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Untersuchungen zu extrazellulären Enzymen bei marinen ...

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Material und Methoden 18<br />

Nach der Auftrennung der Proteine durch die Elektrophorese wurde das Gel mit Aqua dest.<br />

gespült und anschließend 3 x 15 min <strong>bei</strong> 21 °C und 70 rpm auf einem Rotationsschüttler (New<br />

Brunswick Scientific innova 2300 Incubator Shaker) mit Zitronensäure-Phosphatpuffer (siehe<br />

Kap. 2.2.10.) gewaschen. Danach wurde dieser durch den Stärkepuffer (siehe Kap. 2.2.11.)<br />

ersetzt und das Gel <strong>bei</strong> gleichen Bedingungen für 1 h inkubiert. Anschließend wurde der<br />

Puffer abgegossen und das Gel gut mit Aqua dest. gespült, bis die anhaftende Stärke von der<br />

Oberfläche des Gels entfernt war. Die Färbung erfolgte in Lugolscher Lösung (siehe Kap.<br />

2.2.7.) für 2 min.<br />

Die Amylaseaktivitäts-Zonen sollten als helle Bereiche im dunkelblau angefärbten Gel<br />

erscheinen.<br />

2.3.4.3. Silbernitratfärbung der Proteine<br />

Die durch die SDS-PAGE aufgetrennten Proteine sollten nach der Amylase-Aktivitätsfärbung<br />

mit 0,1 %igem Silbernitrat nach Wiechmann (1993) angefärbt und detektiert werden. Alle<br />

Einzelschritte der Färbung erfolgten unter Schwenken des Gels auf einem Rotationsschüttler<br />

(New Brunswick Scientific innova 2300 Incubator Shaker) <strong>bei</strong> 80 rpm und RT.<br />

Zur Fixierung der Proteine wurde das Gel nacheinander für 30 min in Fixierer A (siehe Kap.<br />

2.2.13.1.), für 20 min in Fixierer B (siehe Kap. 2.2.13.2.) sowie für 20 min in Fixierer C<br />

(siehe Kap. 2.2.13.3.) inkubiert. Zum Waschen wurde das Gel mit 100 ml Aqua dest. mittels<br />

eines Folienschweißgerätes (Petra Electrinic vacufix electron FS500A) in eine Folie<br />

eingeschweißt und für mindestens 30 min inkubiert. Anschließend wurde eine Ecke der Folie<br />

aufgeschnitten, und es wurden 0,5 mg Dithiothreitol (DTT) in 1 ml Aqua dest.<br />

(Endkonzentration 5µg DTT/ml) <strong>zu</strong>gegeben. Die Folie wurde verschweißt und das Gel für 20<br />

min mit DTT <strong>zu</strong>r Reduktion der Proteine inkubiert. Erneut wurde eine Ecke der Folie<br />

aufgeschnitten und die DTT-Lösung durch 100 ml 0,1 %ige Silbernitat-Lösung ausgetauscht.<br />

Zur Anbindung der Silber-Ionen an die Proteine wurde das Gel für 20 min in der Silbernitrat-<br />

Lösung inkubiert. Danach wurde das Gel aus der Folie entnommen, mit Aqua dest. gespült<br />

und zweimal mit Entwickler (siehe Kap. 2.2.13.4.) überschichtet. Sobald eine gute Anfärbung<br />

der Proteinbanden <strong>zu</strong> erkennen war, wurde die Reaktion durch Zugabe von 2,3 M<br />

Zitronensäure-Lösung gestoppt. Anschließend wurde das Gel mit Aqua dest. gewaschen und<br />

in einer 0,03 %igen Na2CO3-Lösung für 10 min konserviert.

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