Arabidopsis thaliana - OPUS - Universität Würzburg
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8. Lipidextraktion aus Pflanzenmaterial<br />
8.1 Extraktion nicht veresterter (freier) Lipide<br />
Zur Extraktion von freien Lipiden wurden zwischen 100 und 200 mg gefrorenes und<br />
gemörsertes Pflanzenmaterial mit 1 ml MeOH/Eisessig (99:1;v:v) versetzt. Mittels<br />
einer Kugelmühle wurden die Proben anschließend für 3 min bei einer Frequenz von<br />
30 s -1 homogenisiert. Nach der Homogenisierung wurden durch einen zehnminütigen<br />
Zentrifugationsschritt bei 14000 rpm und RT die Proben pelletiert. Anschließend<br />
wurden 900 µl Überstand entnommen und bei 60°C im Rotationsvakuumkonzentrator<br />
zur Trockne eingeengt. Zu den trockenen Proben wurden als Interne Standards je 80<br />
ng [ 18 O]2-Linolensäure, 80 ng [ 18 O]2-OPDA sowie 40 ng [ 18 O]2-Jasmonsäure zu<br />
pipettiert und wiederum zur Trockne eingeengt.<br />
Die Herstellung der verwendeten [ 18 O]2-Standards erfolgte im Rahmen meiner<br />
Diplomarbeit, welche dieser Dissertation vorausgegangenen ist. Mittels einem sauer<br />
katalysierten (im Falle von Linolensäure und von Jasmonsäure) sowie einem<br />
enzymatischen Markierungsverfahrens (im Falle von OPDA) wurden jeweils<br />
spezifisch beide 16 O-Atome der Carboxylgruppen gegen 18 O-Atome ersetzt (Müller<br />
M. J. et al. 2006). Die Bestimmung des Markierungsgrades sowie die quantitative<br />
Bestimmung der Standards wurden mittels GC-MS durchgeführt.<br />
Abschließend wurden die Proben in 30 µl Acetonitril/1 mM Ammonium Acetat<br />
(1:1;v:v) gelöst und bis zur Analyse mittels Hochleistungsflüssigs-<br />
keitschromatographie-Tandem-Massenspektrometrie (HPLC-Tandem MS) bei -80°C<br />
aufbewahrt.<br />
8.2 Extraktion komplexer Lipide<br />
Zur Extraktion von komplexen Membranlipiden wurden zwischen 200 und 400 mg<br />
gefrorenes und gemörsertes Pflanzenmaterial mit 1,5 ml 80°C heißem Isopropanol<br />
versetzt und je 5 mg TPP sowie 1,5mg BHT als Antioxidantien als auch je 4 µg 18:0-<br />
18:0-MGDG, 4 µg 18:0-18:0-DGDG sowie 3 µg 17:0-17:0-PC als Interne Standards<br />
zugegeben. Nach einem 20 minütigem Inkubationsschritt bei 80°C im Wasserbad<br />
wurden die Proben 10 min bei RT und 14000 rpm zentrifugiert. Der Überstand wurde<br />
entnommen und die verbleibenden Pellets wurden in 1,5 ml Isopropanol/Chloroform<br />
(2:1;v:v) erneut extrahiert. Anschließend erfolgte ein Zentrifugationsschritt von 10 min<br />
bei RT und 14000 rpm. Der Überstand wurde abgenommen und die verbleibenden<br />
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