Genetische Untersuchung der Populationsstruktur ... - Die Schmellers

10 TABELLEN- UND ABBILDUNGSVERZEICHNIS
heitsmaß, FG= Freiheitsgrade, p= erreichtes Signifikanzniveau, b= partieller Korrelationskoeffizient,
p= erreichtes Signifikanzniveau. 81
Tabelle 7.2-17: Regressionsstatistik des Zusammenhangs zwischen der Höhendifferenz und Genflußparametern
bzw. den genetischen Distanzmaßen nach NEI und REYNOLDS. R= multipler Korrelationskoeffizient,
R²= Bestimmtheitsmaß, FG= Freiheitsgrade, p= erreichtes Signifikanzniveau,
b= partieller Korrelationskoeffizient, p= erreichtes Signifikanzniveau. 84
Tabelle 7.2-18: Teststatistik zur Analyse der Isolationswirkung des Rheins. Links bzw. rechts bezeichnet die
Spalte mit den Werten einer bestimmten Rheinseite; zwischen steht für Werte zwischen Population
unterschiedlicher Rheinseiten. Es wurde eine Analyse mit den genetischen Distanzen
nach NEI und nach REYNOLDS durchgeführt. Ferner wurden die FST-Werte, für je vier Populationen
berechnet, getestet. 86
Tabelle 7.2-19: Teststatistik zur Isolationswirkung einer Hügelkette der Haßberge. Prappach und Krum bezeichnen
die jeweiligen Nachbarschaften westlich und östlich der Hügelkette; zwischen steht
für die genetischen Distanzen zwischen diesen Gebieten. Der Test wurde nur mit NEI-
Distanzen durchgeführt. 86
Tabelle 7.2-20: Mittlere genetische Distanzen zwischen allen Populationen, der Populationen eines Untersuchungsgebiets
und zwischen den Haßberg- und Mittelrheinpopulationen. 88
Tabelle 7.2-21: Isolation-by-distance. Ergebnisse der Korrelationsanalyse des Zusammenhangs genetischer
und geographischer Distanz. Die Berechnungen wurden für die genetischen Distanzmaße nach
NEI und REYNOLDS und für die Untersuchungsgebiete getrennt ausgeführt. Bei der Berechnung
mit allen Populationen gingen zusätzlich die Populationen Fe1, At1 und Hg1 ein. Die Population
Sp1 wurde in die Berechnung für die Haßberge mit einbezogen. 93
Tabelle 7.2-22: Mantelstatistik des Matrixvergleichs der genetischen und geographischen Distanzen nach
Untersuchungsgebieten getrennt. r= normalisiertes Z (Mantelstatistik); t= approximierter Mantel
t-Test; p= Wahrscheinlichkeit, daß ein zufällig ausgewähltes Z kleiner ist als das beobachtete
Z. 94
Tabelle 7.2-23: Ergebnis des RxC-Tests, der klären sollte welche Loci für die genetische Differenzierung verantwortlich
sind. 95
Abbildung -1.1-1: Organisationsschema des Forschungsverbundes FIFB (nach der Projektbroschüre des
FIFB 1993, verändert). 9
Abbildung 3.1-2: Männchen von Platycleis albopunctata 10
Abbildung 3.1-3: Weibchen von Platycleis albopunctata. 11
Abbildung 3.1-4: Weibliche Larve, 4. oder 5. Larvenstadium. Größe ca. 12 mm. 12
Abbildung 3.2-1: Querschnitt durch Hangkatena; A=Arrhenatherium, M=Mesobrometum, S=Seslerietum,
mu=Wellenkalk, so=Oberer Buntsandstein, nach KÖHLER 1989. 14
Abbildung 4.2-1: Schema einer Metapopulation (nach SPERLICH 1988). Kreise stellen Subpopulationen
dar. A und B sind verschiedene Arten. Die Korridore zwischen den Kreisen symbolisieren
den Genfluß. 19
Abbildung 4.2-2: Genfluß zwischen Populationen (nach OPDAM et al. 1993, verändert). Die Abbildung zeigt
verschiedene Grade von Fragmentierung, Genfluß und verschiedene Möglichkeiten von
Populationsdynamiken für drei unterschiedliche Populationsstrukturen, weitere Erklärungen
im Text. 20
Abbildung 4.3-1: De Finetti Diagramm. Die Punkte A und B repräsentieren zwei Populationen im HARDY-
WEINBERG-Gleichgewicht. Auf der Linie, die die beiden Subpopulationen verbindet liegen
alle die Genotyphäufigkeiten, die aus einer Vermischung beider Populationen resultieren
würden. Am Punkt P besteht die Population je zur Hälfte aus Population A und Population
B. (aus HARTL & CLARK 1989). Weitere Erklärung im Text. 23
Abbildung 5.1-1: Übersichtkarte über die Lokalisation der Untersuchungsgebiete Mittelrhein (1), Haßberge
(5) und Hammelburg (At1, Fe1; 3) und der Populationen Hg1 (2) und Sp1 (4). 36
Abbildung 5.2-1: Untersuchungsgebiet Haßberge. Lokalisation der einzelnen Probennahmestellen. Die grün
markierten Stellen konnten wegen zu geringer Probengröße nicht weiter bearbeitet werden.37
Abbildung 5.3-1: Lokalisation der Probennahmestellen im Mittelrheintal. 40
Abbildung 6.3-1 Elektrophoresekammer; A= Auflagestege für CA-Platten, B=Trennsteg, C= Puffer, D= Filterpapierstreifen,
E= Elektroden, F= CA-Platten, nach HERBERT & BEATON 1988 45
Abbildung 6.3-2: Prinzipien der Enzymfärbung, Erklärungen im Text (RICHARDSON et al. 1986). 50
Abbildung 6.3-3: Nachweis der Mannose-Phosphat-Isomerase (MPI). Kursiv sind die zugegebenen Enzyme,
fett die die Färbung verursachenden Substanzen. 50
Abbildung 6.3-4: Nachweis für die Fumarathydratase (FH). Kursiv sind die zugegebenen Enzyme, fett die
die Färbung verursachenden Substanzen. 51
Abbildung 6.3-5: Erwartete Bandenmuster für Heterozygote von monomeren, dimeren und tetrameren Enzymen
(nach RICHARDSON 1986). Erklärungen im Text. 51
Abbildung 6.3-6: Darstellung des Versuchsablaufs von der Probenvorbereitung bis zur Bandenmusterauswertung.
53
Abbildung 6.4-1: Verlaufsdiagramm der Computerauswertung. 54
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