Dissertation Klaus Heitkamp 1999

VIIITabelle 1 Klassifizierung der Lipide..............................................................................2Tabelle 2 Induktionsperiode und relative Oxidationsgeschwindigkeit von Fettsäurenbei 25 °C ............................................................................................8Tabelle 3 Peroxidierungsspezifitäten von Lipoxidasen gegenüber Linolsäure ............11Tabelle 4 Bestimmung des Proteingehaltes von Lipoxidase aus Kartoffeln................34Tabelle 5 Bestimmung der Aktivität von Lipoxidase aus Kartoffeln...........................36Tabelle 6 Bestrahlungsdauer und Hydroperoxid-Ausbeuten bei der photosensibilisiertenOxidation von Fettsäuremethylestern..........................................38Tabelle 7 Auswertung der EI-Massenspektren von Hydroperoxiden einiger Fettsäuremethylesteraus der Oxidation mit Singulettsauerstoff ........................42Tabelle 8 Auswertung der EI-Massenspektren der 13S-Hydroperoxyoctadeca-9(Z),11(E)-diensäure und abgeleiteter Derivate...........................................43Tabelle 9 Auswertung der NMR-Spektren von Hydroperoxiden des Ölsäuremethylestersaus der Oxidation mit Singulettsauerstoff...............................45Tabelle 10 Auswertung der NMR-Spektren von Hydroperoxiden des Linolsäuremethylestersaus der Oxidation mit Singulettsauerstoff...............................45Tabelle 11 Auswertung der NMR-Spektren von Hydroperoxiden des Linolensäuremethylestersaus der Oxidation mit Singulettsauerstoff...............................45Tabelle 121 H-NMR-Daten verschiedener Linol- und Linolensäurederivate.................47Tabelle 1313 C-NMR-Daten verschiedener Linol- und Linolensäurederivate................48Tabelle 1413 C-NMR-Daten verschiedener Trilinolein-Derivate ...................................49Tabelle 151 H-NMR-Daten verschiedener Trilinolein-Derivate ....................................50Tabelle 16 Kalibrierfunktionen, Korrelationskoeffizienten, Nachweis-, ErfassungsundBestimmungsgrenzen photometrischer Bestimmungsmethoden fürHydroperoxide..............................................................................................62Tabelle 17 Untersuchte Reaktionssysteme zur Nachsäulenderivatisierung in derNP-HPLC von Lipidhydroperoxiden ...........................................................69Tabelle 18 Einflußfaktoren auf die Peakhöhe ................................................................72Tabelle 19 Zusammenfassung der Ergebnisse für die ersten drei Optimierungsschritte..........................................................................................................73Tabelle 20 Zusammenfassung der Ergebnisse für die Optimierungsschritte 4 und 5 ....74Tabelle 21 Breite der Peaks auf halber Höhe in Abhängigkeit von der verwendetenReaktionskapillare........................................................................................76Tabelle 22 Parameter für die optimierte Nachsäulenderivatisierung mit 1,5-Diphenylcarbohydrazid....................................................................................76Tabelle 23 Kenngrößen der Kalibriergeraden und berechnete Nachweis- undBestimmungsgrenzen von 13S-HPOD-Me-Ester bei Verwendung desoptimierten DPC-Systems ............................................................................78Tabelle 24 Vor- und Nachteile verschiedener Lösungsansätze zur Minimierung derBetriebskosten bei der MP-11/PES-Nachsäulenderivatisierung ..................81