Arabidopsis thaliana - OPUS - Universität Würzburg

Tabellenverzeichnis
Tab. II.1: Puffer-Zusammensetzung
Tab. II.2: Verwendete Arabidopsis Linien
Tab. II.3: Verwendete Oligonukleotide zum T-DNA-Insertionsnachweis und
entsprechende Annealingtemperaturen.
Tab. II.5: Primer zur Sequenzierung von DNA-Sequenzen innerhalb von
Klonierungsvektoren.
Tab. II.6: Primer zur Expressionsanalyse mittels quantitativer Reverser-
Transkriptase-PCR verwendet.
Tab. II.8: Lösemittelgradient zur chromatographischen Trennung von
freien Lipiden.
Tab. II.9: Lösemittelgradient zur chromatographischen Trennung von
Galaktolipiden
Tab. II.10: Lösemittelgradient zur chromatographischen Trennung von
Phospatidylcholinen.
Tab. II.11: Geräteinstellungen zur analytischen Bestimmung freier Lipide
Tab. II.12: Spezifische Massenübergänge freier Lipide im negativen
Elektrospray-Modus (ESI - ).
Tab. II.13: Geräteinstellungen zur analytischen Bestimmung von
Galaktolipiden
Tab. II.14: Spezifische Massenübergänge von Monogalaktosyldiacyl-
glycerolen (MGDG) im negativen Elektrospray-Modus (ESI - ).
Tab. II.15: Spezifische Massenübergänge von Digalaktosyldiacylglycerolen
(DGDG) im negativen Elektrospray-Modus (ESI - ).
Tab. II.16: Geräteinstellungen zur analytischen Bestimmung von
Phosphatidylcholinen
Tab. II.17: Spezifische Massenübergänge von Phosphatidylcholinen (PC)
im negativen Elektrospray-Modus (ESI - ).
Tab. III.1: Ergebnis der Datenbankrecherche durch den Lehrstuhl
Bioinformatik der Julius-Maximilians-Universität in Würzburg.
Tab. III.2: Ergebnis der molekularbiologische Analyse auf Reinerbigkeit.
13