tabelle 3.4<br />

Fillet yield in relation to growth groups (slow, medium, fast) at the<br />

end of the trial period.<br />

60


ABBILDUNGSVERZEICHNIS<br />

Abbildung I Überblick der einzelnen Arbeitsschritte in einem<br />

Zuchtprogramm.<br />

4<br />

Abbildung II<br />

Abbildung 1.1<br />

Schematische Darstellung der Beziehung zwischen Wachstum<br />

und dem Alter bei Einsetzen der Geschlechtsreife.<br />

Implantation position of the PIT tag, approximately 1.5 cm<br />

abdominal of the occipital region.<br />

77<br />

14<br />

Abbildung 1.2 Radiograph of a turbot plus visceral illustration. 15<br />

Abbildung 1.3<br />

Abbildung 1.4<br />

Abbildung 1.5<br />

Abbildung 2.1<br />

Abbildung 2.2<br />

Abbildung 2.3<br />

Abbildung 2.4<br />

Abbildung 3.1<br />

Average weight of the both turbot origin after tag implantation at<br />

subsequent dates.<br />

Radiographs of three turbot with PIT tags, 15 days and 122 days<br />

after tag implantation.<br />

Encapsulated PIT tags following interperitoneal implantation in<br />

turbot: Tag encapsulated between liver and viscera, tag<br />

encapsulated on the liver, tag encapsulated on the abdominal<br />

cavity wall and tag encapsulated lateral to the liver on top of the<br />

intestine.<br />

Body measurements taken on each fish: area, thickness, length<br />

and width.<br />

Photographic registration of body measurements. Left figure:<br />

Schematic representation of the measuring equipment. Right<br />

figure: Schematic representation of the recorded measurements.<br />

Left graphic: Scatter plot for area (cm 2 ) and fillet weight and<br />

fillet yield. Right graphic: Scatter plot for the term area times<br />

thickness (cm 3 ) and fillet weight and fillet yield.<br />

Illustration of fillet yield distribution between the gender within<br />

the origins and between the origins.<br />

Turbot of the Norwegian and the Icelandic population grouped<br />

by daily weight gain into slowly, medium and fast growing fish.<br />

15<br />

17<br />

18<br />

29<br />

30<br />

37<br />

39<br />

53


Abbildung 3.2<br />

Abbildung 3.3<br />

Abbildung 3.4<br />

Abbildung 3.5<br />

Abbildung 3.6<br />

Abbildung 3.7<br />

Body weight of Norwegian and Icelandic turbot at comparable<br />

age and standard errors of the means.<br />

Body weight of slowly growing fish, medium growing fish and<br />

fast growing fish. Vertical lines indicate standard errors of the<br />

means.<br />

Body weight and area of female and male turbot of the Icelandic<br />

and the Norwegian strain.<br />

Frequencies of sex within growth groups of fish from Norway<br />

and from Iceland.<br />

Fillet yield in relation to growth groups at the end of the trial<br />

period.<br />

Fillet yield of female and male fish from Norway or Iceland at<br />

the end of the trial period.<br />

54<br />

56<br />

58<br />

59<br />

61<br />

61


ALLGEMEINE EINLEITUNG<br />

Die kommerzielle Steinbuttaufzucht begann in den 70iger Jahren in Schottland (FAO, 2005-<br />

2009). Seitdem hat sich der Steinbutt zu einer erfolgversprechenden Art mit bedeutendem<br />

ökonomischem Wert in der marinen Aquakultur entwickelt (Imsland et al., 1997; Cal et al.,<br />

2006). Dies verdeutlicht eine steigende europaweite Produktion von 53 Tonnen im Jahr 1985<br />

auf 11.000 Tonnen im Jahr 2010 und mit prognostizierten 16.500 Tonnen <strong>für</strong> <strong>2012</strong> (Bjørndal<br />

und Øiestad, 2011). Haupterzeuger von Steinbutt in marinen Haltungssystemen sind Portugal,<br />

Spanien, Frankreich, Norwegen, Island, Irland und Wales (FAO, 2005-2009; Bjørndal und<br />

Øiestad, 2011). (FAO, 2005-2009; Bjørndal und Øiestad, 2011).<br />

Die Effizienz der Produktion wird maßgeblich von der Wachstumsleistung der Steinbutte<br />

beeinflusst. Grundsätzlich ist ein schnelles und homogenes Wachstum bei optimaler<br />

Futterverwertung erwünscht sowie eine hohe Resistenz gegen Krankheiten und<br />

Umwelteinflüsse (Irwin et al., 1999). Allerdings variieren die kommerziell gehaltenen<br />

Steinbutte, aufgrund der kurzen Domestikationsgeschichte und des ausgeprägten<br />

Geschlechtsdimorphismus stark in ihrem Wachstum (Rosenberg und Haugen, 1982; Nijhof,<br />

1994; Imsland et al., 1997). Daraus resultiert das Interesse der Produzenten an der genetischen<br />

Verbesserung wichtiger Leistungs- und funktionaler Merkmale durch den Einsatz moderner<br />

Zuchtprogramme (Irwin et al., 1999).<br />

Gegenwärtig wird sich in der Aquakultur vermehrt mit der genetischen Verbesserung von<br />

Fischen befasst. In Europa existieren <strong>für</strong> den Atlantischen Lachs (Salmo salar), die<br />

Regenbogenforelle (Oncorhynchus mykiss), die Dorade (Sparus aurata) und den<br />

Europäischen Wolfsbarsch (Dicentrarchus labrax) groß angelegte Zuchtprogramme<br />

(Chavanne et al., 2008). Die genannten Fischarten sind stark am Markt vertreten und weisen<br />

ein hohes Produktionsvolumen von 60.000 bis mehr als 900.000 Tonnen jährlich auf (Blonk,<br />

2010). Zunehmend werden auch Arten mit kleinen Produktionsvolumina als potentielle<br />

1


Kandidaten <strong>für</strong> moderne Selektionsprogramme betrachtet. Besonders im Fokus stehen dabei<br />

„neue“ Arten in der Aquakultur sowie Arten, die einen exklusiven Nischenmarkt bedienen.<br />

Zu diesen zählt neben der Seezunge (Solea solea) und dem Zander (Sander lucioperca) auch<br />

der Steinbutt (Blonk, 2010).<br />

Planmäßig durchgeführte Selektions- bzw. Zuchtprogramme, die auf der Zuchtwertschätzung<br />

gründen, müssen <strong>für</strong> jede Art individuell entwickelt werden. Insbesondere basieren sie auf der<br />

tierindividuellen Erfassung phänotypisch relevanter Parameter (Leistungsprüfungen), der<br />

Kenntnis über den Verwandtschaftsstatus (Pedigree) eines Tieres und der Schätzung von<br />

genetischen Parametern (Heritabilitäten und Korrelationen von Merkmalen) (Rodríguez-<br />

Ramilo et al., 2007). Dabei sollen durch eine gezielte Nutzung genetischer Information die<br />

Tiere verbessert werden.<br />

Für die Umsetzung eines Zuchtprogramms bedarf es einiger grundlegender Schritte.<br />

Ausgangspunkt eines Zuchtprogramms ist immer das Zuchtziel. Dieses muss <strong>für</strong> jede Art und<br />

<strong>für</strong> jede Population definiert werden und sollte alle ökonomisch bedeutenden Merkmale<br />

berücksichtigen. Ungeachtet dessen ist das Wachstum das wichtigste Zuchtziel in der<br />

Aquakultur (Refstie, 1990; Gjedrem, 2000).<br />

Nach der Festlegung des Zuchtziels schließen die folgenden Arbeitsschritte an (Abbildung I):<br />

Als Erstes muss eine eindeutige Identifizierung des einzelnen Tieres realisiert werden. Dies<br />

gestaltet sich bei in der Aquakultur gehaltenen Fischen schwierig, da diese zumeist in großer<br />

Zahl zusammen gehalten werden. Zur Bestimmung des Verwandtschaftsstatus und <strong>für</strong> den<br />

Aufbau eines Pedigrees ist prinzipiell die Identifikation eines Fisches anhand von<br />

molekulargenetischen Markern möglich (Jones et al., 2010). Markersets <strong>für</strong> die<br />

Elternzuordnung müssen jedoch <strong>für</strong> jede Fischart entwickelt werden und sind aufgrund der<br />

Kosten (ca. 20,- Euro pro Fisch) und der Bearbeitungszeit nicht <strong>für</strong> eine wiederholte und<br />

direkte Identifikation von Einzeltieren geeignet (Herbinger et al., 1999; Castro et al., 2007).<br />

Um routinemäßig tierindividuelle Leistungsdaten zu erfassen, müssen alle Fische einzeln<br />

2


physisch markiert werden. Dabei sollte eine Beeinträchtigung der Gesundheit und des<br />

Leistungsvermögens der Tiere durch die Markierung vermieden werden.<br />

Im zweiten Schritt folgt die tierindividuelle Erfassung von Leistungsdaten in den relevanten<br />

Merkmalen. Aufgrund der großen Fischzahl und der Haltungsumwelt ist diese arbeits- und<br />

zeitintensiv sowie mit Stress <strong>für</strong> den Fisch verbunden, da jeder Fisch einzeln aus dem Becken<br />

genommen werden muss, um ihn zu wiegen und zu vermessen.<br />

Als dritter Schritt schließt sich die Zuchtwertschätzung an. Dabei wird die genetische<br />

Veranlagung der Tiere auf Basis der Leistungsprüfungsergebnisse geschätzt. Die Grundlage<br />

da<strong>für</strong> ist eine vorausgegangene Schätzung genetischer Heritabilitäten und Korrelationen <strong>für</strong><br />

die wichtigen Leistungsmerkmale. Da diese ebenfalls <strong>für</strong> jede Fischart ermittelt werden<br />

müssen, stehen sie bis jetzt nur <strong>für</strong> wenige Arten zur Verfügung, wie z. B. den Atlantischen<br />

Lachs, die Regenbogenforelle und den Nil-Tilapia (Refstie, 1990; Gjedrem, 2000; Rutten et<br />

al., 2005).<br />

Die Auswahl und gezielte Verpaarung der besten männlichen und weiblichen Tiere auf Basis<br />

der Zuchtwerte ist der vierte Schritt. Dabei ist die Zielsetzung den Zuchtfortschritt im<br />

gewünschten Merkmal zu maximieren und den Anstieg der Inzuchtrate zu minimieren<br />

(Gjedrem, 2005). Bisher erfolgt jedoch die Auswahl der Elterntiere bei in der Aquakultur<br />

genutzten Fischarten zumeist in Form von Massenselektionen anhand des Phänotyps<br />

(Herbinger et al., 1995). Dieses Vorgehen führt oft zu gesteigerter Inzucht, da die<br />

Verwandtschaftsverhältnisse nicht berücksichtigt werden.<br />

Der abschließende fünfte Schritt ist die Ermittlung des Zuchtfortschritts bzw.<br />

Selektionserfolgs. Dieser ergibt sich aus der Differenz des durchschnittlichen<br />

Leistungsniveaus zwischen Eltern- und Nachkommen-Generation. Eine Übertragung des<br />

Zuchtfortschritts in die Produktionsstufe kann durch den Verkauf von Eiern, Fischlarven und<br />

Elterntieren erfolgen (Gjedrem, 2005).<br />

3


Im Gegensatz zu diesem organisierten Zuchtgeschehen steht jedoch die Remontierung der<br />

Elterntiere durch Wildfänge. Diese findet beispielsweise beim Gelbflossen-Thunfisch, der<br />

Meerbrasse, dem Milchfisch und den meisten Schalentieren Anwendung (Gjedrem, 2000).<br />

Bei diesem Vorgehen kann kein Zuchtfortschritt generiert werden, da die gesamte Produktion<br />

aus Wildfängen oder Nachkommen von Wildfängen rekrutiert wird.<br />

Abbildung I: Überblick der einzelnen Arbeitsschritte in einem Zuchtprogramm.<br />

Das Ziel dieser Arbeit ist die Erfassung und Bewertung von tierindividuellen<br />

Leistungsmerkmalen als Voraussetzung <strong>für</strong> die Entwicklung einer Zuchtwertschätzung beim<br />

Steinbutt.<br />

4


In Kapitel 1 der vorliegenden Arbeit wird die Möglichkeit der individuellen Markierung von<br />

Steinbutten mittels passive integrated transponder (PIT) tags beschrieben. Es wurde ein<br />

Protokoll <strong>für</strong> die Implantation eines PIT-tags in die Bauchhöhle des Steinbutts erstellt, nach<br />

welchem 6.000 Steinbutte mit einem PIT-tag markiert wurden. Anschließend wurden die<br />

Auswirkungen dieses Eingriffs auf die Mortalitätsrate, das Wachstum und den<br />

Gesundheitsstatus der Fische untersucht.<br />

In Kapitel 2 wird beschrieben, wie im Rahmen der Erfassung von Leistungsparametern<br />

zwischen relevanten Schlachtkörperwerten und Körpermaßen Korrelationen und lineare<br />

Regressionen ermittelt wurden. Dies geschah auf Grundlage der indirekten Gewichtserfassung<br />

am lebenden Fisch. Da<strong>für</strong> wurden verschiedene Kombinationen von Körpermaßen<br />

hinsichtlich ihrer Eignung bewertet, das Lebend- und Filetgewicht sowie den Filetanteil beim<br />

Steinbutt zu schätzen. Die erforderlichen Maße wurden mittels automatischer<br />

Bildanalysetechniken erfasst. Anhand der Ergebnisse wurde das Potential der indirekten<br />

Gewichtserfassung als Alternative zur direkten Wiegung untersucht. Dies wäre nützlich, da<br />

die direkte Wiegung immer mit einem hohen Arbeitsaufwand und Stress <strong>für</strong> den Fisch<br />

verbunden ist sowie die Tötung zur Erfassung der Schlachtkörperwerte voraussetzt.<br />

In Kapitel 3 werden abschließend die Ergebnisse eines phänotypischen Vergleichs zwischen<br />

Steinbutten zweier Herkünfte hinsichtlich ihrer Wachstums- und Schlachtkörperleistung<br />

vorgestellt. In diesem Rahmen wurden außerdem die Auswirkungen des Sexualdimorphismus<br />

auf diese Merkmale sowohl innerhalb als auch zwischen den Populationen analysiert.<br />

5


Literatur<br />

Bjørndal, T., Øiestad, V., 2011. Turbot: Production Technology and Markets. GLOBEFISH<br />

Research Programme, 103. Rome, FAO 2011.<br />

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<strong>Dissertation</strong>. Wageningen University. ISBN 978-90-8585-712-9.<br />

Cal, R.M., Vidal, S., Gómez, C., Álvarez-Blázquez, B., Martínez, P., Piferrer, F., 2006.<br />

Growth and gonadal development in diploid and triploid turbot (Scophthalmus<br />

maximus). Aquaculture 251, 99–108.<br />

Castro, J., Pino, A., Hermida, M., Bouza, C., Chavarrías, D., Merino, P., Sánchez, L.,<br />

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seabream (Sparus aurata). Aquaculture. 272, 210-S216.<br />

Chavanne, H., Norris, A., Haffray, P., Sonesson, A.K., Vandeputte, M., Chatain, B., Boudry,<br />

P., 2008: Survey on the breeding practices in the European Aquaculture industry.<br />

Reprofish Aquabreeding Workshop 2008.<br />

FAO, 2005-2009. Cultured Aquatic Species Information Program. Text by Rodríguez<br />

Villanueva, J.L. & Fernández Souto, B.. In: FAO Fisheries and Aquaculture<br />

Department [online]. Rome. Updated 6 June 2005. [Cited 9 June 2009].<br />

http://www.fao.org/fishery/culturedspecies/Psetta_maxima/en.<br />

Gjedrem, T., 2000. Genetic improvement of cold-water fish species. Aquaculture Research.<br />

31, 25-32.<br />

Gjedrem, T. 2005. Selection and Breeding Programs in Aquaculture, Springer ISBN 978-1-<br />

4020-3341-4.<br />

6


Herbinger, C.M., Doyle, R.W., Pitman, E.R., Paquet, D., Mesa, K.A., Morris, D.B., Wright,<br />

J.M., Cook, D., 1995. DNA fingerprint based analysis of paternal and maternal effects<br />

on offspring growth and survival in communally reared rainbow trout. Aquaculture.<br />

137, 245-256.<br />

Herbinger, C.M., O´Reilly, P.T., Doyle, R.W., Wright, J.M., O´Flynn, F., 1999. Early growth<br />

performance of Atlantic salmon full-sib families reared in single family tanks versus in<br />

mixed family tanks. Aquaculture. 173, 105-116.<br />

Imsland, A.K., Folkvord, A., Grung, G.L., Stefannson, O., 1997. Sexual dimorphism in<br />

growth and maturation of turbot, Scophtahlmus maximus (Rafinesque, 1810).<br />

Aquaculture Research. 28, 101-114.<br />

Irwin, S., O'Halloran, J., FitzGerald, R.D., 1999. Stocking density, growth and growth<br />

variation in juvenile turbot, Scophthalmus maximus (Rafinesque). Aquaculture. 178,<br />

77–88.<br />

Jones, A., Samll, C.,Paczolt, K., Ratterman, N., 2010. A practical guide to methods of<br />

parentage analysis. Molecular Ecology Ressources. 10, 6-30.<br />

Nijhof, M., 1994. Research of nutrition and growth in the culture of post larval turbot<br />

(Scophthalmus maximus L.). In Turbot Culture: Problems and Prospects (ed. By P.<br />

Lavens & R.A.M. Remmerswaal). European Aquaculture Society. 22, 137-165.<br />

Refstie, T., 1990. Application of Breeding Schemes. Aquaculture. 85, 163-169.<br />

Rodríguez-Ramilo, S.T., Toro, M.Á., Martinez, P., Castro, J., Bouza, C., Fernández, J., 2007.<br />

Accuracy pairwise methods in the reconstruction of family relationships, using<br />

molecular information from turbot (Scophtalmus maximus). Aquaculture. 273, 434-<br />

442.<br />

7


Rosenberg, A.A., Haugen, A.S., 1882. Individual growth and size-selective mortality of larval<br />

turbot (Scophthalmus maximus) reared in enclosures. Marine Biology. 72, 73-77.<br />

Rutten, M.J.M., Bovenhius, H., Komen, H., 2005. Genetic parameters for fillet traits and body<br />

measuremnts in Nile tilapia (Oreochromis niloticus L.). Aquaculture. 246, 125-132.<br />

8


KAPITEL 1<br />

Application of PIT tags for individual identification of turbot<br />

(Scophthalmus maximus)<br />

<strong>Sophie</strong> <strong>Oesau</strong> a , Georg Thaller a , Carsten Schulz a,b , Jens Tetens a<br />

a<br />

<strong>Institut</strong>e of Animal Breeding and Husbandry, Christian-Albrechts-University, 24098 Kiel,<br />

Germany<br />

b<br />

GMA - Gesellschaft <strong>für</strong> Marine Aquakultur mbH, 25761 Büsum, Germany<br />

Submitted to: Archives Animal Breeding (accepted)<br />

9


Abstract<br />

Passive integrated transponder (PIT) tags can be used for individual identification of fish in<br />

selective breeding programs and for behavioral monitoring. In the present study, the effects of<br />

intraabdominal implantation of PIT tags on survival, health and growth performance of juvenile<br />

turbot (Scophthalmus maximus) were investigated. Furthermore, the tag retention rate and<br />

readout error rate of all tags were examined. PIT tags were implanted in the abdominal cavity of<br />

nearly 6,000 turbot. All were tags read out and checked for correct function over a period of 122<br />

days every five and a half weeks. No significant effects of tagging on fish survival (mortality rate<br />


1. Introduction<br />

In the early nineteen-seventies, first attempts to produce turbot (Scophthalmus maximus) in<br />

marine aquaculture systems were made in Scotland. In the mid-eighties, France and Spain began<br />

to produce noteworthy amounts of farmed turbot. Subsequently, the European production has<br />

steadily increased to more than 9,200 t in 2009 (Bjørndal and Øiestad, 2011) and considerable<br />

progress has been made in terms of stock management and keeping systems during these<br />

decades. However, only limited genetic gain has been achieved regarding important traits like<br />

growth performance and uniformity, feed efficiency or robustness. This can primarily be<br />

attributed to a lack of advanced breeding schemes including performance testing and breeding<br />

value estimation. Such programs are rarely applied in most aquaculture species compared to<br />

simple mass selection schemes (Herbinger et al., 1995). Disadvantages of mass selection are<br />

increased inbreeding levels and limited genetic gain, especially for traits with low heritability.<br />

Advanced breeding programs are based on individual selection and it is necessary to establish a<br />

reliable method for individual identification of animals in the breeding stock. Performance<br />

testing is crucial and offspring from different matings should be raised together as the<br />

environmental effects of different tanks are else confounded with genetic effects (Estoup et al.,<br />

1998; Herbinger et al., 1999; Borrell et al., 2004). This is however complicated by the fact that<br />

the larvae are initially too small to be physically marked. It is necessary to rear fullsib groups in<br />

separate tanks until the size of the fish allows individual marking (Doyle and Herbinger, 1994).<br />

Alternatively, genetic markers can nowadays be used for parental assignment.<br />

Pedigree information further allows the construction of relationship matrices for the estimation<br />

of genetic parameters and breeding values (Herbinger et al., 1999; Castro et al., 2007).<br />

In general, marks are classified according to their application. External marks include anchor and<br />

jawbone marks, cold brandings, pigment and colour codings, visible implant tags or fin clips.<br />

Low costs and simple attachment are in favor of these common methods in aquaculture (Moffet<br />

11


et al., 1997; Navarro et al., 2006). But a high risk of loss, inaccurate recognition, the possibility<br />

of secondary infections and a limited number of different labels are clear disadvantages (Das<br />

Mahapatra et al., 2001). Internal marking procedures require the implantation of passive<br />

integrated transponder (PIT) tags, which can be detected via an external reading device. The tags<br />

are usually appliqued intraperitoneally, intramuscularily or subcutaneously (Gheorghiu et al.,<br />

2010; Hopko et al., 2010). PIT tags have been used in different aquatic species, like prawns<br />

(Caceci et al., 1999), gilthead sea bream (Navarro et al., 2006), brown trout (Acolas et al., 2007),<br />

Nile tilapia (Baras et al., 1999), Eurasian perch (Baras et al., 2000) and Atlantic salmon (Gries<br />

and Letcher, 2002). Small tag size and the almost unlimited number of different labels are the<br />

main advantages of PIT tags (Hopko et al., 2010). Furthermore, many studies have reported that<br />

PIT tags have no or only very little influence on growth and on the survival rate of fish (Prentice<br />

et al., 1989; Quartararo and Bell, 1992; Baras et al., 1999; Baras et al., 2000; Gries and Letcher,<br />

2002). However, implantation of PIT is expensive, requires special equipment and species<br />

specific procedures regarding the method of application and it is possible that the implant<br />

migrates (Baras et al., 2000; Das Mahapatra et al., 2001; Gheorghiu et al., 2010; Hopko et al.,<br />

2010). Especially if fish are marked at a young age, the subcutaneous or intramuscular<br />

application may be problematic (Baras et al., 2000; Gries and Letcher, 2002).<br />

The aim of the current study was therefore to establish a protocol for application of PIT tags in<br />

turbot. Key parameters such as the rate of tag losses, the mortality of marked fish, and the<br />

behavior of the implants in terms of possible migration or encapsulation processes were analyzed<br />

to evaluate feasibility under practical conditions.<br />

12


2. Material and Methods<br />

2.1. Experimental conditions and animals<br />

The entire experiment comprised an initial number of 5,986 turbot obtained from a Norwegian (n<br />

= 3,423) and an Icelandic (n = 2,563) hatchery. The initial fish weight varied between 9.6 g and<br />

168.4 g (Table 1.1). The animals were kept under commercial conditions in a recirculating<br />

seawater system with 20 cylindrical basins and a total tank volume of 50 m 3 at the “Gesellschaft<br />

<strong>für</strong> Marine Aquakultur mbH (GMA) in Büsum”, Germany. During the experiment, water<br />

conditions were as follows: O 2 -content ≈ 8.2 mg/l, NH + 4 -content ≈ 0.3 mg/l, NO - 2 -content ≈ 2.5<br />

mg/l, salinity ≈ 29‰, temperature ≈ 18.5 °C. Fish were fed a commercial turbot feed, “Aller<br />

505” (Aller Aqua, Denmark) at a rate of 1% of the actual stock biomass per day.<br />

Table 1.1: Size range and mean values (MV) of the two turbot origins at the time of tag implantation.<br />

Min Max MV<br />

Iceland 9.6 119.0<br />

Norway 17.8 168.4<br />

Total 9.6 168.4<br />

47.7<br />

(14.1)<br />

82.0<br />

(21.1)<br />

67.28<br />

(25.1)<br />

2.2. Tagging procedure<br />

Glass encapsulated PIT tags (Hallprint, PTY Ltd., Hindmarsh Valley, Australia) with a length of<br />

7 mm and a diameter of 2 mm were used to mark the fish. The transponder codes were read out<br />

using a handheld reader (PetScan RT100 V5, Real Trace, Villebon-sur-Yvette, France)<br />

connected to a laptop computer. Transponders were implanted in all 5,986 turbot within a period<br />

of three weeks.<br />

The fish were starved two days before implantation in order to prevent problems caused by<br />

partially digested food in the digestive system (Gheorghiu et al., 2010). Prior to tag implantation,<br />

the turbot were anesthetized using tricaine methane sulfonate (MS222®, Sigma-Aldrich,<br />

13


Steinheim, Germany) in a concentration of 100 mg/1water. The tags were disinfected with<br />

alcohol and then implanted into the abdominal cavity via a 3 mm stitch incision approximately<br />

1.5 cm abdominal of the occipital region, i.e. where head and backbone meet (Fig. 1.1).<br />

Figure 1.1: Implantation position of the PIT tag, approximately 1.5 cm abdominal of the occipital region.<br />

The incision itself was not closed artificially nor treated in any other way. After implantation, the<br />

animals were kept in clear water and observed until they had completely recovered from<br />

anaesthesia and then were transferred to the basins. The fish were starved for the following two<br />

days to avoid possible tag losses which might occur via the incision due to extensive movements<br />

during feeding.<br />

2.3. Monitoring of the transponder status<br />

The tag position was determined by radiography in 24 randomly chosen living turbot at day 14<br />

post implantation (Fig. 1.2). Eighteen of these animals were still alive at day 122 post<br />

implantation and available for a second radiography. Furthermore, the tag position and<br />

encapsulation status was determined in 800 turbot during routine slaughtering.<br />

14


Figure 1.2: Radiograph of a turbot plus visceral illustration: (A) liver, (B) midgut and (C) rectum.<br />

Individual measurement of body weight started at the day the animals were tagged. The<br />

individual weight of each turbot was recorded over a period of 122 days every five and a half<br />

weeks (Fig. 1.3). During these routine controls the presence and function of transponders were<br />

checked by scanning the fish with a reader (Acolas et al., 2007; Cooke et al., 2011). The<br />

obtained alphanumeric codes were compared the initial set of codes at the time of implantation to<br />

detect possible reading errors.<br />

Figure 1.3: Average weight of the both turbot origins after tag implantation at subsequent dates ().<br />

Dates of the radiographs (▲).<br />

15


3. Results and Discussion<br />

Individual identification is a key prerequisite in performance testing schemes. This is because the<br />

estimation of genetic parameters and breeding values depends on the availability of pedigree and<br />

individual performance data of the offspring (Rodríguez-Ramilo et al., 2007). Therefore, a<br />

simple and reliable individual identification method is required that does not affect animal<br />

health, is easy to handle and provides a large number of different identifications. In many<br />

species, radio frequency identification (RFID) systems are an adequate alternative to meet these<br />

requirements (Baras et al., 2000; Das Mahapatra et al., 2001; Navarro et al., 2006; Hopko et al.,<br />

2010). In the present study, we applied PIT tags to almost 6,000 turbots. All animals survived the<br />

intraabdominal application process and recovered well from anaesthesia. The mortality within<br />

the following four weeks was 0.2%. This has to be considered as very low, even in fish that have<br />

not undergone the procedure. Furthermore, no signs of secondary infections or intraperitoneal<br />

inflammation like enlarged abdomen were observed.<br />

The radiographic control of the tag position in 24 fishes on days 14 and 122 post implantation<br />

revealed no substantial variation in tag localization. No changes of the localization were detected<br />

radiographically between days 14 and 122 and it can be assumed that the tag takes a constant<br />

position in the abdominal cavity within the first two weeks (Fig. 1.4). During the final section it<br />

was observed that all transponders were enclosed in a fibrinoid capsule and thus attached to an<br />

intraperitoneal surface. Fibrinoid encapsulation of tags has also been reported in other studies<br />

(Baras and Westerloppe, 1999; Baras et al., 2000; Gheorghiu et al., 2010). However, the time<br />

required for a complete encapsulation is unknown. Regarding the invariant position between the<br />

two radiographic controls (Fig. 1.4), it can be assumed that the transponders become fixed not<br />

later than day 14.<br />

16


Figure 1.4: Radiographs of three turbot with PIT tags. (A), (B), and (C) are the first radiographs 15 days after<br />

tag implantation. (A´), (B´) and (C´) are the second radiographs 122 days after tag implantation of the same turbot.<br />

The intraabdominal position of the transponder and the encapsulation status were determined in a<br />

total of 800 animals. Four different localizations can be distinguished during the final<br />

slaughtering process. The most frequent position found in 672 fish (84.0%) was between the<br />

liver and the intestine close to the spleen (Fig. 1.5A). Eighty-one transponders (10.1%) were<br />

attached to the abdominal cavity wall (Fig. 1.5B), in 39 observations (4.9%) the tag was found<br />

on the surface of the liver (Fig. 1.5C), and only eight transponders (1.0%) were positioned lateral<br />

to the liver on top of the intestine (Fig. 1.5D).<br />

No transponder was found outside the abdominal cavity. Regarding the mode of application, the<br />

most frequently observed position is also the most plausible one. Those 16.0% of cases with a<br />

different position might result from secondary tag migration, probably due to intestinal peristaltic<br />

activity. It can be hypothesized that the tag position is more variable in larger fishes. We did not<br />

observe a significant weight difference between groups of animals with different transponder<br />

positions.<br />

17


Figure 1.5: Encapsulated PIT tags following interperitoneal implantation in turbot: (A) Tag encapsulated between liver and<br />

viscera, (B) tag encapsulated on the liver, (C) tag encapsulated on the abdominal cavity wall and (D) tag<br />

encapsulated lateral to the liver on top of the intestine.<br />

It could be argued that the intraabdominal tag application might affect the well-being and<br />

performance of the fish. The assessment of an animal’s well-being is, however, difficult and<br />

afflicted by a large subjective error, especially in aquatic species. On the other hand performance<br />

parameters on the other hand can be objectively used as indicator traits (Cooke et al., 2011).<br />

Within the current study, the animals were starved for two days following the tagging procedure.<br />

The desired feed intake of 1% of the stock biomass per day was then re-accomplished<br />

immediately. The fish grew with 1.2% per day on average during the time following tag<br />

implantation (Fig. 1.3). Considering the feeding regime, this growth performance has to be<br />

regarded as normal in turbot (Schram et al., 2009). Additionally, the fish were obviously vital, no<br />

signs of diseases were observed and neither ulcers and bleedings nor other signs of<br />

intraabdominal inflammation were found within the abdominal cavity during evisceration. These<br />

findings are in concordance with several previous studies (Baras et al., 2000; Das Mahapatra et<br />

al., 2001; Acolas et al., 2007). Based on these results it can be concluded that the intraabdominal<br />

implantation of PIT tags has no negative effects on animal health and performance in turbot.<br />

18


During the regular readout of all transponders no tag losses or failures occurred and no readout<br />

errors were observed. Similar results with tag retention rates of 100% have previously been<br />

reported (Baras et al., 2000; Navarro et al., 2006; Hopko et al., 2010). Additionally, the readout<br />

procedure in flatfish turned out to be uncomplicated because the area of the abdominal cavity is<br />

very small as compared to torpedo-shaped fish where it almost extends along the entire body.<br />

The mobility of the transponder is thus strongly restricted, this in turn might enhance the<br />

effective encapsulation. Furthermore, the borders of the abdominal cavity in flatfish are to a<br />

larger extent defined by bony structures than in torpedo-shaped fish. This reduces the probability<br />

of tag losses and has also a positive aspect for marketing because the migration of tags into the<br />

edible muscle tissue might be a problem when tagging fish that are intended for human<br />

consumption (Gheorghiu et al., 2010).<br />

4. Conclusion<br />

The present study is, to our knowledge, the first one investigating intraabdominal implantation of<br />

PIT tags in turbot. It was demonstrated that method is feasible without affecting survival, health<br />

and growth performance. However, high costs for PIT tags (≈ 2.5$ per tag) have to be<br />

considered. PIT tags represent an effective tool for individual identification of fish as well as for<br />

animals in selective breeding programs. In view of the results, intraabdominal implantation of<br />

PIT tag is a safe and effecient marking method in turbot.<br />

19


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21


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Accuracy pairwise methods in the reconstruction of family relationships, using<br />

molecular information from turbot (Scophtalmus maximus). Aquaculture. 273, 434-<br />

442.<br />

22


Schram, E., Verdegem, M.C.J., Widjaja, R.T.O.B.H., Kloet, C.J., Foss, A., Schelvis-Smit, R.,<br />

Roth, B., Imsland, A.K., 2009. Impact of increased flow rate on specific growth rate of<br />

juvenile turbot (Scophthalmus maximus, Rafinesque 1810). Aquaculture. 292, 46-52.<br />

23


KAPITEL 2<br />

Prediction of performance traits using simple body features in turbot<br />

(Scophthalmus maximus)<br />

<strong>Sophie</strong> <strong>Oesau</strong> a , Georg Thaller a , Carsten Schulz a,b , Jens Tetens a<br />

a<br />

<strong>Institut</strong>e of Animal Breeding and Husbandry, Christian-Albrechts-University, 24098 Kiel, Germany<br />

b<br />

GMA - Gesellschaft <strong>für</strong> Marine Aquakultur mbH, 25761 Büsum, Germany<br />

24


Abstract<br />

The aim of the current study was to predict body weight, fillet weight and fillet yield from<br />

body shape measurements of living turbot (Scophthalmus maximus). Fish length, width,<br />

thickness and body area were determined via picture analysis on 4,264 turbot obtained from<br />

two origins (Norway n = 2,782; Iceland n = 1,482). Fillet weight and fillet yield were<br />

recorded from slaughtered fish. The correlations between carcass traits and body shape were<br />

estimated. Additionally, different combinations of body shape measurements were evaluated<br />

for their ability to predict body weight, fillet weight and fillet yield via regression analysis.<br />

High correlations between body measurements and body and fillet weight were found, but no<br />

relationship between body measurements and fillet yield.<br />

A very precise prediction of body and fillet weight with body features was achieved. R 2 of the<br />

regression models for body and fillet weight was approximately 0.98. The correlations<br />

between observed and predicted values for body and fillet weight were 0.99 and 0.98,<br />

respectively. In regression models, fish area explained most of the observed variance in body<br />

weight (97%) and fillet weight (93%). The regression model for fillet yield including the fixed<br />

effects of strain, sex and filleting person explained only 27% of the variance. Prediction of<br />

fillet yield within strains improved R 2 in the Norwegian (R 2 = 0.52) and degraded R 2 in the<br />

Icelandic (R 2 = 0.16) origin due to large variations between Icelandic sexes (males R 2 = 0.13;<br />

females R 2 = 0.52).<br />

The findings of the current study demonstrate that body measurements allow an accurate<br />

prediction of body and fillet weight in living turbot.<br />

25


1. Introduction<br />

In the early 1970s production of turbot (Scophthalmus maximus) started in marine aquaculture<br />

systems in Scotland. Since then, aquaculture production of turbot has been growing steadily<br />

from 53 tons in 1985 to about 11,000 tons in 2010. For <strong>2012</strong>, a European production of<br />

16,500 tons of turbot is expected (Bjørndal and Øiestad, 2011).<br />

In order to increase the economic benefits, a continuous improvement of turbot production is<br />

necessary. Apart from culture technology and feeding management, the development of<br />

breeding programs is a main issue. Efficient breeding programs are required for the genetic<br />

improvement of relevant performance and functional traits, such as fast and uniform growth,<br />

optimal feed usage, disease resistance and stress tolerance (Nijhof, 1994; Irwin et al., 1999,<br />

Gjedrem, 2000). Like in many other fish species, fast growth is the main breeding goal in<br />

turbot (Gjedrem, 2000; Danancher and Garcia-Vazquez, 2007; Chavanne et al., 2008),<br />

because body weight at harvest defines the economic value of the fish. Additionally, growth<br />

rate determines the optimal time for sorting and slaughtering during production.<br />

However, consumer preferences are changing. Consumers more and more ask for convenient<br />

and processed seafood (Bosworth et al., 1998; Olsen, 2003). Therefore, the traits fillet weight<br />

and fillet yield are becoming more important and the establishment of fillet traits as breeding<br />

goals is now evaluated in several fish species worldwide (Bosworth et al., 1998; Bosworth et<br />

al., 2001; Neira et al., 2004; Rutten et al., 2004; Sang et al., 2009).<br />

Turbot breeding programs are mainly based on individual or combined selection (Chavanne et<br />

al., 2008). The ability to capture accurate and individual phenotypic traits on living fish is an<br />

essential requirement for such breeding programs (Gjedrem, 2000). Direct weighing is the<br />

most precise method to determine individual fish weight, which is, however, labor-intensive<br />

and a stress factor for the fish. A large number of animals has to be slaughtered and filleted to<br />

capture fillet trait information. This also is a labor-, time- and cost-intensive approach (Rutten<br />

et al., 2004, Sang et al., 2009). Furthermore, the circumstance that fillet traits cannot be<br />

26


ecorded on living fish is a serious handicap, because analyzed fish are no longer available for<br />

breeding (Sang et al., 2009).<br />

The development of non-invasive methods for the determination of these traits can improve<br />

selection efficiency and allows for a higher breeding progress (Bosworth et al., 2001; Sang et<br />

al., 2009). Body shape has been used to predict fillet weight and yield in several fish species,<br />

such as bass (Bosworth et al.,1998), common carp (Cibert et al., 1999), catfish (Bosworth et<br />

al., 2001; Sang et al., 2009) and tilapia (Rutten et al., 2004). For the turbot industry,<br />

prediction of body weight, fillet weight and fillet yield by non-invasive methods (e.g. direct in<br />

tank) in the production process could ease the management and the establishment of a correct<br />

price.<br />

The main objective of this study was the prediction of body weight, fillet weight and fillet<br />

yield from body shape of living fish by using picture analysis. Different combinations of the<br />

body measures length, width, area and thickness were evaluated for their ability to estimate<br />

these traits. Additionally, quality of several prediction models was evaluated by crossvalidation.<br />

2. Materials and Methods<br />

2.1. Experimental conditions and animals<br />

The experiment comprised a total number of 5,986 turbot obtained from a Norwegian (n =<br />

3,423) and an Icelandic (n = 2,563) hatchery. The initial individual fish weight varied<br />

between 9.6 g and 168.4 g (Table 1.1). Animals were kept under commercial conditions in a<br />

recirculating seawater system with 20 cylindrical basins and a total tank volume of 50 m 3 at<br />

the “Gesellschaft <strong>für</strong> Marine Aquakultur mbH (GMA) in Büsum”, Germany. During the<br />

entire experiment, water conditions were as follows: O 2 -content ≈ 8.2 mg/l, NH + 4 -content ≈<br />

0.3 mg/l, NO - 2 -content ≈ 2.5 mg/l, salinity ≈ 29‰, temperature ≈ 18.5 °C. Fish were fed a<br />

27


commercial turbot feed, “Aller 505” (Aller Aqua, Denmark) at a rate of 1% of the actual stock<br />

biomass per day.<br />

Initially, the two origins were held separately. In March 2010 passive integrated transponder<br />

(PIT) tags (Hallprint, PTY Ltd., Hindmarsh Valley, Australia) were administered<br />

intraabdominally to ensure individual identification of each fish (Olsen, 2003). Subsequently,<br />

animals of both origins were admixed randomly and stocked into different basins according to<br />

size. Data recording took place from March 2010 until April 2011. All animals were recorded<br />

ten times every five and a half weeks during this period. Each fish was weighed and body<br />

measures were captured by laser assisted photography.<br />

From then on animals were kept to be removed from the experiment to comply with a<br />

maximum stocking density of 30 kg/m 2 . An appropriate number of turbot was chosen<br />

randomly for this purpose. Furthermore, an upper weight of 1.5 kg was set and animals<br />

exceeding this value were also removed.<br />

Fish were killed by CO 2 fumigation and bleeding and subsequently weighed and<br />

photographed. Subsequently, each fish was manually dissected and filleted. The skinless fillet,<br />

the head, the liver, the viscera and the rest (skeleton, skin and fin) were weighed (to the<br />

nearest 0.1 g). Fillet yield was calculated as: F % = (FW/BW) . 100. Additionally, sex was<br />

determined by visual inspection of the gonads. All body and slaughter weight recordings,<br />

photographs and sex as well as information about origin were stored individually with the<br />

corresponding PIT tag identification code. Also, the name of the filleting person was recorded<br />

to account for possible effects due to differences in filleting skills and technique.<br />

2.2 Capture of body shape traits by picture analysis<br />

Body shape measurements length, width, thickness and area without fin seams (Fig. 2.1) were<br />

determined via picture analysis using a semi-automated software, which was developed to this<br />

purpose in Phyton 2.7.<br />

28


Figure 2.1: Body measurements taken on each fish: area (A), thickness (T), length (L) and width (W).<br />

Standardized pictures were taken of the eye-side of each fish. A laser line-grid was projected<br />

on to the fish in order to measure thickness. Calibration was done by firstly imaging a<br />

reference object. The arrangement of the measuring devices is explained in Figure 2.2.<br />

Finally, the fish PIT tag was read and the fish weight and photo were automatically stored in<br />

the data base in correspondence to the PIT tag code.<br />

The shape of the fish without fin seams was traced from each picture by normally defining<br />

points loaded on the perimeter. A polygon was fitted to these points, from which area and<br />

width were automatically derived. For length calculation a line was manually drawn between<br />

fish mouth and tail (Fig. 2.2), representing the length without fin seam.<br />

A laser light cut procedure was used to calculate the thickness. Similar to the laser<br />

triangulation principle (Fig. 2.2), a camera registered the shift of the laser line, which will<br />

project in the triangular of angle of entry (α) on the object surface. This shift of the laser line<br />

multiplied with the tangent of the angle of entry (α) resulted in the fish thickness.<br />

After this procedure, the recorded data were stored in the data base and a new photo was<br />

loaded automatically. All areas and distances were recorded in pixel and converted to cm and<br />

cm 2 based on calibration images. Distances and areas were measured to the nearest 0.1mm<br />

(with an average of 16 pixel/cm).<br />

29


Figure 2.2: Photographic registration of body measurements. Left figure: Schematic representation of the<br />

measuring equipment. Right figure: Schematic representation of the recorded measurements.<br />

2.3 Data analysis<br />

A data set of 4,264 turbot was used for statistical analysis. Means and standard deviations for<br />

body weight, fillet weight, fillet yield, area, thickness, length and width were calculated for<br />

the entire dataset as well as within strain and gender (Table 2.1). Correlations of carcass trait<br />

residuals with body shape traits are shown in Table 2.2.<br />

Table 2.2: Correlation coefficients between body weight (BW), fillet weight (FW), fillet yield (F %), area (A), thickness<br />

(T), length (L) and width (W).<br />

FW * F % * A T L W<br />

BW 0.98 - 0.03 0.98 0.82 0.96 0.96<br />

FW * 0.08 0.96 0.80 0.94 0.94<br />

F % * - 0.03 - 0.07 - 0.03 - 0.04<br />

A 0.83 0.98 0.99<br />

T 0.82 0.82<br />

L 0.97<br />

* FW and F % were adjusted for the effect of filleting person.<br />

30


Table 2.1: Mean and standard deviation (in parentheses) of body weight, fillet weight, fillet yield, area, thickness, length and width calculated for all fish, fish of different strains and different<br />

sex.<br />

Body traits<br />

Both Populations Norway Iceland<br />

All (n = 4264) ♂ (n = 3012) ♀ (n = 1252) All (n = 2782) ♂ (n = 2024) ♀ (n = 758) All (n =1482) ♂ (n = 988) ♀ (n = 494)<br />

Body weight 674.5<br />

(318.8)<br />

650.4<br />

(281.7)<br />

741.3<br />

(385.0)<br />

752.9<br />

(329.4)<br />

712.1<br />

(284.3)<br />

874.5<br />

(400.2)<br />

526.9<br />

(235.6)<br />

524.5<br />

(228.9)<br />

537.0<br />

(247.4)<br />

31<br />

Fillet weight 213.6<br />

(108.1)<br />

Fillet yield 31.4<br />

(4.1)<br />

206.9<br />

(96.4)<br />

31.6<br />

(4.6)<br />

232.9<br />

(129.7)<br />

31.0<br />

(2.5)<br />

241.5<br />

(113.1)<br />

31.7<br />

(2.5)<br />

229.3<br />

(99.0)<br />

31.9<br />

(2.52)<br />

278.3<br />

(136.8)<br />

31.4<br />

(2.45)<br />

161.2<br />

(73.5)<br />

30.8<br />

(6.1)<br />

161.1<br />

(71.7)<br />

30.9<br />

(6.0)<br />

163.0<br />

(76.6)<br />

30.4<br />

(2.6)<br />

Area 321.0<br />

(91.0)<br />

314.1<br />

(80.9)<br />

340.5<br />

(108.1)<br />

344.1<br />

(90.3)<br />

332.2<br />

(78.54)<br />

379.7<br />

(107.0)<br />

277.6<br />

(74.7)<br />

277.2<br />

(72.5)<br />

280.4<br />

(78.2)<br />

Thickness 2.8<br />

(0.5)<br />

2.7<br />

(0.5)<br />

2.8<br />

(0.6)<br />

2.9<br />

(0.5)<br />

2.9<br />

(0.51)<br />

3.0<br />

(6.0)<br />

2.5<br />

(0.4)<br />

2.5<br />

(0.4)<br />

2.6<br />

(0.5)<br />

Length 24.1<br />

(3.3)<br />

23.9<br />

(3.0)<br />

24.8<br />

(3.8)<br />

25.0<br />

(3.2)<br />

24.6<br />

(2.7)<br />

26.6<br />

(3.6)<br />

22.4<br />

(2.8)<br />

22.4<br />

(2.8)<br />

22.6<br />

(2.93)<br />

Width 19.1<br />

(2.9)<br />

18.9<br />

(2.6)<br />

19.6<br />

(3.4)<br />

19.9<br />

(2.8)<br />

19.5<br />

(2.5)<br />

20.8<br />

(3.3)<br />

17.7<br />

(2.5)<br />

17.8<br />

(2.5)<br />

17.7<br />

(2.6)


Differences in body measurements were analyzed by using the following ANOVA model:<br />

ijk= = µ + Oi O + Gj G<br />

+ β*BWk + εijk<br />

yijk<br />

ijk ,<br />

where y ijk represents the respective observation of area, thickness, length and width and µ is<br />

the overall mean. O i and G j are the fixed effects of origin and sex, β is the regression<br />

coefficient, BW k is the co-variable body weight, and ε ijk is the random residual error.<br />

Linear regressions were used to select the best (highest R 2 ) variable combination in a model<br />

for prediction of body weight, fillet weight and fillet yield. Because of different perspectives,<br />

two kinds of models were used. The first model should be as precise as possible and contains<br />

beside the independent effects body weight and body measurements the filleting person, the<br />

origin and the sex as effects (Table 2.3).<br />

The model equation is:<br />

ijklmno = µ + Pi P + Oj O<br />

+ Gk G<br />

+ β1*BWl + β2*Am + β3*Tn + β4*Ao*Fo + εijklmno<br />

yijklmno<br />

ijklmno ,<br />

where y ijklmno represents the respective observation value of body weight, fillet weight or fillet<br />

yield, µ is the overall mean, P i is the fixed effect of person, O j is the fixed effect of origin, G k<br />

is the fixed effect of sex, β are the regression coefficients, BW l is the co-variable body<br />

weight, A m is the co-variable area, T n is the co-variable thickness, A o* T o is the co-variable<br />

interaction between area and thickness, and ε ijklmno is the random residual error.<br />

In order to consider applications under practical conditions the second model used only body<br />

measurements (length, width, area, thickness and body weight) (Table 2.4).<br />

To assess the estimation quality, the R 2 was used and quality of prediction was evaluated by<br />

the root mean square error of prediction (RMSEP), the standard error of prediction (SEP), the<br />

bias and the correlation coefficient between predicted (ŷ i ) and observed (y i ) values (r),<br />

32


according to Sang et al. (2009). BIAS, SEP and RMSEP were calculated as follows:<br />

<br />

= − ŷ /,<br />

<br />

<br />

= − ŷ − / − 1,<br />

<br />

<br />

= − ŷ /<br />

<br />

Analyses were done by linear regression with ANOVA (type III) as implemented in the<br />

statistic package R Version 2.10.1 (R Development Core Team, 2009) together with the R<br />

package car (Fox and Weisberg, 2011).<br />

2.5 Model validation<br />

To validate the predictive performance of the regression models for estimation of body weight<br />

and fillet weight, cross-validations were carried out. This is a robust, non parametric<br />

technique for model selection. The method consists of splitting the data y into a training data<br />

set (y 1 ) and a validation data set (y 2 ). Model parameters are estimated in the training data set.<br />

Parameter estimates from the training data set are then used to predict observations in the<br />

validation data set. We have split the data in two ways for the cross-validation: across and<br />

within populations. For the first data set the database was divided according to origin. Both<br />

Norwegian and Icelandic fish were used as training and as test data set reversely (Table 2.5).<br />

Secondly, a random sample of 500 fish was used as training set and the remaining 3,764 fish<br />

as validation set (Table 2.6). To indicate the quality of prediction models, correlations<br />

between measurements and estimated values were calculated. Fillet yield was omitted to<br />

cross-validation based on the extremely low correlations between fillet yield and body<br />

measurements (Table 2.2).<br />

33


3. Results<br />

Means and standard deviations of slaughter weights and body measurements are presented in<br />

Table 2.1. Correlation coefficients between body weight, fillet weight, fillet yield, length,<br />

thickness and width are shown in Table 2.2. High positive correlations (>0.80) between body<br />

features and body weight and fillet weight were observed. In contrast, the correlations<br />

between body features and fillet yield were close to zero with values ranging from -0.03 to -<br />

0.07.<br />

Preliminary analysis showed significant effects of origin and body weight on all body<br />

measurement. The effect of sex was only significant for the traits length and width.<br />

The complete model explained 98% of the variance in body weight, 98% of the variance in<br />

fillet weight and 27% (♀ = 51%, ♂ = 22%) of the variance in fillet yield across the entire<br />

dataset (Table 2.3).<br />

Table 2.3: Goodness of fit (R 2 ) for the complete model used for body weight (BW), fillet weight (FW) and fillet<br />

yield (F %) for all fish, for each population and for sex.<br />

R 2<br />

All Norway Iceland<br />

(n = 4264) (n = 2782) (n = 1482)<br />

♀ ♂ ♀ ♂ ♀ ♂<br />

(n = 1252) (n = 3012) (n = 758) (n = 2024) (n = 494) (n = 988)<br />

BW<br />

FW<br />

F (%)<br />

0.98 0.97 0.97<br />

0.98 0.98 0.98 0.98 0.98 0.98<br />

0.98 0.98 0.97<br />

0.99 0.98 0.99 0.98 0.98 0.97<br />

0.27 0.52 0.16<br />

0.51 0.23 0.50 0.54 0.52 0.13<br />

Within each population and gender the complete model explained 97% up to 99% of variance<br />

in body and fillet weight. A substantial proportion of variance in fillet yield could be<br />

explained in the Norwegian (R 2 = 0.52) population than in the Icelandic (R 2 = 0.16).<br />

34


Additionally, the explained variance was lower for Icelandic males (R 2 = 0.13) than for<br />

Icelandic females (R 2 = 0.52).<br />

In Table 2.4 the results of the body shape models are shown. Among body measurements,<br />

area had the largest effect in terms of increasing R 2 . Area explained approximately 97% and<br />

93% of the observed variance in body and fillet weight. The best model for body weight, with<br />

the highest R 2 and the lowest RMSEP, included the variables area, thickness, length and width<br />

and that of fillet weight, the variables body weight, area, thickness, length and width. For<br />

body weight, the correlation between predicted and observed values was 0.99 in the<br />

correspondence with R 2 value of 0.98, RMSEP and SEP were both 49.72 g. The prediction<br />

bias was not significantly different from zero with -0.33 g. For fillet weight, the correlation<br />

between predicted and observed values was also 0.99 (R 2 = 0.97), RMSEP and SEP were<br />

18.46 g and the prediction bias was 0.04 g, thus not significantly different from zero. In<br />

contrast, the best prediction model for fillet yield (variables: body weight, area, thickness,<br />

length and width) showed a correlation between predicted and observed values 0.99 (R 2 =<br />

0.04), RMSEP and SEP of 3.59% and a prediction bias of -0.002%.<br />

Cross-validations of prediction equations for fillet weight showed that correlations between<br />

observed and predicted values ranged among 0.77 and 0.97 (Table 2.5 and 2.6). The best<br />

predictive power between predicted and observed values was found for area, area and<br />

thickness and all body measurements together. Results of cross-validation for body weight<br />

(data not shown) were very similar.<br />

4. Discussion<br />

The objective of the current study was the prediction of body weight and fillet traits based on<br />

the body shape in living fish. Previously, Arfsten et al. (2010) estimated the body weight of<br />

turbot based on body measurements. However, the current study is, to our knowledge, the first<br />

one aiming at the prediction of fillet traits by using simple body features in turbot. Similar<br />

35


studies were implemented in different species, such as catfish (Bosworth et al., 2001; Sang et<br />

al., 2009), Nile tilapia (Rutten et al., 2004) and sole (Blonk et al., 2010). In this study we used<br />

photographs to quantify the required body traits for prediction.<br />

4.1 Body and fillet weight<br />

Predictions of body and fillet weight with body features had a high accuracy (R 2 = 0.96-0.98)<br />

(Table 2.3 and 2.4). That was expected because of high correlations between body weight and<br />

body measurements and between fillet weight and body measurements (Table 2.2). Previous<br />

studies reported of high relationships between body weight and fillet weight (Bosworth et al.,<br />

1998; Cibert et al., 1999; Yasemi et al., 2011; Rutten et al., 2004). Additionally, these authors<br />

support our finding that high relationships exist between body measurements and fillet<br />

weight. Our best body shape model included the variables body weight, area, thickness, length<br />

and width (Table 2.4) and gained the highest estimation accuracy for fillet weight besides the<br />

complete model (Table 2.3). These models explained 97% up to 98% of variance in body and<br />

fillet weight across and within the populations and sex. Compared with other studies our<br />

models could explain the largest part of variance in fillet weight. Rutten et al. (2004)<br />

explained 95% of the variance in fillet weight in tilapia, Sang et al. (2009) 86% in catfish and<br />

Bosworth et al. (1998) merely 52% in bass. Moreover, the best two-variable model (Table<br />

2.4) based on the product of area times thickness had high prediction quality for body (R 2 =<br />

0.98, RMSEP = 48.01 g) and fillet weight (R 2 = 0.94, RMSEP = 26.68 g) (Fig. 2.3). That is<br />

not unexpected, because the term represents the volume of a cuboid and indirectly reflects the<br />

volume of the fish. Likewise, Sang et al. (2009) also used the fish volume for prediction of<br />

fillet weight. However, they could explain only 84% of the variance. Further, we were able to<br />

show that most of the variance in body (R 2 = 0.97) and fillet weight (R 2 = 0.93) is already<br />

explained by the area (Fig. 2.3).<br />

36


Figure 2.3: Left graphic: Scatter plot for area (cm 2 ) and fillet weight (FW) and fillet yield (F %).<br />

Right graphic: Scatter plot for the term area times thickness (cm 3 ) and fillet weight (FW) and fillet yield (F %).<br />

A larger or equal proportion of explained variance in fillet weight in relation to the best<br />

models to the abovementioned authors was realized by using the area alone (Bosworth et al.,<br />

1998; Rutten et al., 2004; Sang et al., 2009).<br />

Additionally, results of the cross-validation (Table 2.5 and 2.6) show that particularly area<br />

was a strong predictor for fillet weight. Addition of further body measurements (length, width<br />

and thickness) in regression equations did not substantially improve the correlation between<br />

observed and predicted values.<br />

Bosworth et al. (2001) recommended that prediction of body traits has to be fast, efficient and<br />

practicable on a large number of animals for establishment in breeding programs. In turbot,<br />

area could accomplish these requirements in future. Area of flatfish can easily be recorded<br />

without the need to handle the fish applying automated picture analysis together with<br />

appropriate technical equipment. Furthermore, the area seems to allow an accurate prediction<br />

of body and fillet weight under practiced conditions.<br />

Thus, it can be concluded that the important performance traits body and fillet weight can be<br />

accurately estimated even in living fish from simple body features, especially from area.<br />

37


4.2 Fillet yield<br />

In the current study the average fillet yield amounted to 31.4%. This is, in a low to middle<br />

range compared to other studies in turbot. Regost et al. (2003) calculated a fillet yield of 26%,<br />

Ruff et al. (2002) of 36%, Ruff et al. (2003) of 38% and Suquet et al. (2002) approximately of<br />

40 %, respectively. In other species higher fillet yields were reported, such as 42-49% in<br />

Indian spiny halibut (Yasemi et al., 2011), 55.4% up to 61.3% in Atlantic halibut (Roth et al.,<br />

2007), 35.7% in Nile tilapia (Rutten et al., 2004) and 35.6% in river catfish (Sang et al.,<br />

2009).<br />

Preceding studies reported low correlations between body weight and fillet yield (Bosworth et<br />

al., 1998; Cibert et al., 1999; Rutten et al.; 2004, Yasemi et al., 2011). Our results confirm<br />

these findings. Significant correlations between body weight and fillet yield or between body<br />

measurements and fillet yield did not exist. Therefore, it was obvious that the body shape<br />

model (Table 2.4) did not allow an accurate prediction of fillet yield. The best model included<br />

five variables: body weight, area, thickness, length and width. It explained only 4% of fillet<br />

yield variance. Bauer and Schlott (2009) came to an equal assumption and concluded that<br />

fillet yield is independent of body size. Rutten et al. (2004) previously illustrated the<br />

relationship between body measurements (length) and fillet yield in tilapia. We have also<br />

shown the weak relation between area and fillet yield as well as volume (area x thickness) and<br />

fillet yield in Figure 2.3.<br />

The complete model included besides body traits the fixed effects of filleting person, origin<br />

and sex, it explained with 27% a greater part of the variance in fillet yield (Table 2.3). This<br />

value is lower compared with other reports; e.g. Bosworth et al. (2001) calculated an R 2 of<br />

0.56 and Sang et al. (2009) an R 2 of 0.77.<br />

In order to be more realistic under field conditions, fillet yield was separately predicted for the<br />

origins revealing essential differences (Table 2.3). R 2 was increased in Norwegians (0.52) and<br />

decreased R 2 in Icelandic fish (0.16). Rutten et al. (2004) also observed significant differences<br />

38


etween tilapia strains. Their fillet yield model was improved substantially by using separate<br />

regression coefficients for body measurements of each strain.<br />

The lesser prediction performance of Icelandic fish resulted from a huge variation between<br />

sexes. The explained part of variance was three times larger in Icelandic females (52%) than<br />

in Icelandic males (13%). In Norwegian fish approximately 52% of the variance in fillet yield<br />

was explained in both sexes. These gaps in populations are also reflected in the variance<br />

analysis of fillet yield. Calculation of variance showed that Icelandic fish was more<br />

heterogeneous in fillet yield (variance: ♀ = 6.49, ♂ = 35.74) than Norwegian fish (variance:<br />

♀ = 5.99, ♂ = 6.36) in sex (Fig. 2.4).<br />

Figure 2.4: Illustration of fillet yield (F %) distribution between the sexes within the origins and between the<br />

origins.<br />

The reason for this is unclear. Other authors, such as Hörstgen-Schwark et al. (1986) and<br />

Bosworth et al. (1998) have already reported influences of size, age, visceral composition,<br />

39


ody shape and genotype on carcass yield. Several studies reported in better growth<br />

performance and condition of females in wild turbot (Imsland et al., 1997; Stankus, 2001;<br />

Bone and Moore, 2008). We suppose that the time of breeding process has been influenced<br />

the variance in fillet yield. To our knowledge, the Norwegian population is longer in breeding<br />

process than the Icelandic and so longer subjected to artificial selection conditions. Therefore,<br />

the Norwegian turbot could have lost a part of sexual difference. This assumption is only one<br />

of many other conceivable treats that could not be included in the analysis. These are different<br />

environmental conditions in the first rearing phase, different relationships among fish, preselection<br />

of fish in hatchery etc.<br />

4.3 Cross validation<br />

Cross validation results additionally confirm that body measurements have a high ability for<br />

prediction of body and fillet weight. Furthermore, they are also robustness for prediction<br />

across and within populations. The preferred model for prediction of fillet weight across and<br />

within the population with the least RMSEP included area, thickness, length and width as<br />

variables. As expected the values for SEP were slightly lower than the RMSEP values. The<br />

bias was not significantly different from zero at P


Table 2.4: Body measurement models: different combinations of body measurements used for regressions of body weight (BW), fillet weight (FW) and fillet yield (F %) plus the corresponding<br />

R 2 , RMSEP, SEP, BIAS and r. Abbreviations: goodness of fit (R 2 ), root mean square error prediction (RMSEP), standard error of prediction (SEP), correlation coefficients between<br />

predicted and observed values (r), body weight (BW), area (A), thickness (T), length (L), width (W)<br />

Traits Body measurements R 2 Signific. level RMSEP BIAS SEP r<br />

BW ~ Area = 0.9691 *** 56.04 1.57 56.02 0.98<br />

BW ~ Thickness = 0.6796 *** 180.46 1.05 180.48 0.82<br />

BW ~ Area * thickness = 0.9773 *** 48.01 -0.27 48.02 0.99<br />

BW ~ Length = 0.9272 *** 85.52 -1.71 85.52 0.96<br />

BW ~ Width = 0.9241 *** 88.02 9.16 87.55 0.96<br />

BW ~ Length * width = 0.9756 *** 49.76 -2.10 49.72 0.99<br />

BW ~ A + T + L + W = 0.9757 *** 49.72 -0.33 49.72 0.99<br />

41<br />

FW ~ Body weight = 0.9697 *** 18.82 0.01 18.82 0.99<br />

FW ~ Area = 0.9289 *** 28.83 0.87 28.82 0.96<br />

FW ~ Thickness = 0.6447 *** 64.45 -1.64 64.44 0.80<br />

FW ~ Area * thickness = 0.9401 *** 26.45 0.005 26.45 0.97<br />

FW ~ Length = 0.8884 *** 36.11 -0.33 36.11 0.94<br />

FW ~ Width = 0.8823 *** 37.08 0.59 37.08 0.94<br />

FW ~ Length * width = 0.9393 *** 26.68 1.74 26.63 0.97<br />

FW ~ A + T + L + W = 0.9371 *** 27.11 0.95 27.13 0.97<br />

FW ~ BW + A + T + L + W = 0.9708 *** 18.46 0.040 18.46 0.99<br />

F% ~ Body weight = 0.0287 *** 3.61 -0.003 3.61 0.17<br />

F % ~ Area = 0.0226 *** 3.62 -0.001 3.62 0.15<br />

F % ~ Thickness = 0.0100 *** 3.65 0.0003 3.65 0.10<br />

F % ~ Area * thickness = 0.0303 *** 3.61 0.001 3.61 0.17<br />

F % ~ Length = 0.0208 *** 3.63 -0.01 3.63 0.14<br />

F % ~ Width = 0.0190 *** 3.63 0.003 3.63 0.14<br />

F% ~ Length * width = 0.0318 *** 3.61 0.01 3.61 0.18<br />

F% ~ A + T + L + W = 0.0285 *** 3.61 -0.01 3.61 0.17<br />

F% ~ BW + A + T + L + W = 0.0400 *** 3.59 -0.002 3.59 0.20<br />

Significance codes: 0`***´0.001`**´0.01`*´0.5`.´0.1`´1


Table 2.5: Cross-validation performance of body measurements for prediction of fillet weight trained on Norwegian fish and tested on Icelandic fish as well as trained on Icelandic<br />

fish and tested on Norwegian fish. Abbreviations: goodness of fit (R 2 ), root mean square error prediction (RMSEP), standard error of prediction (SEP), correlation<br />

coefficients between predicted and observed values (r)<br />

42<br />

Origin n r RMSEP BIAS SEP<br />

Partial regression coefficients<br />

Intercept Area Thickness Length Width<br />

Iceland 1482 0.95 29.96 -0.17 29.97 -175 1.21<br />

Iceland 1482 0.81 49.19 20.77 44.61 -224 161<br />

Iceland 1482 0.94 37.15 -5.46 36.76 -592.9 33.4<br />

Iceland 1482 0.92 40.31 0.35 40.32 -517.5 38.3<br />

Iceland 1482 0.96 29.92 -0.64 29.92 -180.02 1.19 4.01<br />

Iceland 1482 0.94 37.40 -3.86 37.21 -568.4 16.4 20.2<br />

Iceland 1482 0.96 27.03 5.02 26.57 101.88 2.03 5.75 -11.3 -14.7<br />

Norway 2782 0.97 41.97 -17.90 37.97 -99.82 0.94<br />

Norway 2782 0.77 80.05 -32.06 73.37 -175 133<br />

Norway 2782 0.94 49.94 -16.38 47.19 -382.8 24.3<br />

Norway 2782 0.95 53.71 -23.15 48.48 -317 27<br />

Norway 2782 0.97 42.02 -17.71 38.12 -109.17 0.898 8.301<br />

Norway 2782 0.95 49.17 -18.24 45.67 -370.7 16.26 9.44<br />

Norway 2782 0.97 37.70 -15.34 34.43 74.48 1.58 7.71 -3.71 -16.21


Table 2.6: Cross-validation performance of body measurements for prediction of fillet weight trained on 500 fish and tested on 3,764 fish. Abbreviations: goodness of fit (R 2 ), root<br />

mean square error prediction (RMSEP), standard error of prediction (SEP), correlation coefficients between predicted and observed values (r)<br />

n r RMSEP BIAS SEP<br />

Partial regression coefficients<br />

Intercept Area Thickness Length Width<br />

3764 0.96 29.95 -0.86 28.94 -146.73 1.12<br />

3764 0.78 64.39 -0.68 64.40 -204 151<br />

3764 0.95 36.47 1.92 36.43 -508 30<br />

3764 0.93 37.11 -3.18 36.98 -450.1 34.6<br />

3764 0.96 28.92 -0.33 28.92 -146.628 1.118 0.748<br />

3764 0.95 34.51 -2.06 34.51 -501.1 21 10.8<br />

3764 0.97 27.43 1.12 27.41 91.62 1.89 1.57 -5.56 -18.53<br />

43


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47


KAPITEL 3<br />

Phenotypic comparison of performance traits of turbot (Scophthalmus<br />

maximus) from different origins<br />

<strong>Sophie</strong> <strong>Oesau</strong> a , Georg Thaller a , Carsten Schulz a,b , Jens Tetens a<br />

a<br />

<strong>Institut</strong>e of Animal Breeding and Husbandry, Christian-Albrechts-University, 24098 Kiel, Germany<br />

b<br />

GMA - Gesellschaft <strong>für</strong> Marine Aquakultur mbH, 25761 Büsum, Germany<br />

48


Abstract<br />

In this study two strains of individually tagged turbot, Scophthalmus maximus, (Norwegian<br />

origin; n = 3,423; Icelandic origin, n = 2,563) were examined to evaluate differences in<br />

growth performance and fillet yield. In addition, the influence of sex on these traits was<br />

studied. Fish were reared under similar conditions in a marine recirculation system from<br />

March 2010 to April 2011. All growth indices (body weight, body area, specific growth rate,<br />

fillet yield) showed that the growth performance of the Norwegian fish was superior<br />

compared to the Icelandic fish. Findings suggest that population specific differences in<br />

growth, body size and energy allocation were probably caused by hatchery selection.<br />

With respect to sex there were no initial size differences, but the final weight of females was<br />

larger than that in male fish from Norway. The significantly higher growth performance of<br />

females detected from 18 months post hatch may have been induced by beginning of sexual<br />

maturity. No variations in growth were observed between Icelandic sexes over the trial<br />

period.<br />

A significantly higher fillet yield was revealed for Norwegian fish compared to Icelandic fish.<br />

Additionally, significant differences were observed within populations. Whereas fillet yield<br />

was significantly higher for Norwegian males than for Norwegian females, no differences in<br />

fillet yield were detected between Icelandic sexes.<br />

In a further analysis, turbot were divided into groups according to their growth intensity in<br />

low, middle and fast growing fish. Fast growing fish had the highest fillet yield. Norwegian<br />

females had the highest proportion of fast growing fish. Results from this study illustrate a<br />

clear advantage of all-female production for the commercial production of turbot.<br />

Additionally, selection on prematureness could improve the average growth performance and<br />

make the production more efficient.<br />

49


1. Introduction<br />

In marine aquaculture, turbot production is of growing commercial interest. This is indicated<br />

by an increased European production from 53 tons in 1985 to expected 16,500 tons in <strong>2012</strong><br />

(Bjørndal and Øiestad, 2011). The efficiency of the production is substantially determined by<br />

the growth of fish. Thus, fast and uniform growth is required. However, wide variation in<br />

growth performance of turbot has been reported (Rosenberg and Haugen, 1982; Imsland et al.,<br />

1997). Differences in individual growth can cause wide variations in fish sizes among rearing<br />

groups (Imsland et al., 1998). These variations can negatively influence production processes<br />

and the economic result of fish farming (Lavens and Remmerwaal, 1994; Sutherland, 1997;<br />

Imsland et al., 1998). Therefore, optimization of fish growth through improvements in<br />

breeding is of major concern. The identification of best growing fish at an early stage of life is<br />

of enormous importance for aquaculture management and selection decision in genetic<br />

breeding programs (Palada de Vera and Eknath, 1993).<br />

Effective selection of animals requires profound knowledge of their growth patterns under<br />

commercial farming conditions (Krieter and Kalm, 1988). Variations in performance based on<br />

different strains, breeds and sexual dimorphisms reflect the potential of a trait and indicate the<br />

set up for breeding schemes (Purdom et al., 1972; Devauchelle et al., 1988; Imsland et al.<br />

1997; Imsland et al., 2001).<br />

According to Gjerde (1989), significant sex effects need to be taken into consideration when<br />

breeding values of candidates for selection are predicted. For example, turbot females are<br />

known to become larger than males (Imsland et al., 1997; Imsland et al., 2001). However, it is<br />

unknown if this divergent growth between sexes is already present in the immature stage.<br />

Apart from inhomogenous growth of fish, product quality, in particular fillet traits such as<br />

weight and yield, are now gaining interest due to the fact that consumer preferences are<br />

changing. Fillet traits have been established as a goal in breeding progress in several fish<br />

species (Bosworth et al., 1998; Bosworth et al., 2001; Neira et al., 2004; Rutten et al., 2004;<br />

50


Sang et al., 2009). The actual connection between fish growth performance, sexual<br />

dimorphism, and fish strain on fillet traits remains unclear.<br />

It the present investigation, we examined two strains of turbot – one from Norway and one<br />

from Iceland – to evaluate differences growth performance and fillet yield. In addition, the<br />

influence of sex on these traits was studied. By comparing growth and fillet yield within and<br />

between the different origins, we aimed to detect characteristics in fish populations that could<br />

potentially help to accelerate the breeding progress in turbot.<br />

2. Materials and Methods<br />

2.1. Experimental conditions and animals<br />

For the investigation, 5,986 turbot were obtained from a Norwegian (n = 3,423) and an<br />

Icelandic (n = 2,563) hatchery. The initial individual fish weight varied between 9.6 g and<br />

168.4 g.<br />

Animals were kept under commercial conditions in a recirculating seawater system<br />

comprising 20 cylindrical basins with a total volume of 50 m 3 at the “Gesellschaft <strong>für</strong> Marine<br />

Aquakultur mbH (GMA) in Büsum”, Germany. During the entire experiment, water<br />

conditions were as follows: O 2 : ≈ 8.2 mg/l, NH + 4 : ≈ 0.3 mg/l, NO - 2 : ≈ 2.5 mg/l, salinity: ≈<br />

29‰, temperature: ≈ 18.5 °C. Fish were fed a commercial turbot feed, “Aller 505” (Aller<br />

Aqua, Denmark) at a rate of 1% of the actual stock biomass per day.<br />

Initially, the two origins were held separately. In March 2010 passive integrated transponder<br />

(PIT) tags (Hallprint, PTY Ltd., Hindmarsh Valley, Australia) were administered intraabdominally<br />

to allow individual identification of each fish. Subsequently, animals of both<br />

origins were admixed randomly and stocked into different basins according to size.<br />

51


2.2 Data recording<br />

Data from all turbot were recorded ten times every five and a half weeks between March 2010<br />

and April 2011. Each fish was weighed and body measures were captured by laser assisted<br />

photography (Arfsten et al., 2010). Standardized images were taken of the eye-side of each<br />

fish. Calibration was done by imaging a reference object.<br />

From then on animals were kept to be removed from the experiment to comply with a<br />

maximum stocking density of 30 kg/m 2 . An appropriate number of turbot was chosen<br />

randomly for this purpose.<br />

Fish were killed by CO 2 fumigation and bleeding and subsequently weighed and<br />

photographed. Each fish was manually dissected and sex was determined by visual inspection<br />

of the gonads. All fish were filleted and the identity of the filleting person was recorded to<br />

account for possible effects due to differences in filleting skills. The skinless fillet was<br />

weighed to the nearest of 0.1 g. Fillet yield was calculated as: F % = (FW/BW) * 100, where<br />

BW is the body weight and FW is the fillet weight.<br />

Fish origin, body weight, sex and fillet weight recordings as well as fish images were stored<br />

for each fish in a database in correspondence to the PIT tag identification code.<br />

2.3 Capture of body shape traits by picture analysis<br />

Body shape measurements (length, width, thickness and area without fin seams) were<br />

determined via picture analysis using semi-automated software, which was developed for this<br />

purpose in Phyton 2.7. From each fish image the shape of the fish without fin seams was<br />

traced by manually defining points located on the perimeter. A polygon was fitted to these<br />

points, from which fish area and width were automatically determined. For calculation of fish<br />

length a line was drawn between head and tail. All areas and distances were recorded in pixel<br />

and converted to cm and cm 2 based on calibration images. Distances and areas were measured<br />

to the nearest of 0.1 mm (with an average of 16 pixel/cm).<br />

52


2.4 Statistical analysis<br />

A data set of 2,004 turbot was used for statistical analyses. Statistical calculations were<br />

performed with the free statistic software R, version 2.10.1 (R Development Core Team,<br />

2009). All data were tested for normal distribution with the Shapiro-Wilk test and for<br />

homogeneity of variance with Levene’s F test. Neither normal distribution nor homogeneity<br />

could be determined for the data set. A subsequent logarithmic transformation of the data was<br />

not sufficient. Therefore, the non-parametric Mann-Whitney-Wilcoxon rank sum test was<br />

used to compare growth parameters and fillet traits. Z is the test statistic of the Mann-<br />

Whitney-Wilcoxon test.<br />

Growth and fillet traits were compared within and across sexes and strains. Furthermore, the<br />

animals were grouped by daily weight gain into rapidly, moderately and slowly growing fish<br />

and analyzed separately (Fig. 3.1).<br />

Figure 3.1: Turbot of the Norwegian and the Icelandic population grouped by daily weight gain into slowly, medium and<br />

fast growing fish.<br />

53


For better comparison, both fish strains were compared in a nine month´s period of<br />

comparable age, due to the fact that the Icelandic turbot were two months younger at the start<br />

of the trial. A correction was made for fish age and for the filleting person for the final<br />

comparison of fillet yield at day of slaughter (Rutten et al., 2004).<br />

3. Results<br />

3.1 Development of body weight<br />

Figure 3.2 shows the development of body weight of fish from both strains at comparable age.<br />

Initial mean body weights were different between origins (Z = -6.02, P


Table 3.1: Body weight and area of Norwegian and Icelandic turbot at combarable age and standard deviation in<br />

parentheses.<br />

Age in days<br />

Norway<br />

Iceland<br />

Weight (g) Area (cm 2 ) Weight (g) Area (cm 2 )<br />

347<br />

118.4<br />

(30.87)<br />

109.4<br />

(19.0)<br />

108.1<br />

(28.46)<br />

103.8<br />

(18.2)<br />

385<br />

173.4<br />

(46.10)<br />

142.9<br />

(25.4)<br />

164.7<br />

(40.11)<br />

138.5<br />

(21.6)<br />

424<br />

251.8<br />

(61.40)<br />

180.6<br />

(29.3)<br />

234.8<br />

(57.09)<br />

165.3<br />

(26.3)<br />

462<br />

350.6<br />

(83.0)<br />

220.0<br />

(35.7)<br />

305.7<br />

(78.2)<br />

206.3<br />

(32.5)<br />

501<br />

452.5<br />

(113.6)<br />

259.7<br />

(40.4)<br />

395.2<br />

(110.4)<br />

237.2<br />

(42.8)<br />

578<br />

567.0<br />

(149.0)<br />

295.3<br />

(51.1)<br />

541.3<br />

(185.3)<br />

277.2<br />

(59.0)<br />

616<br />

664.6<br />

(190.1)<br />

322.1<br />

(57.4)<br />

628.5<br />

(244.3)<br />

311.7<br />

(74.3)<br />

Mean initial and final body weights of fish divided into three growth groups (slow, medium<br />

and fast) are presented in Table 3.2. Comparison of body weights among the three growth<br />

groups at the end of the trial period revealed that fish in the slowly and medium growing<br />

group increased their initial weight 6- or 8-fold, respectively. However, fish in the fast<br />

growing group increased their weight 10.5-fold.<br />

Table 3.2: Mean initial and final body weights of fish divided into three growth groups (slow, medium and fast) and<br />

standard deviation in parentheses.<br />

Growth<br />

groups<br />

Norway (n = 1315) Iceland (n = 689)<br />

Weight (g) Area (cm 3 ) Weight (g) Area (cm 3 )<br />

Start End Start End Start End Start End<br />

Slow<br />

101.43<br />

(27.45)<br />

550.12<br />

(93.54)<br />

98.26<br />

(17.29)<br />

291.28<br />

(32.53)<br />

71.69<br />

(16.83)<br />

482.20<br />

(97.47)<br />

85.35<br />

(14.58)<br />

266.74<br />

(36.72)<br />

Middle<br />

122.22<br />

(29.68)<br />

934.35<br />

(169.39)<br />

111.78<br />

(17.92)<br />

400.46<br />

(45.06)<br />

84.08<br />

(21.72)<br />

842.04<br />

(158.53)<br />

95.62<br />

(19.94)<br />

380.28<br />

(42.33)<br />

Fast<br />

138.38<br />

(24.49)<br />

1436.98<br />

(118.46)<br />

123.42<br />

(13.42)<br />

516.98<br />

(32.48)<br />

112.99<br />

(17.74)<br />

1419.02<br />

(124.03)<br />

118.95<br />

(12.66)<br />

521.99<br />

(33.42)<br />

55


The body weight over time of fish from both strains classified into growing groups is<br />

presented in Figure 3.3.<br />

Figure 3.3: Body weight of slowly growing fish (Norwegian turbot: ; Icelandic turbot: ), medium growing fish<br />

(NO: ; IC: ) and fast growing fish (NO: ; IC: ) at comparable age. Vertical lines indicate standard<br />

errors of the means.<br />

Icelandic turbot had a significant higher growth potential (final weight “slow”: Z = 3.39,<br />

P


Table 3.3: Weight and area of Norwegian and Icelandic turbot at comparable age at the end of the trial period and<br />

standard deviation in parentheses.<br />

Growth<br />

group<br />

Norway<br />

Iceland<br />

Weight (g) Area (cm 2 ) Weight (g) Area (cm 2 )<br />

Slow<br />

458.0<br />

(80.7)<br />

258.4<br />

(29.8)<br />

482.5<br />

(95.0)<br />

266.5<br />

(36.7)<br />

Medium<br />

703.4<br />

(134.2)<br />

335.3<br />

(39.4)<br />

842.4<br />

(158.4)<br />

380.3<br />

(42.3)<br />

Fast<br />

947.1<br />

(87.7)<br />

403.4<br />

(23.8)<br />

1419.0<br />

(124.0)<br />

522.0<br />

(33.4)<br />

3.2 Development of body weight for different sexes<br />

A comparison between fish of different sex within the populations revealed no differences in<br />

initial body weight (Norwegian fish: ♀ = 120.2 ± 32.2 g, ♂ =117.7 ± 30.4 g; Icelandic fish:<br />

♀ = 80.0 ± 20.6 g, ♂ = 75.4 ± 20.5 g) or initial body area (Norwegian fish: ♀ = 110.0 ±<br />

20.0 cm 2 , ♂ = 109.2 ± 18.7 cm 2 ; Icelandic fish: ♀ = 92.0 ± 16.4 cm 2 , ♂ = 88.6 ± 17.1 cm 2 ).<br />

Body weight and body area of fish from both strains and sexes are presented in Figure 3.4.<br />

Over the trial period, the body weight of female and male fish from Iceland was not<br />

significantly different. In contrast, from the day 561 day of their life, female turbot from<br />

Norway grew better than their male counterparts (body weight: Z = 3.64, P


Figure 3.4: Body weight and area of female () and male () turbot of the Icelandic and the Norwegian strain. Vertical<br />

lines indicate standard errors of the means.<br />

58


Figure 3.5: Frequencies of sex within growth groups of fish from Norway (female , male ) and from Iceland<br />

(female , male ). Percentages on each bar specify the % of sex within the respective strain.<br />

59


3.3 Fillet yield<br />

Fillet yields corrected for the effects filleting person and age revealed a significantly higher<br />

fillet yield for Norwegian fish (32.2 ± 3.9 %) compared with Icelandic fish (30.9 ± 3.7 %)<br />

(Z = -7.91, P


Figure 3.6: Fillet yield (F %) in relation to growth groups (slow; medium; fast) at the end of the trial period.<br />

Figure 3.7: Fillet yield (F %) of female () and male () fish from Norway or Iceland at the end of the trial period.<br />

61


4. Discussion<br />

4.1 Development of body weight<br />

In this study the growth of turbot from two commercially cultured strains was compared<br />

within and between populations. Although fish from Norway were two months older than fish<br />

from Iceland, correction of fish age allowed a comparison of both strains over the same ninemonth<br />

period of their life. Growth performance was found to be different between populations<br />

when fish were reared under the same conditions. On average Norwegian turbot were 7.8 %<br />

heavier and 5.8 % larger in area than Icelandic fish (Fig. 3.2).<br />

Findings suggest that population specific differences in growth, body size and energy<br />

allocation exist (Svåsand et al., 1996; Imsland et al., 2001). It has been reported that growth<br />

patterns are influenced by origin or genotype (Hörstgen-Schwark et al., 1986; Bosworth et al.<br />

1998). In studies with Atlantic cod (Svåsand et al., 1996), Dover sole (Exadactylos et al.,<br />

1999), Atlantic halibut (Jonassen et al., 2000) and turbot (Imsland et al., 2001) interpopulation<br />

differences in growth were found. These findings were to some extent attributed to<br />

the longitude of fish origin (Conover and Present, 1990; Conover et al., 1997; Imsland et al.,<br />

2000). However, for findings in the current study it is more likely that differences in growth<br />

between populations were caused by hatchery selection (Imsland et al., 2001). The set-up of<br />

the present investigation aimed to exclude factors that could bias the population results for<br />

growth and body traits. No information about growth determining rearing conditions<br />

(Holmefjord et al., 1993; Jonassen et al., 2000) is available for fish from both strains before<br />

the trial period. Additionally, the significant variation in initial weights between both strains<br />

can be considered as a cause for growth differences during the trial period. Several authors<br />

have reported that differences in juvenile growth performance can extend into the adult stage<br />

(Imsland et al., 1997; Jonassen et al., 2000).<br />

62


4.2 Development of body weight for different sexes<br />

A positive relation between fecundity and body size favors a rapid growth in females,<br />

whereas no such relationship exists for male flatfish (Roff, 1982; Jákupsstovu and Haug,<br />

1988; Imsland et al., 1997). Accordingly, in the present investigation more than double as<br />

many female turbot (15.8 %) than male turbot (6.3 %) belonged to the fast growing group.<br />

Significantly higher body weight of female fish from Norway compared with males indicating<br />

the beginning of sexual maturity (Jones, 1974; Robert and Vianet, 1988) was detected 18<br />

months post-hatch (day 561). Average final weight of male Norwegian turbot was 16.1 % less<br />

and the average final area was 12.1 % smaller compared with female fish. Imsland et al.<br />

(1997) reported that from nine months post-hatch significant differences in growth existed<br />

between maturing and non-maturing fish. They found that fast growing turbot matured earlier<br />

than slowly growing fish and that the age at first maturity is related to early juvenile growth.<br />

Maturation and performance of fecundity is strongly associated with age, size and growth of<br />

fish (Roff, 1982; Bone and Moore, 2008). The absence of differences in growth of female and<br />

male fish from Iceland indicates that maturation had not started during the trial period. Even<br />

when the Icelandic fish were almost 20 months old and 10 % heavier than the Norwegian fish<br />

at 18 months post-hatch, no significant differences in growth were found between sexes. So<br />

the start of sexual maturity varies not only with age, size and growth, but also depends on<br />

origin or genetic factors (Imsland et al., 2000).<br />

4.3 Fillet yield<br />

Usually, turbot is marketed as whole fish. The favored size is depending on the market<br />

situation approximately between 1 and 2 kg (Bjørndal and Øiestad, 2011). But the importance<br />

of fish fillet yield has increased since it can be regarded as a desired trait for the improvement<br />

of fish production efficiency. In recent years the demand for processed and frozen food has<br />

63


een growing drastically due to the fact that consumers prefer convenience food requiring less<br />

preparation time (Bauer and Schlott, 2009; Yasemi et al., 2011).<br />

In the present study, a comparison of the mean fillet yield adjusted for fish age and for<br />

filleting person between growth groups, strains and sex, indicated a 3.7 % difference between<br />

slowly and fast growing fish. Taking the sex of the fish into consideration, we observed, that<br />

the fillet yield of female fish from Norway was less than that of male (Table 3.4). The<br />

influence of sex on fillet yield is in accordance with previous investigations (Alinezhad, 2004;<br />

Yasemi et al., 2011). The development of gonads during female maturation leads to decreased<br />

fillet yield (Dubost et al., 1997; Yasemi et al., 2011). Lower gonad production in males than<br />

in females could explain the higher fillet yield of male fish from Norway. However, different<br />

fillet yields were not detected among sexes within fish of the Icelandic strain. This could be<br />

explained by differences in maturation status between the two strains of turbot.<br />

5. Conclusion<br />

Population specific differences in growth performance were documented. Turbot of the<br />

Norwegian strain grew better than turbot of the Icelandic strain. Additionally, we detected<br />

that Norwegian females showed a significantly better growth performance than males at the<br />

age of 18 months post hatch due to beginning of maturation. In contrast, no differences were<br />

observed between Icelandic sexes. Overall, the best total performance was found in the fast<br />

growing fish, of which the majority was Norwegian females.<br />

Results from this study illustrate a clear advantage of all-female production for the<br />

commercial production of turbot. Additionally, selection of early maturity start could improve<br />

the average growth performance and make the production more efficient.<br />

64


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69


ALLGEMEINE DISKUSSION<br />

Ziel der vorliegenden Arbeit war die Erfassung und Bewertung von Leistungsmerkmalen<br />

beim Steinbutt. Da<strong>für</strong> wurden drei Themenbereiche bearbeitet. Zuerst wurde <strong>für</strong> eine einfache<br />

und sichere Einzeltiermarkierung ein Protokoll <strong>für</strong> die Implantation eines PIT-tags in die<br />

Bauchhöhle des Steinbutts entwickelt und die Auswirkungen geprüft.<br />

Im Weiteren wurden Regressionsmodelle erstellt, mit denen anhand von Körpermaßen<br />

Leistungsmerkmale am lebenden Tier geschätzt werden konnten.<br />

Abschließend wurden populations- und geschlechtsspezifische Unterschiede in den<br />

bedeutenden Leistungsmerkmalen Wachstum und Schlachtkörperwert analysiert.<br />

Einsatz und züchterische Anwendung von passive intergrated transponder (PIT) tags<br />

Die Einzeltiererkennung ist die Basis <strong>für</strong> die Durchführung moderner Selektions- und<br />

Zuchtprogramme, da die Schätzung von genetischen Parametern und Zuchtwerten das Wissen<br />

über individuelle Leistungs- und Pedigreedaten der Nachkommen voraussetzt (Rodríguez-<br />

Ramilo et al., 2007). Für die individuelle Erfassung von Leistungsparametern bei Fischen ist<br />

eine Markierungsmethode erforderlich, die<br />

eine individuelle Identifikation einer großen Anzahl von Tieren ermöglicht,<br />

keinen negativen Einfluss auf die Gesundheit und Leistung der Fische hat,<br />

eine gemeinsame Haltung der Fische erlaubt und<br />

bei routinemäßigen Erhebungen von Leistungsdaten eine einfache und schnelle<br />

Einzeltiererkennung gewährleistet<br />

(Baras et al., 2000; Navarro et al., 2006; Acolas et al., 2007).<br />

Der Einsatz von passive integrated transponder (PIT) tags zur individuellen Markierung<br />

wurde schon bei unterschiedlichen aquatischen Arten untersucht wie zum Beispiel bei<br />

Garnelen (Caceci et al., 1999), Doraden (Navarro et al., 2006), Bachforellen (Acolas et al.,<br />

70


2007; Gheorghiu et al., 2010), Zandern (Hopko et al., 2010) und Rohus (Das Mahapatra et al.,<br />

2001). Beim Steinbutt lagen jedoch bisher keine Untersuchungen vor.<br />

Aufgrund der großen Unterschiede in Morphologie und Verhaltensweisen verschiedener<br />

Fischarten muss <strong>für</strong> jede individuell der Einsatz von PIT-tags als Markierungsmethode<br />

untersucht werden (Navarro et al., 2006). Viele Studien variieren sowohl in der<br />

Implantationsart (z. B. mit oder ohne Applikator) (Caceci et al., 1999; Baras et al., 2000; Das<br />

Mahapatra et al., 2001), als auch in der Positionierung des PIT-tags (subkutan, intramuskulär<br />

oder intraabdominal) (Das Mahapatra et al., 2001; Gheorghiu et al., 2010; Hopko et al., 2010)<br />

sowie in der Größe der Fische zum Implantationszeitpunkt (Baras et al., 2000; Navarro et al.<br />

2006; Hopko et al., 2010). In der in Kapitel 1 vorgestellten Studie wurde ein Protokoll zur<br />

individuellen Markierung von Steinbutten mittels einer intraabdominalen Implantation von<br />

PIT-tags entwickelt. Zudem wurden die Auswirkungen dieser Methode anhand der<br />

Mortalitätsrate, der Gesundheit und der Wachstumsleistung der Fische innerhalb der ersten 22<br />

Tage nach der tag-Implantation bewertet. Eine Mortalitätsrate von unter 0,2 %, das<br />

Ausbleiben von Sekundärerkrankungen und intraabdominalen Entzündungen wie Geschwüren<br />

oder Blutungen sowie keinerlei Wachstumsdepressionen nach dem Eingriff stehen <strong>für</strong> die<br />

gesundheitliche Verträglichkeit dieses Eingriffs. Außerdem funktionierte die Technik<br />

fehlerfrei. Während des gesamten Versuchszeitraums konnten keine tag-Verluste oder<br />

Auslesefehler festgestellt werden (Diskussion, Kapitel 1).<br />

Für eine umfangreiche Erfassung und Bewertung von tierindividuellen Leistungsdaten <strong>für</strong> die<br />

Erarbeitung der Zuchtwertschätzung beim Steinbutt mussten alle Tiere markiert werden. In<br />

weitergehenden Studien wäre jedoch der Einbezug einer Refernzgruppe interessant, um den<br />

Einfluss der PIT-tag-Implantation auf die Wachstumsleistung noch besser bewerten zu<br />

können (Baras et al., 2000; Navarro et al., 2006; Acolas et al., 2007).<br />

Insgesamt wurde in dieser Arbeit gezeigt, dass die Implantation eines PIT-tags nach dem in<br />

Kapitel 1 vorgestellten Protokoll eine einfache und sichere Methode ist, Steinbutte in einer<br />

71


großen Anzahl <strong>für</strong> eine routinemäßige Datenerhebung, beispielsweise <strong>für</strong> wissenschaftliche<br />

Studien oder Selektionsprogramme, individuell zu markieren.<br />

Die separate Vollgeschwisterhaltung der Fische bis zum Erreichen einer markierfähigen<br />

Größe ist ein Nachteil der PIT-tag-Markierung (Das Mahapatra et al., 2001; Navarro et al.,<br />

2006). Dieser Nachteil kann jedoch durch die kombinierte Anwendung von PIT-tags mit<br />

einem genetischen Markerset <strong>für</strong> die Elternzuordnung behoben werden. Auf diese Weise<br />

können die Nachkommen aller Anpaarungen gemeinsam erbrütet und aufgezogen sowie<br />

Leistungsverzerrungen durch verschiedene Haltungsumwelten während der ersten<br />

Aufzuchtphase vermieden werden (Gjedrem, 2010). Bei Erreichen der markierfähigen Größe<br />

kann ein PIT-tag <strong>für</strong> die routinemäßige Datenerfassung appliziert und eine DNA-Probe <strong>für</strong> die<br />

Elternzuordnung entnommen werden. Die Auswahl der Zuchttiere zur Erstellung der nächsten<br />

Generation kann dann auf Basis einer „Zwei-Stufen-Selektion“ durchgeführt werden (Blonk,<br />

2010). Zuerst erfolgt eine Massenselektion der besten Tiere anhand des Phänotyps. Diese<br />

Tiere werden zur Ermittlung ihres Verwandtschaftsstatus genotypisiert. Auf Basis der Genound<br />

Phänotypdaten schließt sich in der zweiten Selektionsstufe die Zuchtwertschätzung an.<br />

Anhand der ermittelten Zuchtwerte kann die Auswahl und Verpaarung der besten männlichen<br />

und weiblichen Tiere erfolgen mit dem Ziel, den Zuchtfortschritt zu steigern und die<br />

Inzuchtrate zu reduzieren. Darüber hinaus kann bei diesem Vorgehen die Anzahl der<br />

Genotypisierungen minimiert und damit Kosten gesenkt werden (Blonk, 2010). Es bedarf<br />

jedoch einer genauen Kosten-Nutzen-Analyse, um die Rentabilität solch einer Maßnahme zu<br />

bestimmen. Da<strong>für</strong> müssen die jährlich anfallenden Kosten <strong>für</strong> Anlagenbetrieb (Strom, Wasser,<br />

Abschreibungen usw.), Arbeitskraft und Fischfutter sowie <strong>für</strong> das „Taggen“ (ca. 2,- Euro pro<br />

PIT-tag) und Genotypisieren (ca. 20,- Euro pro Tier) der aus der genetischen Verbesserung<br />

der Produktionspopulation erwarteten Rendite gegenübergestellt werden. Diese wird als<br />

Produkt des ökonomischen Wertes der gesamten Population (Anzahl Tiere) und des<br />

Zuchterfolgs (g pro Tag) pro Jahr berechnet (Blonk, 2010). Diese Informationen sind meist<br />

72


nicht vollständig oder nur ungenau verfügbar, wie z. B. genaue Angaben zur<br />

Futterverwertung. Dies erschwert die Bewertung der Effizienz sowie den Vergleich<br />

verschiedener Zuchtprogramme.<br />

Indirekte Gewichtserfassung<br />

Eine weitere essentielle Voraussetzung <strong>für</strong> die Entwicklung moderner Zuchtprogramme ist<br />

die individuelle Erfassung phänotypischer Parameter am lebenden Fisch. Wie in Kapitel 2<br />

eingehend erläutert, sind die Leistungsmerkmale Körpergewicht, Filetgewicht und Filetanteil<br />

von Bedeutung in der Steinbuttzucht. Die direkte Wiegung ist die präziseste Methode das<br />

Gewicht tierindividuell zu bestimmen. Allerdings ist diese Methode arbeitsintensiv und <strong>für</strong><br />

den Fisch mit Stress verbunden. Zudem erfordert die Erfassung von Filetmerkmalen das<br />

Schlachten und Filetieren des Fisches, der somit nicht mehr der Zucht zur Verfügung steht<br />

(Sang et al., 2009). Die Entwicklung einer nicht invasiven Methode zur Bestimmung dieser<br />

Merkmale kann die Selektionseffizienz verbessern und erlaubt einen höheren Zuchtfortschritt<br />

(Bosworth et al., 2001; Sang et al., 2009).<br />

In Kapitel 2 wird die Möglichkeit der Schätzung des Körper- und Filetgewichts sowie des<br />

Filetanteils am lebenden Steinbutt auf Basis der per Bildanalyse erfassten Körperform als<br />

Alternative zur direkten Wiegung diskutiert.<br />

Unter Verwendung der Körpermaße Länge, Fläche, Breite und Dicke konnte das<br />

Schätzmodell <strong>für</strong> die Vorhersage des Körper- und Filetgewicht eine Genauigkeit von<br />

annähernd 100 % erzielen. Außerdem kann <strong>für</strong> eine einfachere routinemäßige Datenerfassung<br />

unter Praxisbedingungen das Schätzmodell bis auf die Variable Körperfläche reduziert<br />

werden, da sie 96 % und 94 % der Varianz im Körper- und Filetgewicht erklärt. Diese<br />

Ergebnisse ergaben sich aus den hohen Korrelationen zwischen Körpergewicht bzw.<br />

Filetgewicht und den Körpermaßen und kamen denen vorausgegangener Studien gleich<br />

(Bosworth et al., 1998; Cibert et al., 1999; Yasemi et al., 2011; Rutten et al., 2004).<br />

73


Aufgrund der fehlenden Beziehung zu den Körpermaßen war die Vorhersage des Filetanteils<br />

anhand der Körperform nicht erfolgreich. Diese Beobachtung deckt sich mit einer Reihe<br />

anderer Studien (Bosworth et al., 1998; Cibert et al., 1999; Rutten et al., 2004; Bauer und<br />

Schlott, 2009; Yasemi et al., 2011). Eine Berücksichtigung des Filetierers, des Geschlechts<br />

und der Herkunft als fixe Effekte im Modell konnten den Anteil der erklärten Varianz von<br />

4 % auf 27 % steigern, das entsprach weniger als der Hälfte im Vergleich mit anderen<br />

Studien (Bosworth et al., 2001; Sang et al., 2009). Für einen besseren Bezug zur Praxis wurde<br />

eine Schätzung des Filetanteils separat <strong>für</strong> jede Herkunft durchgeführt. Diese zeigte<br />

Unterschiede zwischen den Populationen auf. Während die Güte des Schätzmodells <strong>für</strong> die<br />

norwegischen Fische (R 2 = 0,52) anstieg, wurde sie <strong>für</strong> die isländische Population (R 2 = 0,16)<br />

weniger. Diese Beobachtung war auf eine starke Varianz in diesem Merkmal zwischen den<br />

Geschlechtern innerhalb der isländischen Population zurückzuführen (Island: ♀ = 6,49,<br />

♂ = 35,74; Norwegen: ♀ = 5,99, ♂ = 6,36). Genotyp und Geschlecht beeinflussen<br />

nach Aussagen verschiedener Autoren wie Hörstgen-Schwark et al. (1986), Imsland et al.<br />

(1997) und Bosworth et al. (1998) maßgeblich den Schlachtkörperertrag und sind hier auch<br />

als potentielle Einflussfaktoren anzusehen.<br />

Für eine differenzierte Erklärung bedarf es weitergehender Untersuchungen, besonders<br />

hinsichtlich der Wachstumsmuster und der Interaktionen zwischen den Leistungsmerkmalen<br />

und dem Geschlecht sowie der Herkunft (Kapitel 3).<br />

In der vorliegenden Studie wurde gezeigt, dass die Bildanalyse ein viel versprechendes<br />

Instrument zur Phänotypisierung beim Steinbutt ist. Eine Weiterentwicklung dieser Methodik<br />

<strong>für</strong> eine Gewichtserkennung von lebenden Steinbutten in geschlossenen Kreislaufsystemen<br />

anhand der mittels Bildanalyse erfassten Körperfläche würde einen wesentlichen Beitrag zur<br />

Vereinfachung des Produktions- und Zuchtmanagements leisten (Costa et al., 2006; Blonk et<br />

al., 2010). Duale Kamerasysteme wurden schon erfolgreich zur Größenbestimmung bei frei<br />

74


schwimmenden Fischen eingesetzt, unter anderem beim Königslachs und beim Blauflossen-<br />

Thunfisch (Petrell et al., 1997; Costa et al., 2006).<br />

Des Weiteren deuten diese Ergebnisse an, dass aufgrund der hohen Korrelationen mit dem<br />

Körper- und Filetgewicht eine Selektion auf die Fläche zur Verbesserung der Produktion<br />

beitragen kann.<br />

Phänotypischer Vergleich von Leistungsparametern<br />

Beim Steinbutt handelt es sich um eine Fischart, deren Wachstum einer großen Variation<br />

unterliegt (Rosenberg und Haugen, 1982; Imsland et al., 1997; Imsland et al., 2001). Jedoch<br />

ist ein homogenes und schnelles Wachstum von kommerziell gehaltenen Fischen maßgebend<br />

<strong>für</strong> die Effizienz der Produktion (Nijhof, 1994; Irwin et al., 1999, Gjedrem, 2000). Daraus<br />

resultiert das Interesse an einer genetischen Verbesserung der Wachstumsleistung von<br />

kommerziell gehaltenem Steinbutt hinsichtlich Größe und Homogenität. Da<strong>für</strong> ist ein breites<br />

Wissen über die Wachstumsmuster die Grundlage. Die Wechselbeziehung zwischen<br />

Wachstums- und Schlachtkörperleistung mit dem sexualen Dimorphismus und der Herkunft<br />

blieben jedoch beim Steinbutt bisher weitestgehend unklar (Purdom et al., 1972; Devauchelle<br />

et al., 1988; Imsland et al., 1997; Imsland et al., 2001).<br />

In Kapitel 3 werden die Ergebnisse eines phänotypischen Vergleichs zwischen Steinbutten<br />

zweier Herkünfte hinsichtlich ihrer Wachstums- und Schlachtkörperleistung vorgestellt. In<br />

diesem Rahmen wurden außerdem die Auswirkungen des Sexualdimorphismus auf diese<br />

Merkmale sowohl innerhalb, als auch zwischen den Populationen analysiert.<br />

Beide Herkünfte unterschieden sich deutlich in ihrer Wachstumsleistung, die norwegischen<br />

Steinbutte wuchsen im Durchschnitt signifikant besser als die isländischen.<br />

Populationsspezifische Differenzen in Wachstumsrate und Körpergröße können auf natürliche<br />

Selektion aufgrund unterschiedlicher Habitate oder Selektionsprogramme auf den Farmen<br />

75


zurückgeführt werden (Conover und Present, 1990; Conover et al., 1997; Imsland et al.,<br />

2000).<br />

Eine signifikant höhere Wachstumsleistung der Weibchen im Vergleich zu den Männchen<br />

konnte an dem 18. Lebensmonat bei den norwegischen Steinbutten festgestellt werden. Im<br />

Gegensatz dazu wurden keine geschlechtsspezifischen Unterschiede im Wachstum innerhalb<br />

der isländischen Population ermittelt. Das Einsetzen des sexualen Dimorphismus wurde als<br />

Indikator <strong>für</strong> den Beginn der Geschlechtsreifung bei den norwegischen Fischen gesehen<br />

(Imsland et al., 1997). Des Weiteren konnte ein Einfluss des sexualen Dimorphismus bzw. der<br />

Geschlechtsreifung auf den Filetanteil gezeigt werden (Dubost et al., 1997; Alinezhad, 2004;<br />

Yasemi et al., 2011). Im Durchschnitt war dieser bei den norwegischen Männchen 1,4 %<br />

höher als bei den norwegischen Weibchen.<br />

Zwischen den Geschlechtern innerhalb der<br />

isländischen Steinbutte wurden dagegen keine signifikanten Abweichungen festgestellt.<br />

Insgesamt hatten die am schnellsten wachsenden Fische den höchsten Filetanteil. Den größten<br />

Anteil schnell wachsender Tiere stellte die Gruppe der norwegischen Weibchen.<br />

Für weiterführende Studien wäre besonders eine tiefer gehende Betrachtung der Interaktionen<br />

zwischen Wachstums- und Schlachtkörperleistung mit dem Einsetzen der Geschlechtsreifung<br />

interessant. In vielen anderen Aquakulturarten ist eine früh einsetzende Geschlechtsreife<br />

unerwünscht, da bei ihnen die mit Beginn der Geschlechtsreifung einsetzende Entwicklung<br />

der Gameten und Gonaden zu Lasten des somatischen Wachstums geht und das die<br />

Produktionsleistung negativ beeinflusst (Zanuy et al., 2001; Taranger et al., 2010). Als ein<br />

Frühreife auslösender Faktor gilt ein schnelles Wachstum (Taranger et al., 2010).<br />

Wir haben jedoch beobachtet, dass die norwegischen Weibchen ab dem mutmaßlichen<br />

Einsetzen der Geschlechtsreifung die Fische mit der besten Wachstumsleistung waren.<br />

Außerdem stellten sie, relativ zu ihrer Anzahl gesehen, den größten Anteil der schnell<br />

wachsenden Fische, die wiederum den höchsten Filetanteil aufwiesen. Diese Ergebnisse<br />

lassen keinen negativen Effekt einer frühen Geschlechtsreifung auf die Produktionsleistung<br />

76


eim Steinbutt erwarten. Eine Zucht auf Frühreife könnte im Gegenteil eine Steigerung der<br />

Produktionsleistung bewirken (Abbildung II). Zudem wäre das verkürzte Generationsintervall<br />

ein weiterer positiver Effekt, der zu einer Steigerung der Selektionseffizienz beitragen kann<br />

(Blonk, 2010). Sollte sich die Vermutung einer positiven Beziehung zwischen frühem<br />

Reifebeginn und einer gesteigerten Wachstumsrate in weiterführenden Studie bewahrheiten,<br />

kann das Alter bei Beginn der Geschlechtsreifung als ein potentielles Selektionskriterium in<br />

der Steinbuttzucht angesehen werden. Das Einsetzten der Geschlechtsreifung kann am<br />

Anschwellen der Bauchhöhle erkannt werden. Zur eindeutigeren Bestimmung des Reifegrads<br />

der Tiere bedarf es jedoch einer Untersuchung der Gonaden mittels Ultraschall oder<br />

Histologie.<br />

Abbildung II: Schematische Darstellung der Beziehung zwischen Wachstum (Körpergewicht / Alter) und dem Alter bei<br />

Einsetzen der Geschlechtsreife (abgeleitet von Blonk, 2010; Taranger et al., 2010). Die parallel zur y-Achse verlaufende,<br />

gepunktete Linie stellt das Gewicht bei Markt- bzw. Schlachtgröße dar. Es wird gezeigt, dass die Marktgröße das<br />

Verbesserungspotential des Wachstums definiert, z. B. durch genetische Selektion.<br />

77


Versuchsdurchführung und Organisation<br />

Steinbutt-Populationen<br />

Als Versuchstiere dienten 5.986 Steinbutte, die aus zwei Fischzuchten stammten: 3.423 aus<br />

Norwegen und 2.563 aus Island. Die Fische sollten einheitlich im Alter und unselektiert sein<br />

sowie die Populationen hinsichtlich ihrer Verwandtschaftsstrukturen möglichst umfassend<br />

widerspiegeln.<br />

Es stand <strong>für</strong> den Erwerb von künstlich reproduzierten Steinbutten nur eine sehr begrenzte<br />

Anzahl von Farmen zur Verfügung. Vor allem kleinere Farmen konnten die benötigte Menge<br />

an Fischen nicht liefern oder benötigten ihre Nachzucht <strong>für</strong> den Eigenbedarf. Erschwerend<br />

kam hinzu, dass viele Erzeugerbetriebe keine Informationen über die verwendeten Elterntiere<br />

preisgeben und die Reproduktionszyklen nicht betriebsübergreifend synchron sind (Arfsten,<br />

2010).<br />

Aufgrund dieser Beschaffungsprobleme konnte das bei der Versuchsplanung anvisierte<br />

einheitliche Alter der Fische nicht im gewünschten Ausmaß realisiert werden. Die aus<br />

Norwegen stammenden Tiere waren zwei Monate älter als die isländischen. Dies bedingte<br />

eine größere Variation im Stückgewicht zu Versuchsbeginn, das zwischen 9,6 g und 168,4 g<br />

lag. Altersunterschiede in dieser Größenordnung treten häufig aus ähnlichen Gründen bei<br />

vergleichenden Populationsstudien in der Aquakultur auf (Imsland et al, 2001; Rutten et al.,<br />

2005; Arfsten, 2010; Blonk et al., 2010). Aufgrund der Altersunterschiede erforderte der<br />

Vergleich der Populationen hinsichtlich der verschiedenen Leistungsmerkmale wie<br />

Wachstumsentwicklung und Schlachtkörperwert eine Korrektur. Deshalb wurde <strong>für</strong> den<br />

Vergleich der Wachstumsentwicklung das Alter synchronisiert. Dadurch entstand <strong>für</strong> den<br />

Leistungsvergleich beider Herkünfte ein neunmonatiges Zeitfenster, in dem die Fische das<br />

gleiche Alter hatten. Für den Vergleich der Schlachtkörperwerte zwischen den Populationen<br />

erfolgte eine Korrektur um das Alter. Statistische Korrekturen von Effekten wie Alter,<br />

Körpergewicht, Körperlänge oder Herkunft sind übliche Vorgehensweisen in<br />

78


Aquakulturstudien und wurden in verschiedenen Arbeiten durchgeführt (Rutten et al., 2005;<br />

Arfsten et al., 2010; Gjedrem, 2010).<br />

Optimale Versuchsbedingungen hätten eine gleichzeitige Erbrütung und Aufzucht beider<br />

Steinbuttpopulationen unter identischen Umweltbedingungen bedeutet, um mögliche<br />

verzerrende Umwelteinflüsse zu vermeiden. Denn Unterschiede in den Haltungsumwelten, z.<br />

B. in Form von Temperatur, Licht und Fütterung während der Inkubationszeit und des<br />

Larvenstadiums, können das Leistungspotential der Fische beeinflussen (Holmefjord et al.,<br />

1993; Jonassen et al., 2000; Gjedrem, 2010).<br />

Unter den praxisbezogenen Verhältnissen des hier vorgestellten Versuchs mit annähernd<br />

6.000 Fischen, die aus zwei Ländern importiert und unter kommerziellen Bedingungen<br />

gehalten wurden, waren diese Ansprüche nicht zu erfüllen und sind selbst in einem klein<br />

angelegten Labormaßstab kaum umsetzbar.<br />

Weiterhin bestand mit den Farmen die Übereinkunft, dass diese Steinbutt-Nachkommen aus<br />

jeder vorgenommenen Anpaarung eines bestimmten Zeitfensters schicken schicken. Damit<br />

sollten die Leistungs- und Verwandtschaftsstrukturen der beiden Populationen umfassend<br />

abgebildet werden. Jedoch stellte sich heraus, dass diese Vereinbarung bei den norwegischen<br />

Fischen nicht eingehalten wurde, zumal im Rahmen der Genotypisierung lediglich eine<br />

Mutter und zwei Väter ermittelt werden konnten. Diese engen Verwandtschaftsverhältnisse<br />

erschweren spätere Schätzungen von genetischen Parametern.<br />

Haltungsbedingungen<br />

Gehalten wurden die Tiere unter praxisnahen Bedingungen in einem<br />

Seewasserkreislaufsystem bei der „Gesellschaft <strong>für</strong> Marine Aquakultur (GMA)“ in Büsum.<br />

Das Haltungssystem bestand aus 20 zylindrischen Becken mit einem gesamten<br />

Haltungsvolumen von 50 m 3 .<br />

79


Zu Studienbeginn wurden die Fische beider Herkünfte gemischt und entsprechend ihrer Größe<br />

auf die Becken verteilt, um den sogenannten „Beckeneffekt“ zu minimieren (Gjedrem, 2010).<br />

Aufgrund der hohen Tierzahl und der begrenzten Haltungskapazität der Anlage mussten in<br />

regelmäßigen Abständen Fische aus dem Versuch genommen werden. Die Auswahl dieser<br />

Fische erfolgte per Zufall mit Hilfe eines Computerprogramms, das die Aufrechterhaltung der<br />

Gewichtsverteilung der Fische in den Populationen berücksichtigte. Am Ende der Studie hatte<br />

sich die Tierzahl auf fast ein Drittel reduziert. Zusätzlich wurden Fische entnommen, die das<br />

zuvor festgelegte Maximalgewicht von 1500 g überschritten oder in der zweiten<br />

Versuchshälfte ein Mindestgewicht von 200 g nicht erreicht hatten. Aus zwei Gründen des<br />

Haltungsmanagements ließ sich die Einführung eines Mindestgewichts als Selektionsgrenze<br />

nicht umgehen: zum einen waren nur wenige Fische betroffen, mit denen nicht der Platz eines<br />

Beckens blockiert werden konnte; zum anderen war eine Verteilung auf andere Becken nicht<br />

möglich, da die Tiere dort bereits wesentlich größer waren. Hinzu kam, dass die größeren<br />

Fische größere Futterpellets erhielten, die die kleinen Fische nicht fressen konnten. Eine sich<br />

daraus ergebende Beeinflussung des durchschnittlichen Leistungspotentials kann nicht<br />

ausgeschlossen werden, da nur eine geringe Zahl von Tieren betroffenen war sollte diese<br />

jedoch klein ausfallen.<br />

Für einen Praxisversuch dieser Größenordnung waren die Haltungsbedingungen ideal.<br />

Einflüsse auf die Entwicklung der Fische durch Umwelt- und Fütterungseffekte können als<br />

gering eingestuft werden, zumal die Fische in zwei identisch aufgebauten Kreislaufmodulen<br />

gehalten wurden. Diese Module befanden sich in einer Halle und waren somit den gleichen<br />

Umwelteinflüssen (Licht, Temperatur usw.) ausgesetzt. Eine Überprüfung der<br />

Wassertemperaturen und -parameter wurde täglich durchgeführt.<br />

Zusätzlich erfolgte die Fütterung konstant zweimal täglich zur gleichen Zeit entsprechend der<br />

Biomasse mit einem kommerziellen Steinbuttfutter. Die Zusammensetzung des Futters war<br />

80


während des gesamten Versuchs <strong>für</strong> alle Fischgrößen einheitlich und variierte lediglich in der<br />

Pelletgröße, da diese an die heranwachsenden Fische angepasst werden musste.<br />

Mit 0,7 % war die Mortalitätsrate sehr niedrig und deutet auf einen günstigen Hygienestatus<br />

während des Versuchs, sowie einen guten Gesundheits- und Konditionszustand der Fische<br />

hin.<br />

Schlussfolgerung<br />

In dieser Arbeit konnte gezeigt werden, dass die intraabdominale Implantation eines PIT-tags<br />

eine einfache und sichere Methode ist Steinbutt individuell zu markieren. Die Kombination<br />

des RFID (Radio Frequency Identification) Systems mit dem Bildanalyseverfahren erwies<br />

sich als eine praktikable Form der routinemäßigen Erfassung von Leistungsdaten beim<br />

Einzelfisch, da die anhand der Bildanalyse erfassten Körpermaße (Fläche, Länge, Breite und<br />

Dicke), eine exakte Vorhersage des Körper- und Filetgewichts ermöglichen. Diese Technik<br />

eignet sich besonders <strong>für</strong> wissenschaftliche Studien. Für einen Einsatz in der Praxis bedarf es<br />

jedoch zuvor einer eingehenden Kosten-Nutzen-Analyse sowie einer Vollautomatisierung der<br />

Datenerfassung.<br />

Des Weiteren konnten anhand der ermittelten Unterschiede in der Wachstumsleistung und<br />

dem Alter zu Beginn der Geschlechtsreifung zwischen den Populationen, neue Perspektiven<br />

<strong>für</strong> die Steinbuttzucht aufzeigt werden. Durch die Nutzung weiblicher Monosexpopulationen<br />

und die Zucht auf ein frühes Einsetzen der Geschlechtsreifung kann die Produktionseffizienz<br />

gesteigert werden, da die weiblichen Tiere zum Zeitpunkt der Geschlechtsreifung die beste<br />

Wachstumsleistung zeigten.<br />

81


AUSBLICK<br />

Der weltweit am schnellsten wachsende Sektor im Lebensmittelbereich ist die Aquakultur. Ihr<br />

globales Produktionsvolumen wird auf 46 Millionen Tonnen pro Jahr geschätzt mit einem<br />

Verkaufswert von 43 Milliarden Euro (Tacon, 2003).<br />

Von der gesamten Produktion stammen weniger als 5 % der Fische aus züchterisch<br />

bearbeiteten Beständen (Gjedrem, 2005). Dies kann in erster Linie auf die immense<br />

Artenvielfalt in der Aquakultur zurückgeführt werden. Den im Wesentlichen fünf<br />

bedeutenden Nutztierarten in der Landwirtschaft (Rind, Schwein, Huhn, Schaf und Pferd),<br />

stehen etwa 200 in der Aquakultur genutzte Fischarten gegenüber (Sonesson, 2007a). Bei den<br />

landwirtschaftlichen Nutztieren ist sowohl das Fachwissen als auch die praktische Erfahrung<br />

in der Anwendung genetischer Methoden sehr weit fortgeschritten. Dieses Wissen findet<br />

breiten Einsatz in modernen Zuchtprogrammen (wie z. B. der marker-gestützten Selektion<br />

(MAS)) und steht in Form von Leistungsprüfungs- und Pedigreedaten, QTL-Karten<br />

(quantitative trait loci, QTL), Genomsequenzen und SNP-Chips (single-nucleotide<br />

polymorphism, SNP) zur Verfügung (Andersson und Georges, 2004). Im Gegensatz dazu<br />

existieren nur <strong>für</strong> sehr wenige Fischarten Zuchtprogramme, <strong>für</strong> die dieses Wissen zumeist<br />

nicht vorhanden ist. In einigen Arten, wie dem Nil-Tilapia, dem Kanalwels und der Black-<br />

Tiger-Garnele werden zum Teil großangelegte Zuchtprogramme auf Basis von Leistungs- und<br />

Pedigreedaten durchgeführt, sowie an QTL-Kartierungen gearbeitet (Korol et al., 2007;<br />

Sonesson, 2007a; Massault et al., 2008).<br />

Gegenwärtig wird der marker-gestützten Selektion (MAS) ein großes Potential zugesprochen,<br />

Zuchtfortschritt in der Fischzucht rapide steigern zu können (Liu und Cordes, 2004, Sonesson,<br />

2007a). Besonders interessant ist sie <strong>für</strong> die züchterische Bearbeitung von Merkmalen, die nur<br />

schwer oder gar nicht am lebenden Zuchtkandidaten erhoben werden können wie<br />

Krankheitsresistenz, Filetqualität, Futterverwertung und Fruchtbarkeit (Sonesson, 2007a).<br />

82


Im Wesentlichen beruht die MAS auf der Nutzung von molekular genetischen Markern <strong>für</strong><br />

die Selektion von Elterntieren. Bei den verwendeten Markern handelt es sich um auf<br />

Kopplung mit interessanten Genvarianten positiv getestete (Gjedrem, 2010). Somit ist die<br />

QTL-Kartierung relevanter Merkmale eine essentielle Voraussetzung <strong>für</strong> die MAS (Gjedrem,<br />

2010; Sonesson, 2007a; Sonesson, 2007b).<br />

Erste Anwendung findet die MAS bereits beim Atlantischen Lachs und der<br />

Regenbogenforelle (Sonesson, 2007a; Sonesson, 2007b). Da <strong>für</strong> diese Fischarten das<br />

notwendige genomische Wissen (z. B. Genomsequenzen, QTL-Karten und SNP-Chips)<br />

verfügbar ist, stellt die Anwendung der MAS somit eine Ausnahme in der Aquakultur dar<br />

(Dominik et al., 2010).<br />

Durch die in den letzten Jahren entwickelte Hochdurchsatz-Sequenzierung („next generation<br />

sequencing“) konnten aufgrund der gesteigerten Sequenzierleistung die Kosten pro<br />

Sequenzierlauf auf ca. ein Hundertstel reduziert werden. Die neue Technik erlaubt es mittels<br />

massiver Parallel-Sequenzierung, Millionen von DNS-Fragmenten in einem einzigen Lauf zu<br />

sequenzieren (Ropers und Ullmann, 2007). Vor diesem Hintergrund kann die MAS auch <strong>für</strong><br />

Fischarten mit geringerer ökonomischer Bedeutung bzw. geringeren Produktionsmengen an<br />

Bedeutung gewinnen. Von zukünftigem Interesse könnte die Technik <strong>für</strong> Fischarten wie der<br />

Meerbrasse, dem Karpfen, der Seezunge und dem Steinbutt sein, da bei diesen intensiv an der<br />

Generierung genomischer Informationen gearbeitet wird (Massault et al., 2008; Blonk et al.,<br />

2010; Xiaohong et al., 2010; Sánchez-Molano et al., 2011). Dabei leistet das <strong>Institut</strong> <strong>für</strong><br />

<strong>Tierzucht</strong> und Tierhaltung der Christian-Albrechts-Universität zu Kiel seit einigen Jahren<br />

einen Beitrag <strong>für</strong> den Zuchtfortschritt beim Steinbutt. In diesem Rahmen entstand die<br />

vorliegende Arbeit und sind weiterführende Untersuchungen geplant:<br />

In der vorliegenden Arbeit wurde neben einer individuellen Leistungsprüfung eine<br />

Genotypisierung zur Rekonstruktion des Pedigrees <strong>für</strong> jeden Fisch durchgeführt. Da<strong>für</strong> wurde<br />

eine optimierte Variante des von Arfsten (2010) vorgestellten Markersets <strong>für</strong> die<br />

83


Elternzuordnung beim Steinbutt verwendet. Auf Basis dieser Pedigree- und<br />

Leistungsprüfungsdaten sollen genetische Parameter (Heritabilitäten und Korrelationen) <strong>für</strong><br />

verschiedene ökonomisch relevante Leistungsmerkmale wie Wachstum, Filetgewicht und<br />

Filetanteil beim Steinbutt berechnet werden sowie die genetischen Korrelationen dieser mit<br />

verschiedenen Körpermaßen. Für die Merkmale, die aufgrund einer hohen Heritabilität ein<br />

großes Selektionspotential aufweisen, sollen in einer anschließenden Studie weitere<br />

Leistungsdaten erfasst werden sowie eine weitere Schätzung der genetischen Parameter<br />

erfolgen. Geplant ist, diesen Versuch wieder in der Gesellschaft <strong>für</strong> Marine Aquakultur<br />

(GMA) in Büsum durchzuführen mit einem Tierbestand aus mehreren tausend Steinbutten<br />

von unterschiedlichen kommerziellen Farmen. Die Gesamtheit der in beiden Versuchen<br />

erfassten Leistungs- und Pedigreedaten erfüllen zusammen mit den in der Literatur<br />

beschriebenen Mikrosatelliten die Voraussetzung <strong>für</strong> die geplante QTL-Kartierung der als<br />

relevant ermittelten Leistungsmerkmale und Körpermaße beim Steinbutt. Erste QTL-<br />

Analysen wurden beim Steinbutt bereits <strong>für</strong> die Merkmale Körpergewicht und -länge sowie<br />

dem Fulton´schen Konditionierungsfaktor durchgeführt (Sánchez-Molano et al., 2011).<br />

84


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91


ALLGEMEINE ZUSAMMENFASSUNG<br />

Der Steinbutt ist ein Plattfisch mit bedeutendem ökonomischen Wert und bedient als<br />

exklusives Produkt vorwiegend Nischenmärkte. Aufgrund der starken Nachfrage stieg die<br />

Produktion in Europa von 53 Tonnen im Jahr 1985 auf 11.000 Tonnen im Jahr 2010.<br />

Maßgebend <strong>für</strong> die Effizienz der Produktion ist ein schnelles und homogenes Wachstum der<br />

Steinbutte. Allerdings variieren die kommerziell gehaltenen Steinbutte aufgrund der kurzen<br />

Domestikationsgeschichte und des ausgeprägten Geschlechtsdimorphismus stark in ihrem<br />

Wachstum. Daraus resultiert das Interesse an einer genetischen Verbesserung von<br />

kommerziell gehaltenem Steinbutt mithilfe moderner Zuchtprogramme.<br />

Planmäßig durchgeführte Selektions- bzw. Zuchtprogramme, die auf der Zuchtwertschätzung<br />

gründen, müssen <strong>für</strong> jede Art individuell entwickelt werden. Insbesondere basieren sie auf der<br />

tierindividuellen Erfassung phänotypisch relevanter Parameter (Leistungsprüfungen), der<br />

Kenntnis über den Verwandtschaftsstatus (Pedigree) eines Tieres und der Schätzung von<br />

genetischen Parametern (Heritabilitäten und Korrelationen von Merkmalen). Dabei soll durch<br />

eine gezielte Nutzung genetischer Information das Tiermaterial verbessert werden.<br />

Das Ziel dieser Arbeit ist die Erfassung und Bewertung von tierindividuellen<br />

Leistungsmerkmalen als Voraussetzung <strong>für</strong> die Entwicklung einer Zuchtwertschätzung beim<br />

Steinbutt.<br />

In Kapitel 1 wird die Möglichkeit der Markierung von Steinbutten mittels PIT-tags <strong>für</strong> die<br />

Erfassung individueller Leistungsdaten beschrieben. Da<strong>für</strong> wurde ein Protokoll <strong>für</strong> eine<br />

individuelle Markierung von Steinbutt mittels einer intraabdominalen Implantation von PITtags<br />

erstellt und die Auswirkungen dieses Eingriffs auf die Fischgesundheit untersucht. Eine<br />

Mortalitätsrate von unter 0,2 %, das Ausbleiben von Sekundärerkrankungen und<br />

intraabdominalen Entzündungen sowie Wachstumsdepressionen innerhalb der ersten 122<br />

Tage nach dem Eingriff zeigen die gesundheitliche Verträglichkeit dieser<br />

92


Markierungsmethode. Zudem funktionierte die Technik fehlerfrei. Während des gesamten<br />

Versuchszeitraums konnten keine tag-Verluste oder Auslesefehler festgestellt werden.<br />

In Kapitel 2 wird die Möglichkeit der Schätzung des Körper- und Filetgewichts sowie des<br />

Filetanteils am lebenden Steinbutt auf Basis der per Bildanalyse erfassten Körperform<br />

untersucht. Eine Genauigkeit von annähernd 100 % <strong>für</strong> die Vorhersage des Körper- und<br />

Filetgewichts kann mit einem Regressionsmodell, das die Körpermaße Länge, Fläche, Breite<br />

und Dicke beinhaltet, erzielt werden. Die Körperfläche allein erklärt 96 % und 94 % der<br />

Varianz im Körper- und Filetgewicht und wäre somit <strong>für</strong> eine einfachere, routinemäßige<br />

Datenerfassung unter Praxisbedingungen ausreichend. Im Gegensatz dazu konnte aufgrund<br />

der niedrigen Korrelationen zwischen den Körpermaßen und dem Filetanteil dieser nicht<br />

adäquat anhand der Körperform vorhergesagt werden.<br />

In Kapitel 3 wird ein phänotypischer Vergleich zwischen Steinbutten einer norwegischen und<br />

einer isländischen Herkunft hinsichtlich ihrer Wachstums- und Schlachtkörperleistung<br />

durchgeführt. Außerdem werden die Auswirkungen des Sexualdimorphismus auf diese<br />

Merkmale sowohl innerhalb als auch zwischen den Populationen analysiert. Beide Herkünfte<br />

unterschieden sich deutlich in ihrer Wachstumsleistung, die norwegischen Steinbutte wuchsen<br />

im Durchschnitt signifikant besser als die isländischen Tiere. Zudem setzte bei den<br />

norwegischen Steinbutten ab dem 18. Lebensmonat die Geschlechtsreifung ein. Diese leitet<br />

die Ausprägung des sexualen Dimorphismus ein und führte zu einer höheren<br />

Wachstumsleistung bei den Weibchen. Im Gegensatz dazu gab es keine<br />

geschlechtsspezifischen Unterschiede im Wachstum innerhalb der isländischen Population.<br />

Des Weiteren konnte ein Einfluss des sexualen Dimorphismus bzw. der Geschlechtsreifung<br />

auf den Filetanteil gezeigt werden. Im Durchschnitt war dieser bei den norwegischen<br />

Männchen 1,4 % höher als bei den norwegischen Weibchen. Zwischen den Geschlechtern<br />

innerhalb der isländischen Steinbutte wurden dagegen keine signifikanten Abweichungen<br />

93


festgestellt. Insgesamt hatten die am schnellsten wachsenden Fische den höchsten Filetanteil.<br />

Den größten Anteil schnell wachsender Tiere hatte die Gruppe der norwegischen Weibchen.<br />

Die Ergebnisse dieser Arbeit und die gewonnenen Erkenntnisse stellen eine Grundlage <strong>für</strong> die<br />

Erarbeitung der an die Leistungsprüfung anschließenden Zuchtprogrammschritte dar wie der<br />

Schätzung von genetischen Parametern sowie <strong>für</strong> die Etablierung einer Zuchtwertschätzung.<br />

94


GENERAL SUMMARY<br />

Turbot is a flatfish of high economic value. It is mainly served on exclusive niche markets.<br />

Due to growing demand, European production of turbot increased from 53 tons in 1985 to<br />

11,000 tons in 2010.<br />

The efficiency of fish production depends substantially on fast and uniform growth. However,<br />

individual body growth in turbot varies tremendously. Possible reasons could be the short<br />

domestication history and a strong sexual dimorphism. Therefore, genetic improvement of<br />

commercial farmed turbot through modern breeding programs would be desirable.<br />

Selection and breeding programs based on estimation of breeding values have to be developed<br />

species-specific. In particular, such programs require an individual recording of<br />

phenotypically relevant parameters (performance tests), knowledge about the relationship<br />

status (pedigree) and estimation of genetic parameters (heritabilities and correlations of traits).<br />

Overall, usage of genetic information shall enable the breeding program to improve the<br />

animal material.<br />

In the current study, individual performance traits of turbot were recorded and assessed in<br />

order to develop breeding value estimation.<br />

The application of PIT tags for identification of individual performance is described in<br />

chapter one. For individual marking of turbot a protocol was applied where PIT tags were<br />

implanted intraabdominally. Besides, effects of the intervention were assessed. A mortality<br />

rate


An accuracy of almost 100 % for prediction of body and fillet weight was achieved with a<br />

regression model using the body measurements length, area, width and thickness. Body area<br />

explained 96% and 94% of the observed variance in body and fillet weight, respectively, and<br />

is therefore sufficient for routine data recording under practical conditions. In contrast,<br />

adequate prediction of fillet yield by use of body shape was not possible, because of weak<br />

correlations between body measurements and fillet yield.<br />

In chapter three two strains of turbot were compared for growth performance and carcass<br />

value. Additionally, the effect of sexual dimorphism on these traits was analyzed within and<br />

between populations. Significant intrapopulation-specific differences in growth performance<br />

were found. On average, Norwegian turbot grew better than Icelandic. Furthermore, both<br />

origins diverged in age of beginning of maturity, which induces the development of sexual<br />

dimorphism. While there was a significant higher growth performance in Norwegian females<br />

compared with Norwegian males from 18 month post hatch, no sexual differences in growth<br />

were found between Icelandic fish. An effect of sexual dimorphism on fillet yield was<br />

observed as well. On average, fillet yield was 1.4% higher in male fish from Norway<br />

compared to female fish. In contrast, no variations were found between sexes of Icelandic<br />

fish. Overall, the fastet growing fish had the highest fillet yield. Norwegian females had the<br />

most proportion of fast growing fish.<br />

The results of this study may help to further develop a breeding program for turbot after<br />

performance test, such as the estimation of genetic parameters for breeding value estimation.<br />

96


DANKSAGUNG<br />

An dieser Stelle möchte ich den Menschen danken, die zur Umsetzung und zum Gelingen<br />

dieser Arbeit beigetragen haben.<br />

Mein besonderer Dank gilt Herrn Prof. Dr. Georg Thaller <strong>für</strong> die Überlassung des Themas,<br />

die gute wissenschaftliche Betreuung und die gewährleisteten Freiräume bei der Erstellung<br />

dieser Arbeit sowie <strong>für</strong> die Möglichkeit, meine Ergebnisse auf Tagungen im In- und Ausland<br />

vorzustellen.<br />

Bei Herrn Prof. Dr. Carsten Schulz bedanke ich mich <strong>für</strong> die Übernahme des Korreferats.<br />

Für die finanzielle Unterstützung danke ich dem Ministerium <strong>für</strong> Wissenschaft, Wirtschaft<br />

und Verkehr des Landes Schleswig-Holstein sowie dem Zukunftsprogramm Wirtschaft.<br />

Der Firma Aller Aqua danke ich <strong>für</strong> das zur Verfügung gestellte Fischfutter.<br />

Bei Herrn Dr. Jens Tetens bedanke ich mich <strong>für</strong> die gute fachliche Betreuung und die<br />

fortwährende Hilfsbereitschaft und Unterstützung bei der Erstellung der Arbeit.<br />

Für die große Hilfe und Unterstützung im Labor danke ich Helmut Kluding, Gabrielle Ottzen,<br />

Fabian Neumann und Julia Becker, ohne sie wäre die Bearbeitung eines solchen<br />

Probenumfangs nicht zu bewältigen gewesen.<br />

Ein großes Dankeschön geht auch an die Mitarbeiter „Gesellschaft <strong>für</strong> Marine Aquakultur“ in<br />

Büsum <strong>für</strong> die nette Zusammenarbeit und die gute Betreuung der Fische.<br />

Darüber hinaus danke ich allen Kollegen <strong>für</strong> die unermüdliche Hilfe bei den über viele Tage<br />

andauernden Steinbutt-Schlachtungen.<br />

Besonders danke ich meiner Mutter, die mich stets in allen Lebenslagen unterstützt hat.<br />

Mein größter Dank gilt Dir, Hanno, <strong>für</strong> den Rückhalt und den uneingeschränkten Glauben an<br />

mich.<br />

97


LEBENSLAUF<br />

Name:<br />

<strong>Sophie</strong> Gerda Luise <strong>Oesau</strong><br />

Geburtsdatum: 13. Juni 1983<br />

Geburtsort:<br />

Bad Oldesloe<br />

Familienstand:<br />

ledig<br />

Staatsangehörigkeit:<br />

deutsch<br />

Schulausbildung<br />

1990 – 1994 Friedrich-Ebert-Grund- und Hauptschule, Preetz<br />

1994 – 2000 Theodor-Heuss-Realschule, Preetz<br />

2000 – 2003 Fachgymnasium, Preetz<br />

Studium<br />

02/2003 – 06/2008 Bachelorstudiengang Agrarwissenschaften an der<br />

Christian-Albrechts-Universität zu Kiel<br />

Abschluss: Bachelor of Science Agrar<br />

10/2008 – 02/2010 Masterstudiengang Agrarwissenschaften an der<br />

Christian-Albrechts-Universität zu Kiel<br />

Abschluss: Master of Science Agrar<br />

Berufliche Tätigkeit<br />

seit 02/2010<br />

Wissenschaftliche Mitarbeiterin am <strong>Institut</strong> <strong>für</strong> <strong>Tierzucht</strong><br />

und Tierhaltung der Christian-Albrechts-Universität<br />

zu Kiel bei Herrn Prof. Dr. G. Thaller<br />

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