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Arabidopsis thaliana - OPUS - Universität Würzburg

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Das Endreaktionsvolumen betrug 20 μl. Die Ligation wurde für 1 Stunde bei RT<br />

inkubiert. Nach Ablauf der Inkubationszeit wurde der Ligationsansatz zur<br />

Transformation kompetenter E.coli-TOP10 Zellen verwendet.<br />

7.5 Transformation von Bakterien<br />

Für die Transformation wurde ein 50 μl-Aliquot kompetenter E.coli-TOP10 Zellen auf<br />

Eis aufgetaut. Im Anschluss wurden die aufgetauten Bakterien mit dem<br />

Ligationsansatz versetzt und für 30 min auf Eis inkubiert. Mittels Hitzeschock bei<br />

42°C für 70 s erfolgte die Aufnahme der Plasmide. Anschließend wurde der<br />

Transformationsansatz für 2 min auf Eis abgekühlt und 500 μl LB-Medium<br />

zugegeben. Eine darauffolgende Inkubation für 1,5 h bei 37°C auf einem Schüttler<br />

bei 300 rpm diente zur Regeneration der Zellen. Die Zellsuspension wurden<br />

anschließend auf Selektionsfestmedien ausplattiert und für 12-16 Stunden bei 37°C<br />

im Wärmeschrank kultiviert.<br />

7.6 „Colony Screen―: Identifizierung transformierter Bakterien-Kolonien<br />

Um die gewünschte Transformation der Bakterien zu überprüfen wurde eine PCR<br />

durchgeführt. Hierfür wurden einzelne Bakterienkolonien, die auf den<br />

Selektionsfestmedien innerhalb von 12-16 Stunden gewachsen waren, in je 20 μl<br />

sterilem Wasser aufgenommen. Ein 10 μl-Aliquot jeder resuspendierten Kolonie<br />

diente für die nachfolgende PCR als Matrize. Die verwendeten Primerpaare wurden<br />

in Abhängigkeit des zu untersuchenden Konstrukts gewählt. Die verbleibenden 15 μl<br />

der Bakteriensuspension konnten nach der Identifizierung eines positiven Klons<br />

direkt zum Animpfen auf Selektionsfestmedium verwendet werden.<br />

Reaktionsansatz:<br />

Template 10 μl Bakteriensuspension<br />

Taq-Puffer 1x<br />

MgCl2 1,5 mM<br />

Primer 1 0,15 pmol<br />

Primer 2 0,15 pmol<br />

Taq-Polymerase 1-2 U<br />

steriles H2O ad 20 μl<br />

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