Arabidopsis thaliana - OPUS - Universität Würzburg
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Das Endreaktionsvolumen betrug 20 μl. Die Ligation wurde für 1 Stunde bei RT<br />
inkubiert. Nach Ablauf der Inkubationszeit wurde der Ligationsansatz zur<br />
Transformation kompetenter E.coli-TOP10 Zellen verwendet.<br />
7.5 Transformation von Bakterien<br />
Für die Transformation wurde ein 50 μl-Aliquot kompetenter E.coli-TOP10 Zellen auf<br />
Eis aufgetaut. Im Anschluss wurden die aufgetauten Bakterien mit dem<br />
Ligationsansatz versetzt und für 30 min auf Eis inkubiert. Mittels Hitzeschock bei<br />
42°C für 70 s erfolgte die Aufnahme der Plasmide. Anschließend wurde der<br />
Transformationsansatz für 2 min auf Eis abgekühlt und 500 μl LB-Medium<br />
zugegeben. Eine darauffolgende Inkubation für 1,5 h bei 37°C auf einem Schüttler<br />
bei 300 rpm diente zur Regeneration der Zellen. Die Zellsuspension wurden<br />
anschließend auf Selektionsfestmedien ausplattiert und für 12-16 Stunden bei 37°C<br />
im Wärmeschrank kultiviert.<br />
7.6 „Colony Screen―: Identifizierung transformierter Bakterien-Kolonien<br />
Um die gewünschte Transformation der Bakterien zu überprüfen wurde eine PCR<br />
durchgeführt. Hierfür wurden einzelne Bakterienkolonien, die auf den<br />
Selektionsfestmedien innerhalb von 12-16 Stunden gewachsen waren, in je 20 μl<br />
sterilem Wasser aufgenommen. Ein 10 μl-Aliquot jeder resuspendierten Kolonie<br />
diente für die nachfolgende PCR als Matrize. Die verwendeten Primerpaare wurden<br />
in Abhängigkeit des zu untersuchenden Konstrukts gewählt. Die verbleibenden 15 μl<br />
der Bakteriensuspension konnten nach der Identifizierung eines positiven Klons<br />
direkt zum Animpfen auf Selektionsfestmedium verwendet werden.<br />
Reaktionsansatz:<br />
Template 10 μl Bakteriensuspension<br />
Taq-Puffer 1x<br />
MgCl2 1,5 mM<br />
Primer 1 0,15 pmol<br />
Primer 2 0,15 pmol<br />
Taq-Polymerase 1-2 U<br />
steriles H2O ad 20 μl<br />
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