Dissertation Klaus Heitkamp 1999
Dissertation Klaus Heitkamp 1999 Dissertation Klaus Heitkamp 1999
6 Anhang 1336.4 Verzeichnis der verwendeten GerätePhotometer 100-60 UV/VIS Hitachi, MünchenHPLC-Anlage Merck-Hitachi:Eluentenpumpe Intelligent Pump L-6200 A Merck, DarmstadtReagenzienpumpen L-6000 A Merck, DarmstadtFluoreszenz-Detektor F-1080 Merck, DarmstadtUV/VIS-Detektor L-4250 Merck, DarmstadtAutosampler AS-2000 A Merck, DarmstadtAuswertesoftware HPLC System Manager Merck, DarmstadtT-Stück Mischungs-T-Stück Alltech, UnterhachingRückdruckreglerMerck, DarmstadtNMR-Spektroskopie:Bruker AC 250Bruker ARX 400Massenspektrometrie:Sektorfeldgerät MAT 311 ABruker, KarlsruheBruker, KarlsruheVarian, DarmstadtAtom-Absorptions-Spektroskopie:AAS 1100 BHitachi-Zeeman-Atomabsorptionsspektrometer Z-8000Perkin Elmer, ÜberlingenHitachi, MünchenFluorimetrie:Kontron SFM25Kontron, Neufahrn
134 6 Anhang6.5 NMR- und MassenspektrenNachstehend sind die in dieser Arbeit diskutierten Massen- und NMR-Spektren abgebildet.Da die synthetisierten Substanzen alle von öliger Konsistenz waren, ließ sich das verwendeteLösungsmittel nicht immer vollständig abtrennen. Die sich daraus ergebenden zusätzlichenSignale (vgl. Tabelle 36) konnten jedoch einwandfrei identifiziert werden.δ ( 1 H) in ppm (Multiplizität)δ ( 13 C) in ppmDiethylether1,16 (t)3,36 (t)14,665,2Chloroform 7,24 (s) 77,5Methanol 3,39 (s) 50,2Tetrahydrofuran1,85 (dd)3,75 (t)26,568,4Tabelle 36 NMR-Daten verschiedener Lösungsmittel 167
- Seite 95 und 96: 82 4 Ergebnisse und Diskussion4.5.1
- Seite 97 und 98: 84 4 Ergebnisse und DiskussionIm Fa
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- Seite 103 und 104: 90 4 Ergebnisse und Diskussionund a
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- Seite 131 und 132: 118 4 Ergebnisse und DiskussionZur
- Seite 133 und 134: 120 4 Ergebnisse und Diskussiong HP
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- Seite 139 und 140: 126 5 Zusammenfassung und Ausblick5
- Seite 141 und 142: 128 6 Anhang6 Anhang6.1 Öl-, Linol
- Seite 143 und 144: 130 6 AnhangLDLLOOHmMDAMP-11MSNMRNP
- Seite 145: 132 6 AnhangMeerrettichperoxidaseMe
- Seite 149 und 150: 136 6 Anhang6.5.2 Hydroperoxide des
- Seite 151 und 152: 138 6 Anhang1 H-NMR-SpektrumMassens
- Seite 153 und 154: 140 6 AnhangMassenspektrum6.5.5 13S
- Seite 155 und 156: 142 6 Anhang6.5.6 13S-Hydroperoxyoc
- Seite 157 und 158: 144 6 Anhang1 H-NMR-Spektrum6.5.8 1
- Seite 159 und 160: 146 6 Anhang1 H-NMR-SpektrumMassens
- Seite 161 und 162: 148 6 AnhangMassenspektrum6.5.11 2-
- Seite 163 und 164: 150 6 Anhang6.5.12 2-[13S-Hydropero
- Seite 165 und 166: 152 6 Anhang6.6.3 NP-HPLC mit Nachs
- Seite 167 und 168: 154 6 Anhang6.6.6 RP-HPLC mit UV/VI
- Seite 169 und 170: 156 6 Anhang6.7 Lineare statistisch
- Seite 171 und 172: 158 6 Anhangf 2 Prüfgröße G[P;f
- Seite 173 und 174: 160 6 Anhang6.7.2 VersuchspläneDie
- Seite 175 und 176: 162 6 Anhang3. Optimierungsschrittl
- Seite 177 und 178: 6.7.3 Optimierungsergebnisse1. Opti
- Seite 179 und 180: 3. OptimierungsschrittEingangswerte
- Seite 181 und 182: 5. OptimierungsschrittEingangswerte
- Seite 183 und 184: 170 6 AnhangBeadsorte 50/63,2 50/78
- Seite 185 und 186: 172 6 AnhangLagerungsdauerVolumen1-
- Seite 187 und 188: 174 6 AnhangUV (234 nm)FluoreszenzL
- Seite 189 und 190: 176 6 AnhangLagerungszeit a w -Wert
- Seite 191 und 192: 178 6 Anhang15161718192021222324252
- Seite 193 und 194: 180 6 Anhang43444546474849505152535
- Seite 195 und 196: 182 6 Anhang69707172737475767778798
134 6 Anhang6.5 NMR- und MassenspektrenNachstehend sind die in dieser Arbeit diskutierten Massen- und NMR-Spektren abgebildet.Da die synthetisierten Substanzen alle von öliger Konsistenz waren, ließ sich das verwendeteLösungsmittel nicht immer vollständig abtrennen. Die sich daraus ergebenden zusätzlichenSignale (vgl. Tabelle 36) konnten jedoch einwandfrei identifiziert werden.δ ( 1 H) in ppm (Multiplizität)δ ( 13 C) in ppmDiethylether1,16 (t)3,36 (t)14,665,2Chloroform 7,24 (s) 77,5Methanol 3,39 (s) 50,2Tetrahydrofuran1,85 (dd)3,75 (t)26,568,4Tabelle 36 NMR-Daten verschiedener Lösungsmittel 167
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