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Untersuchungen zu extrazellulären Enzymen bei marinen ...

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Material und Methoden 13<br />

Tab. 2.11.: Zusammenset<strong>zu</strong>ng des 2 x SDS-Probenpuffers<br />

Substanz Zugabe [µl] Endkonzentration im Puffer<br />

10 % (w/v) SDS 400 4 %<br />

1 % (w/v) Bromphenolblau 200 0,2 %<br />

87 % (w/v) Glycerin 230 20 %<br />

1 M Tris-HCl (pH 6,8) 170 170 mM<br />

2.2.13. Lösungen für die Silbernitratfärbung<br />

2.2.13.1. Fixierer A<br />

Zur Herstellung dieser Lösung wurden 50 ml Methanol mit 10 ml Eisessig vermischt und auf<br />

100 ml mit Aqua dest. aufgefüllt.<br />

2.2.13.2. Fixierer B<br />

Für die Herstellung von Fixierer B wurden 5 ml Methanol mit 7 ml Eisessig vermischt und<br />

auf 100 ml mit Aqua dest. aufgefüllt.<br />

2.2.13.3. Fixierer C<br />

Fixierer C ist eine 10 %ige wässrige Glutaraldehyd-Lösung.<br />

2.2.13.4. Entwickler<br />

Entwickler ist eine wässrige Lösung, die <strong>zu</strong> 3 % aus Na2CO3 und <strong>zu</strong> 0,0185 % aus<br />

Formaldehyd besteht.<br />

2.3. Methoden<br />

2.3.1. Hälterung der Organismen<br />

Die Reinkulturen der verschiedenen Stämme wurden in Petrischalen auf festem ASN-Medium<br />

(siehe Kap. 2.2.2.) von Dipl.-Biologin Annina Hube für diese Ar<strong>bei</strong>t <strong>zu</strong>r Verfügung gestellt.<br />

Zur Erhaltung von Stammkulturen wurde <strong>zu</strong>nächst von den einzelnen Reinkulturen etwas<br />

Zellmaterial mit einer Impföse von den Platten entnommen und in jeweils 30 ml flüssiges<br />

ASNIII/2-Medium mit 10 g/l Fleischextrakt in 50 ml Erlenmeyerkolben überführt. Nach zwei<br />

Tagen Inkubation auf einem Rotationsschüttler (New Brunswick Scientific innova 2300<br />

Incubator Shaker) <strong>bei</strong> 120 rpm und 21 °C wurden die Stämme durch Begutachten des<br />

mikroskopischen Bildes (Zeiss Jürgens Mikroskop) auf Reinheit überprüft. Anschließend

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