Einfluss der ERM-Proteine auf die Protrusion- Ausbildung und Zell ...
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2. Material <strong>und</strong> Methoden<br />
2.1 Chemikalien <strong>und</strong> Enzyme<br />
2. Material <strong>und</strong> Methoden<br />
Die verwendeten Substanzen haben, sofern nicht an<strong>der</strong>s angegeben, <strong>die</strong> Reinheitsgrade „p.a.“, reinst.“<br />
bzw. „für mikrobielle Me<strong>die</strong>n“ <strong>und</strong> wurden von den Firmen Amersham, Applied Biosystems, Biorad,<br />
Boehringer Mannheim, Difco, Flow Laboratories, Fluka, GGG Genomed, Gibco BRL, Hoechst<br />
LifeTechnologies, Merck, Millipore, MoBiTec, New England Biolabs, Perkin Elmer, Pharmacia,<br />
Promega, Qiagen, Riedel de Haën, Renner, Roche, Carl Roth GmbH & Co, Serva, Sigma <strong>und</strong> USB<br />
bezogen. Alle Lösungen werden in deionisiertem Wasser angesetzt, welches mit einem Milli-Q-<br />
System (Millipore) <strong>auf</strong>bereitet ist.<br />
2.2 Geräte<br />
Agarosegel-Fotografie: E.A.S.Y., Herolab<br />
<strong>Zell</strong>kulturschränke: NUAIRE Ir Autoflow<br />
Schüttelinkubatoren: Infors AT<br />
Schwenktisch: Heidolph Polymax 1040<br />
Brutschränke: Heraeus<br />
Photometer: Gene-Quant II, Pharmacia Biotech<br />
Speedvac: SpeedVac Concentrator, Bachofer<br />
Zentrifugen: Beckman Avanti J-25<br />
Beckman J2-21<br />
Beckman J2-HS<br />
Eppendorf Centrifuge 5417C<br />
Eppendorf Centrifuge 5810R<br />
Eppendorf Megafuge 3.0R<br />
Heraeus Biofuge 13<br />
Weitere Geräte sind unter 2.9 ff. bis 2.14 ff. <strong>auf</strong>geführt.<br />
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