18.02.2013 Views

89-91 - Polskie Stowarzyszenie Biomateriałów

89-91 - Polskie Stowarzyszenie Biomateriałów

89-91 - Polskie Stowarzyszenie Biomateriałów

SHOW MORE
SHOW LESS

Create successful ePaper yourself

Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.

228 [3]. Podstawowym problemem, dotyczącym wytwarzania stances, cells), but above all their durability and bioactivity<br />

materiałów membranowych jest nie tylko kontrola procesu<br />

rozdziału (substancji, komórek), ale przede wszystkim ich<br />

trwałość i bioaktywność w środowisku in vivo [4]. Materiały<br />

stosowane na membrany należeć mogą do grupy stabilnych<br />

polimerów (PTFE, e-PTFE,) lub polimerów biodegradowalnych<br />

(PGLA, PLLA, PCL). Z ta ostatnia grupą materiałów<br />

wiąże się wiele nadzieji spowodowanych możliwością licznych<br />

modyfikacji a także czasem ich degradacji i brakiem<br />

konieczności ponownej interwencji chirurgicznej. Wprowadzenie<br />

do osnowy resorbowalnego PLA nanohyroskyapatytu<br />

wpływa na osteokonduktywność kompozytu ale obniża jego<br />

wytrzymałość [5].<br />

Nowym rozwiązaniem w dziedzinie sterowanej regeneracji<br />

kości było zastosowanie materiałów membranowych<br />

przygotowywanych tuz przed implantacją tzw. membran<br />

in situ. Powierzchnię kompozytów PLA/n-HAP lub PLA/ β-<br />

TCP pokrywano tuż przed implantacją czynnikami wzrostu<br />

kości (BGF) lub nanoszono na nią płytki krwi połączone<br />

z czynnikiem BGF (ang. bone growth factor) [6, 7]. Niska<br />

powtarzalność metod nanoszenia bioaktywnych cząstek<br />

na powierzchnie powoduje ze nadal szuka się skuteczniej<br />

metody modyfikacji membran GBR. W tym zakresie<br />

korzystne wydaja się złożone kompozyty oparte o matryce<br />

bioresorbowalnych polimerów, w których jako fazy<br />

modyfikującej zastosować można resorbowalne włókna<br />

krótkie, które na etapie wytwarzania zostały wzbogacone<br />

w bioaktywne nanocząstki. Przykładem takich materiałów<br />

są kompozyty otrzymane w ramach niniejszej pracy; gdzie<br />

w osnową bioresorbowalnego polimeru, wprowadzano<br />

fazę modyfikującą w formie nanokompozytowych włókien<br />

krótkich modyfikowanych bioaktywnymi nanocząstkami<br />

ceramicznymi SiO 2 i HAp.<br />

materiały i metody<br />

Jako polimer który poddano modyfikacji włóknami nanokompozytowymi<br />

wybrano polikaprolakton (Sigma Aldrich) o<br />

masie cząsteczkowej 60 000Da. Włókna nanokompozytowe<br />

otrzymane w Katedrze Włókien Sztucznych na Wydziale<br />

Technologii Materiałowej i Wzornictwa Tekstyliów Politechniki<br />

Łódzkiej. Nanokompozyty włókniste otrzymano<br />

metodą na mokro stosując 3% wagowych nanododatku.<br />

Zastosowano dwa rodzaje nanonapełanicza: naturalny<br />

HAp o rozmiarze cząstek (d m)~40nm, oraz nanocząstki<br />

krzemionki SiO 2 (d m~5-10nm) (wielkości cząstek oznaczono<br />

metodą DLS). Kompozyty polimerowo włókniste otrzymano<br />

metoda odlewania, mieszając wcześniej rozdrobnione<br />

włókna PVA/HAp i PVA/SiO 2. Wielkość krótkich włókien<br />

nanokompozytowych wynosiła odpowiednio: HAp ok. 200-<br />

400 nm, SiO 2 ok. 350-400nm (oznaczone na podstawie<br />

obserwacji mikroskopowych). Zastosowano stały udzial<br />

włókien nanokompozytowych w osnowie PCL, który wynosił<br />

5%wag. Skutecznośc membrany sprawdzono w teście przepuszczalności<br />

–mierząc zmiany przewodnictwa jonowego<br />

cieczy przechodzącej przez membranę kompozytową. Zmiany<br />

strukturalne po wprowadzeniu fazy włóknistej badano<br />

stosując metody termicznej kolorymetrii różnicowej (DSC).<br />

Zmiany fizykochemiczne powierzchni kompozytów określano<br />

na podstawie badań zwilżalności powierzchni (DSA 10<br />

KRUSS) i zmian chropowatości powierzchni (Hommel Tester<br />

T1500). Porowatość materiału otrzymywano poprzez wypłukiwanie<br />

rozpuszczalnej w wodzie fazy włóknistej: PVA/HAp,<br />

PVA/SiO2.Kinetykę uwalniania nanocząstek bioaktywnych<br />

zbadano po inkubacji przez 7dni w SBF wykonując oznaczenia<br />

jonów wapnia fosforu lub krzemionki metodą ASA-<br />

ICP (ICP HP 4500). Mikrostrukturę powierzchni wielkość<br />

porów jak i porowatość powierzchni materiału określono na<br />

in in vivo conditions [4]. Materials used for membranes may<br />

belong to a group of stable polymers (PTFE, e-PTFE) or biodegradable<br />

polymers (PGLA, PLLA, PCL). The latter group<br />

is particularly promising because of its capability of various<br />

modifications, their degradation time and lack of necessity<br />

of a repeated surgery. Introduction of nano-hydroxyapatite<br />

into resorbable matrix of PLA influences osteoconductivity<br />

of the composite, but decreases its strength [5]. The<br />

novel solution in the field of guided bone regeneration was<br />

application of membrane materials prepared just before<br />

their implantation so called membranes in situ. Surface of<br />

PLA/n-HAp or PLA/β-TCP composites was covered just<br />

before the implantation with bone growth factors (BGF) or<br />

it was covered with blood platelet linked with BGF [6,7].<br />

Low repeatability of the method of spreading of bioactive<br />

molecules on the surface is a reason of a continuous search<br />

for an effective method of GBR membranes modification. In<br />

this respect, complex composites based on bioresorbable<br />

polymer matrix, filled with short resorbable fibres containing<br />

bioactive nanoparticles seem to be beneficial. An example<br />

of such materials is composites fabricated in this studies<br />

which consisted of a bioresorbable polymer matrix filled with<br />

short nanocomposite fibres modified with bioactive ceramic<br />

nanoparticles such as SiO 2 and HAp.<br />

materials and methods<br />

Polycaprolactone (PCL, Sigma-Aldrich) with molecular<br />

weight 60 000 Da was chosen as a composite matrix. The<br />

polymer matrix was modified with nanocomposite fibres<br />

made of polyvinyl alcohol containing 3 t.% of a nano-additive.<br />

The fibres were prepared using a wet method. Two types of<br />

nano-additives were used; HAp with a mean particle size<br />

(dm) ~ 40nm, and SiO 2 (dm ~ 5-10nm) (DLS method). Before<br />

introduction into the matrix the nanocomposite PVA fibres<br />

were mechanically ground in a vibration ball mill. The final<br />

form of the modifier was a mixture of two fractions; short<br />

fibres, particles of the fibres and the nano-additive, which<br />

were products of the nanocomposite fibres fragmentation.<br />

The mean size of the fibres fragmentation products (biopolymer<br />

particles, nano-additives) was between 220 and 300<br />

nm (DLS method, optical microscope). The polymer – fibres<br />

nanocomposites (5wt.% of nanocomposite fibres) were<br />

prepared using a casting method. The open porosity was<br />

obtained by washing out the PVA fibres in water. Permeability<br />

of the membranes was characterised by changes of ionic<br />

conductivity of salt solution passing through the membranes.<br />

The produced materials were subjected to thermal (DSC)<br />

and physicochemical investigations. Wettability of surface<br />

of the nanocomposite materials was determined by direct<br />

measurements (DSA 10 KRUSS). Roughness of the composite<br />

surface was determined by the surface profilometry<br />

technique (Hommel Tester T1500). The kinetics of release of<br />

bioactive nanoparticles was determined by incubation of the<br />

membranes for 7 days in SBF and measuring concentration<br />

of calcium and phosphate ions and silica with the ASA-ICP<br />

method (ICP HP 4500). Microstructure of the membranes<br />

surface, their porosity and pore size was determined on the<br />

basis of SEM observations (Joel 5400). A pure PCL foil was<br />

used as a reference material.<br />

results and discussion<br />

Introduction of the short nanocomposite fibres and products<br />

of their fragmentation increased roughness of the materials<br />

surface. The mean roughness profile was higher on<br />

the side of exposed fibres, than on the bottom side (FIG.1).

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!