89-91 - Polskie Stowarzyszenie Biomateriałów
89-91 - Polskie Stowarzyszenie Biomateriałów
89-91 - Polskie Stowarzyszenie Biomateriałów
Create successful ePaper yourself
Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.
244<br />
adhezja komórek<br />
staphylococcus epidermidis<br />
na powierzchni stopu ti6al4v<br />
modifikowanych warstwami<br />
bioceramicznymi<br />
BeLcarz a. 1 *, BieniAś J. 2 , surowskA B. 2 , ginAlskA g. 1<br />
1 katedra i zakład BioCHeMii,<br />
uniwersytet medyczny w lublinie,<br />
ul. CHodźki 1, 20-093, luBlin,<br />
2 katedra inżynierii MateriałoWej,<br />
Wydział MeCHaniCzny, PoliteCHnika luBelska,<br />
ul. nAdbystrzyckA 36, 20-618 lublin,<br />
mAilto: AnnA.belcArz@umlub.pl<br />
[Inżynieria <strong>Biomateriałów</strong>, <strong>89</strong>-<strong>91</strong>, (2009), 244-246]<br />
wstęp<br />
Tytan i jego stopy, jako materiał do produkcji implantów,<br />
jest odporny na korozję, niealergizujący i stosunkowo<br />
nietoksyczny, natomiast dość podatny na zużycie ścierne.<br />
Pokrywanie ich powierzchni warstwą azotku tytanu powoduje<br />
zwiększenie jego oporności na ścieranie i nie wywołuje<br />
efektów alergicznych [1]. Jednakże na powierzchni zarówno<br />
tytanu jak i powierzchni modyfikowanych azotkiem tytanu<br />
obserwuje się znaczącą adhezję komórek bakteryjnych [2]<br />
co może spowodować powstanie biofilmu bakteryjnego.<br />
Postępowanie w przypadku opanowanego przez biofilm<br />
implantu wiąże się z jego usunięciem, z agresywną kuracją<br />
ogólnosystemową przy użyciu silnych antybiotyków,<br />
a czasem nawet z koniecznością amputacji kończyny. W<br />
celu zapobieżenia infekcjom bakteryjnym, podejmowane<br />
są próby modyfikacji powierzchni implantów tytanowych<br />
substancjami o aktywności antybakteryjnej takimi jak antybiotyki<br />
[3] lub warstwami zmniejszającymi ryzyko adhezji<br />
bakteryjnej [4,5].<br />
W prezentowanej pracy przetestowano implanty ze stopu<br />
tytanu Ti6Al4V modyfikowane warstwami TiN, SiO 2-TiO 2<br />
oraz hydroksyapatytu (HAp). HAp zwiększa bioaktywność<br />
układu, a warstwa tlenków stabilizuje ich przyczepność do<br />
implantu. Celem pracy było określenie, czy tak wprowadzone<br />
modyfikacje stopów tytanowych sprzyjają czy też<br />
zapobiegają adhezji bakteryjnej i tworzeniu biofilmu przez<br />
szczep S. epidemidis.<br />
materiały i metody<br />
Przedmiot badań stanowiły warstwy TiN, SiO 2-TiO 2 i HAp<br />
na stopie tytanu Ti6Al4V (ASTM-grade 5) wytwarzane metodą<br />
hybrydową. Warstwę TiN nałożono techniką azotowania<br />
jarzeniowego (temp. 800 o C, ciśnienie 4hPa, czas procesu<br />
3h). Następnie próbki dwukrotnie pokryto warstwą SiO 2-TiO 2<br />
techniką zol-żel (obróbka cieplna warstwy w temp. 500 o C).<br />
Warstwę zewnętrzną stanowił hydroksyapatyt (Chema-<br />
Elektromet Co, Rzeszów) naniesiony metodą elektroforezy<br />
i wygrzewany w 750 o C.<br />
Oceny adhezji komórek bakteryjnych i tworzenia biofilmu<br />
dokonano na odtłuszczonych płytkach (12x7mm) wysterylizowanych<br />
tlenkiem etylenu. Płytki inkubowano przez<br />
72h (37 o C) w warunkach stacjonarnych z 15 ml sterylnego<br />
podłoża Mueller-Hinton z dodatkiem 100μl inokulatu S. epidermidis<br />
ATCC 12228 (10 8 cfu/ml). Następnie płytki przemyto10-krotnie<br />
PBS, a komórki pozostałe na powierzchni płytek<br />
adhesion of<br />
staphylococcus epidermidis<br />
cells on ti6al4v titanium<br />
alloy surfaces modified by<br />
bioceramic layers<br />
BeLcarz a. 1 *, BieniAś J. 2 , surowskA B. 2 , ginAlskA g. 1<br />
1 cHAir And depArtment of biocHemistry,<br />
medicAl university of lublin,<br />
1 CHodźki str., 20-093, luBlin, Poland<br />
2 depArtment of mAteriAls enGineerinG,<br />
lublin university of tecHnoloGy,<br />
36 nAdbystrzyckA str., 20-618 lublin, polAnd<br />
mAilto: AnnA.belcArz@umlub.pl<br />
[Engineering of Biomaterials, <strong>89</strong>-<strong>91</strong>, (2009), 244-246]<br />
introduction<br />
Titan and its alloys, as materials for production of<br />
implants, are corrosion-resistant, non-allergenic and relatively<br />
non-toxic; however, it is quite susceptible to abrasion.<br />
Modification of its surfaces by titanium nitride increases its<br />
abrasion resistance and allows to avoid allergenic effects [1].<br />
However, on both titanium alloy and titanium nitride-modified<br />
surfaces, a massive bacterial adhesion tends to appear [2]<br />
which may result in bacterial biofilm formation. A removal of<br />
infected implant is combined with its replacement, systemic<br />
aggressive antibiotic therapy and sometimes results even<br />
with limb amputation. To avoid such a risk, titanium implant<br />
surfaces can be modified with substances of antibacterial<br />
activity (as antibiotics) [3] or by layers decreasing the risk<br />
of bacterial adhesion [4,5].<br />
In presented work, Ti6Al4V titanium alloy implants modified<br />
by layers of TiN, SiO 2-TiO 2 and hydroxyapatite (HAp)<br />
were tested. HAp increases bioactivity of substrate and<br />
oxides stabilize hydroxyapatite attachment to the implant<br />
surface. The aim of the work was to test whether the titanium<br />
implants modifications favour or prevent S. epidermidis<br />
adhesion and biofilm formation.<br />
materials and methods<br />
TiN, SiO 2-TiO 2 and HAp layers on Ti6Al4V titanium<br />
alloy (ASTM-grade 5) produced by hybrid method were<br />
investigated. TiN layer on Ti6Al4V was manufactured by<br />
glow-discharge, assisted by nitriding in pure nitrogen atmosphere<br />
(at a temperature 800 o C and 4hPa pressure for<br />
3h). Next, the specimens were twice precovered with the<br />
SiO 2-TiO 2 sol-gel layer (heat treated of the layer at 500 o C).<br />
Finally, hydroxyapatite (Chema-Elektromet Co, Rzeszów)<br />
produced by electrophoresis method was deposited and<br />
annealed at 750 ş C.<br />
Estimation of bacterial adhesion and biofilm formation<br />
was prepared on clean plates (12x7 mm) sterilized by ethylene<br />
oxide. Plates were incubated for 72h (37 o C) under stationary<br />
conditions with 15 ml sterile Mueller-Hinton medium<br />
containing 100μl S. epidermidis ATCC 12228 (10 8 cfu/ml)<br />
inoculate. Then, the plates were washed 10x with PBS, and<br />
remaining bacterial cells were incubated for 15 minutes in<br />
darkness with 50μl 0.9% NaCl containing 3μl/ml fluorescent<br />
dye (Live/Dead® BacLightTM Kit). Stained bacterial cells<br />
were observed in fluorescence microscope (Olympus BX41