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Untersuchungen zu extrazellulären Enzymen bei marinen ...

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Material und Methoden 17<br />

Für die Proteinbestimmung wurden 50 µl Probe, 50 µl 2 M NaOH und 1 ml Bradford-<br />

Reagenz (siehe Kap. 2.2.8.) in ein Eppendorfcup gegeben und sofort auf einem Whirl-Mixer<br />

gemischt. Nach 90 s wurde die Absorption <strong>bei</strong> 595 nm in einem Photometer (Novaspec II<br />

Farmacia) in Kunststoff-Einmalküvetten gegen den Leerwert (entsprechendes Medium oder<br />

0,1 M Natrium-Phosphatpuffer) gemessen. Eine Eichkurve wurde mit Rinderserumalbumin<br />

(Stammlösung 0,1 mg/ml in 1 M NaOH) im Bereich von 0 bis 10 µg erstellt.<br />

2.3.4. Methoden <strong>zu</strong>r Auftrennung und Detektion von Proteinen<br />

2.3.4.1. SDS-Polyacrylamid-Gelelektrophorese (SDS-PAGE) (modifiziert nach Laemmli,<br />

1970)<br />

Zur Analyse der <strong>extrazellulären</strong> Amylase wurden die mit Ammoniumsulfat-gefällten Proteine<br />

mittels der SDS-PAGE aufgetrennt. Bei dieser Variante der Polyacrylamid-Gelelektrophorese<br />

wird das anionische Detergenz SDS (sodium dodecyl sulfate) benutzt. SDS überdeckt die<br />

Eigenladungen der Proteine, so dass Micellen mit konstanter negativer Ladung pro<br />

Masseneinheit entstehen. Dadurch werden <strong>bei</strong> dieser Methode die Proteine im Wesentlichen<br />

nach ihrer Größe aufgetrennt (Lottspeich & Zobras, 1998).<br />

Die Ammoniumsulfat-gefällten Proben (siehe Kap. 2.3.3.4.) wurden im Verhältnis 1:2 mit<br />

dem Probenpuffer (siehe Kap. 2.2.12.) versetzt. Auf die Zugabe von Disulfidbrücken-<br />

reduzierenden Substanzen und auf die Hitzedenaturierung der Proben wurde verzichtet, da<br />

dies <strong>zu</strong>m Verlust der Enzymaktivität führen würde.<br />

Die Auftrennung erfolgte in einer vertikalen XCell SureLock TM Novex Mini-Cell<br />

Elektrophoresekammer (Invitrogen). Als Laufpuffer diente der 1:20 verdünnte NuPAGE<br />

MOPS-SDS-Laufpuffer (Invitrogen). Als Proteinmarker wurde ein vorgefärbter PageRuler<br />

Marker (Fermentas) mit Molekulargewichten von 10 bis 170 kDa eingesetzt. Die Geltaschen<br />

des fertigen NuPAGE 12 % Bis-Tris Gels (Invitrogen) wurden mit 12 µl Probe bzw. 5µl<br />

Proteinmarker beladen. Die Auftrennung wurde <strong>bei</strong> 4 °C mit 150 V, 70 mA und 10 W für ca.<br />

90 min durchgeführt.<br />

2.3.4.2. Amylase-Aktivitätsfärbung im Gel nach SDS-PAGE (modifiziert nach Kim<br />

et al., 1995; Lacks & Springhorn, 1980)<br />

Mit der Amylase-Aktivitätsfärbung kann die Amylaseaktivität der Proteinbanden im Gel nach<br />

der SDS-PAGE nachgewiesen werden.

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