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Ursachen stereotypen Verhaltens der Mongolischen Wüstenrennmaus

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Aus dem Institut für Tierschutz und Verhalten<br />

(Heim-, Labortiere und Pferde)<br />

<strong>der</strong> Tierärztlichen Hochschule Hannover<br />

________________________________________________________________<br />

<strong>Ursachen</strong> <strong>stereotypen</strong> <strong>Verhaltens</strong> <strong>der</strong><br />

<strong>Mongolischen</strong> <strong>Wüstenrennmaus</strong> (Meriones unguiculatus)<br />

I N A U G U R A L – D I S S E R T A T I O N<br />

Zur Erlangung des Grades einer Doktorin <strong>der</strong> Veterinärmedizin<br />

(Dr. med. vet.)<br />

durch die Tierärztliche Hochschule Hannover<br />

Vorgelegt von<br />

Martina Schmoock<br />

aus Hamburg<br />

Hannover 2004


Wissenschaftliche Betreuung:<br />

Univ. Prof. Dr. med. vet. H. Hackbarth<br />

1. Gutachter: Univ. Prof. Dr. H. Hackbarth<br />

2. Gutachter: Univ. Prof. Dr. S. Steinlechner<br />

Tag <strong>der</strong> mündlichen Prüfung: 24.11.2004


Meiner Familie<br />

und in Erinnerung an meine Großeltern Ludwig und Ella Reher<br />

und meine Tante Paula


Inhaltsverzeichnis<br />

1 Einleitung.......................................................................................................................11<br />

2 Literaturübersicht ...........................................................................................................13<br />

2.1 Herkunft von Meriones unguiculatus ........................................................................13<br />

2.2 Taxonomie................................................................................................................13<br />

2.2.1 Parameter..........................................................................................................15<br />

2.2.2 Bezeichnungen..................................................................................................15<br />

2.3 Verbreitung...............................................................................................................16<br />

2.3.1 Natürlicher Lebensraum....................................................................................16<br />

2.3.2 Natürliche Lebensweise ....................................................................................17<br />

2.3.3 Nestbauverhalten...............................................................................................18<br />

2.3.4 Jungtieraufzucht und Entwicklung.....................................................................18<br />

2.4 Haltung von Meriones unguiculatus als Versuchstiere ..............................................19<br />

2.4.1 Domestikation...................................................................................................19<br />

2.4.2 Haltung im Labor..............................................................................................20<br />

2.4.3 Käfigarten .........................................................................................................21<br />

2.4.4 Gesetzliche Vorschriften ...................................................................................21<br />

2.4.5 Einsatz <strong>der</strong> <strong>Mongolischen</strong> <strong>Wüstenrennmaus</strong> in <strong>der</strong> Forschung...........................22<br />

2.5 Zucht <strong>der</strong> <strong>Mongolischen</strong> <strong>Wüstenrennmaus</strong>................................................................23<br />

2.5.1 Management .....................................................................................................23


2.5.2 Absetzen ...........................................................................................................24<br />

2.6 Wohlbefinden ...........................................................................................................24<br />

2.6.1 Definition..........................................................................................................24<br />

2.6.2 Definition: „artgemäß“......................................................................................26<br />

2.6.3 Definition: „verhaltensgerecht“ .........................................................................26<br />

2.6.4 Schmerzen, Leiden und Schäden .......................................................................26<br />

2.6.5 Stress ................................................................................................................29<br />

2.6.6 Coping ..............................................................................................................30<br />

2.7 <strong>Verhaltens</strong>törungen...................................................................................................31<br />

2.7.1 Definition..........................................................................................................31<br />

2.7.2 Stereotypien ......................................................................................................33<br />

2.7.3 Stereotypien bei <strong>Mongolischen</strong> Wüstenrennmäusen ..........................................35<br />

2.8 Verbesserung <strong>der</strong> Haltungsbedingungen....................................................................36<br />

2.9 Umweltanreicherung, sogenanntes „Environmental Enrichment“..............................37<br />

2.9.1 Mögliche Anreicherungen .................................................................................38<br />

2.9.2 Anreicherungen zur Vermin<strong>der</strong>ung, bzw. Verhin<strong>der</strong>ung des <strong>stereotypen</strong> Grabens<br />

bei Meriones unguiculatus ............................................................................................39<br />

3 Material und Methoden...................................................................................................41<br />

3.1 Versuchstiere ............................................................................................................41<br />

3.2 Standardhaltung........................................................................................................41<br />

3.3 Futter und Wasser .....................................................................................................42


3.4 Versuchsaufbau ........................................................................................................43<br />

3.5 Ergänzung.................................................................................................................49<br />

3.6 Euthanasie ................................................................................................................51<br />

3.7 Sektion .....................................................................................................................51<br />

3.8 Statistik.....................................................................................................................52<br />

4 Ergebnisse ......................................................................................................................53<br />

4.1 Verhalten ..................................................................................................................53<br />

4.2 Übersicht <strong>der</strong> zeitlichen Aufteilung des <strong>stereotypen</strong> Grabens ....................................53<br />

4.3 Anzahl <strong>der</strong> einzelnen <strong>stereotypen</strong> Grabeaktivitäten ...................................................57<br />

4.4 Ergänzung.................................................................................................................60<br />

4.5 Darstellung <strong>der</strong> Körpermaße .....................................................................................62<br />

4.6 Körpergewicht, Körpermaße, Organgewichte............................................................62<br />

4.7 Kopf-Schwanz-Länge ...............................................................................................63<br />

4.8 Organgewichte..........................................................................................................63<br />

5 Diskussion......................................................................................................................68<br />

5.1 Umweltanreicherung.................................................................................................68<br />

5.2 <strong>Verhaltens</strong>beobachtungen .........................................................................................72<br />

5.3 Körpermaße..............................................................................................................74<br />

5.4 Organgewichte..........................................................................................................75<br />

5.5 Abschlussbetrachtung ...............................................................................................76<br />

6 Zusammenfassung ..........................................................................................................78


7 Summary........................................................................................................................80<br />

8 Literaturverzeichnis........................................................................................................82


Abb. Abbildung<br />

bzw. beziehungsweise<br />

°C Grad Celcius<br />

ca. circa<br />

cm Zentimeter<br />

cm 2 Quadratzentimeter<br />

CO2<br />

Kohlenstoffdioxid<br />

d.h. das heißt<br />

g Gramm<br />

Abkürzungsverzeichnis<br />

et al. et alii (und an<strong>der</strong>e)<br />

IASP International Association for the Study of Pain<br />

I.E. Internationale Einheit<br />

KGW Körpergewicht<br />

kg Kilogramm<br />

L/min Liter pro Minute<br />

LT Lebenstag<br />

Lx Lux<br />

m Meter<br />

m 2 Quadratmeter<br />

mg Milligramm<br />

m3/h Kubikmeter pro Stunde<br />

mm Hg Millimeter Quecksilbersäule<br />

SD Standard deviation, Standardabweichung<br />

u. und<br />

z.B. zum Beispiel<br />

z.T. zum Teil<br />

ZNS Zentrales Nevensystem


Einleitung 11<br />

1 Einleitung<br />

Sowohl im Bereich <strong>der</strong> Grundlagenforschung, als auch <strong>der</strong> angewandten Forschung werden<br />

Mongolische Wüstenrennmäuse (Meriones unguiculatus) eingesetzt. Das entscheidende<br />

Basiswissen über diese Tiere ist vorhanden. Anschaffung, Haltung und Pflege <strong>der</strong> Tiere sind<br />

vergleichsweise kostengünstig und Mongolische Wüstenrennmäuse sind weitgehend frei von<br />

spontanen Erkrankungen, zudem sind sie einfach im Umgang (SCHULZE SIEVERT 2002).<br />

Ihre geringe Größe, ihr sparsamer Wasserverbrauch, sowie die Adaptivität an<br />

Temperaturschwankungen und <strong>der</strong> diurnale Aktivitätszyklus prädestinieren diese Tierart unter<br />

an<strong>der</strong>em für den Einsatz in <strong>der</strong> Weltraumforschung und ermöglichen Aussagen über den<br />

Einfluss des Weltraums auf z. B. Reproduktion und Endokrinologie (ROBINSON 1979).<br />

Nach HARKNESS und WAGNER (1995) werden in den USA jährlich etwa 100.000<br />

Mongolische Wüstenrennmäuse für die Forschung verwendet. Über die Anzahl <strong>der</strong> Tiere, die<br />

in Deutschland zu Versuchszwecken verwendet werden sind in <strong>der</strong> Literatur keine genauen<br />

Angaben verzeichnet, da diese Tierart unter <strong>der</strong> Rubrik “an<strong>der</strong>e Nager” mit Hamstern und<br />

an<strong>der</strong>en Spezies zusammengefasst wird. 2002 waren es, laut Versuchstiermeldeverordnung, in<br />

dieser Rubrik 12.446 Tiere.<br />

Mongolische Wüstenrennmäuse werden in <strong>der</strong> Regel in Makrolonkäfigen aus Polycarbonat<br />

mit einer Gitterabdeckung aus rostfreiem Stahl gehalten.<br />

Im Versuch erfor<strong>der</strong>n die Wie<strong>der</strong>holbarkeit und Vergleichbarkeit <strong>der</strong> Befunde eine hohe<br />

Standardisierung <strong>der</strong> Haltungsbedingungen, was gewisse Einschränkungen mit sich bringt<br />

(MILITZER 1992).<br />

<strong>Verhaltens</strong>störungen treten bei <strong>Mongolischen</strong> Wüstenrennmäusen bei einer Überfor<strong>der</strong>ung<br />

<strong>der</strong> Anpassungsfähigkeit auf. Haltungssysteme, in denen Stereotypien auftreten sind generell<br />

zu vermeiden (VAN ZUTPHEN et al. 1995).<br />

Im Tierschutzgesetz wird in §2 gefor<strong>der</strong>t, dass Tiere art- und verhaltensgerecht zu halten sind.<br />

Das bedeutet, dass das Tier die Möglichkeit haben muss, seine natürlichen <strong>Verhaltens</strong>weisen<br />

auch in künstlicher Umgebung auszuführen. Die Aufzucht und Haltung in nicht-strukturierten


12 Einleitung<br />

Laborkäfigen wird diesen Anfor<strong>der</strong>ungen in keiner Weise gerecht. Die daraus resultierenden<br />

Stressreaktionen beeinflussen auch den experimentellen Wert <strong>der</strong> Ergebnisse (WAIBLINGER<br />

2002; WOLFENSSON u. LLOYD 1998). Unter an<strong>der</strong>em kommt es bei dieser Tierart zum<br />

<strong>stereotypen</strong> Graben. Die Tiere scharren mit den Vor<strong>der</strong>beinen bevorzugt in den Ecken, die<br />

Augen sind geschlossen, die Ohren angelegt und die Einstreu wird mit den Hinterbeinen zur<br />

Seite geschoben.<br />

Nach WAIBLINGER und KÖNIG (2001) benötigen Meriones unguiculatus eine Baustruktur,<br />

in die sie sich zurückziehen können, welche in Standardkäfigen fehlt. So kommt es, dass die<br />

Tiere erfolglos versuchen sich durch lang andauernde Grabbewegungen Unterschlupf zu<br />

verschaffen.<br />

Ziel dieser Arbeit ist es, mittels einer Umweltanreicherung, einem sog. “Environmental<br />

Enrichment” das Wohlbefinden <strong>der</strong> Tiere zu steigern und das Ausprägen des <strong>stereotypen</strong><br />

Grabens zu verringern, bzw. zu verhin<strong>der</strong>n. Es soll untersucht werden, ob die Zugabe einer<br />

undurchsichtigen Nestbox, welche durch eine ebenfalls undurchsichtige, rechtwinklige Röhre<br />

erreichbar ist, ein Ausbleiben o<strong>der</strong> eine Vermin<strong>der</strong>ung <strong>der</strong> Stereotypie zur Folge hat.


Literaturübersicht 13<br />

2 Literaturübersicht<br />

2.1 Herkunft von Meriones unguiculatus<br />

1866 entdeckte und fing <strong>der</strong> französische Pater Abbé Armand David drei Exemplare einer bis<br />

dahin unbekannten Art, als er von Peking nach Nordchina reiste. Er sandte diese von ihm als<br />

“gelbe Ratten mit langen behaarten Schwänzen” beschriebenen Tiere an Monsieur Milne-<br />

Edwards, welcher als Direktor am Naturkundemuseum in Paris tätig war. Der gab den Tieren<br />

den Namen Meriones unguiculatus (Milne-Edwards 1867). Er bedeutet so viel, wie “Krieger<br />

mit Krallen“.<br />

1935 fing Kasuga 20 Zuchtpaare des mongolischen Gerbils im Amur-Flußtal, das auf <strong>der</strong><br />

Grenze zwischen <strong>der</strong> Mandschurei und <strong>der</strong> Mongolei im Süden und <strong>der</strong> Sowjetunion im<br />

Norden liegt. Diese Tiere brachte er mit zurück zum Kitasato-Institut in Japan, wo sie als<br />

Zuchtkolonie gehalten wurden. 1949 wurde noch eine Kolonie in den “Central Laboratories<br />

for Experimental Animals” in Tokyo, Japan, gegründet. Hieraus nahm Schwendtker 1954 vier<br />

Zuchtpaare mit zurück in die USA und gründete eine Zuchtkolonie in <strong>der</strong> “West Foundation”,<br />

Brant Lake. Dieser Kolonie und damit den ursprünglichen 4 Zuchtpaaren entstammt <strong>der</strong><br />

größte Teil <strong>der</strong> amerikanischen und europäischen Kolonien mongolischer Gerbils<br />

(KORNERUP HANSEN 1990). 1995 wurden laut STUERMER (2002) 60 weitere<br />

Mongolische Wüstenrennmäuse bei einer wissenschaftlichen Exkursion in <strong>der</strong> Mongolei<br />

gefangen, mit welchen weitergezüchtet werden konnte.<br />

2.2 Taxonomie<br />

Die taxonomische Einordnung <strong>der</strong> Gattungen erfolgt nicht einheitlich. So zählt die<br />

Unterfamilie <strong>der</strong> Gerbillinae nach WILSON und REEDER (1993) und WARREN (2002) zur<br />

Familie <strong>der</strong> Muridae (Mäuse).<br />

Die folgende taxonomische Einordnung nach GRZIMEK (1969) stimmt allerdings mit den<br />

meisten Autoren (KORNERUP HANSEN 1990; SCHMIDT 1996; SAMBRAUS u.<br />

STEIGER 1997; WISSDORF u. IRMER 1980) überein. Er ordnet die Tiere <strong>der</strong> Familie <strong>der</strong><br />

Cricetidae (Wühler) zu.


14 Literaturübersicht<br />

Taxonomische Einordnung nach GRZIMEK (1969):<br />

Klasse Mammalia (Säuger)<br />

Unterklasse Eutheria o<strong>der</strong> Placentalia (Höhere Säuger o<strong>der</strong> Plazentatiere)<br />

Ordnung Rodentia (Nagetiere)<br />

Unterordnung Myomorpha (Mäuseverwandte)<br />

Überfamilie Muroidea (Mäuseartige)<br />

Familie Criteridae (Wühler)<br />

Unterfamilie Gerbillinae (Rennmäuse)<br />

Gattung Gerbillus (Eigentliche Rennmaus)<br />

Gattung Meriones (Sandmaus)<br />

Gattung Rhombomys (Große Rennmaus)<br />

Gattung Pachyuromys (Dickschwanzmaus)<br />

Gattung Psammomys (Sandrennmaus)<br />

Gattung Tatera (Nacktsohlenrennmaus)<br />

Gattung Taterillus (Kleine Nacktsohlen-Rennmaus)


Literaturübersicht 15<br />

2.2.1 Parameter<br />

In <strong>der</strong> nachfolgenden Tabelle sind die durchschnittlichen Körperdaten von <strong>Mongolischen</strong><br />

Wüstenrennmäusen dargestellt.<br />

Tabelle 1: Allgemeine Parameter<br />

2.2.2 Bezeichnungen<br />

Gewicht Männchen 80-110 g<br />

Gewicht Weibchen 70-100 g<br />

Körperlänge 10-13 cm<br />

Schwanzlänge 9-11 cm<br />

Schwanz dicht behaart, mit kleiner Quaste<br />

Kopfform kurz, breit, stumpfe Schnauze<br />

Ohren klein behaart<br />

Körpertemperatur 37,4-39,0 °C<br />

Atemfrequenz 70-120 / min<br />

Herzschlagvolumen 360-430 / min<br />

Blutvolumen 7,76 ml / 100 g KGW<br />

Blutdruck 120 / 75 mm Hg<br />

Chromosomenzahl (2n) 44<br />

Lebenserwartung 3-4 Jahre (als Heimtier)<br />

Lebenserwartung < 1 Jahr (als Wildtier)<br />

(RAUTH-WIDMAN 1999)<br />

Die am häufigsten gehaltenen Rennmäuse, sowohl in <strong>der</strong> Heimtierhaltung, als auch in <strong>der</strong><br />

Laborhaltung sind Mongolische Wüstenrennmäuse (Meriones unguiculatus) (SCHRÖPFER<br />

1988; RAUTH-WIDMANN 1999).


16 Literaturübersicht<br />

Es existieren aber eine Vielzahl von Namen für diese Tierart:<br />

- mongolian gerbil<br />

- mongolian dessert mouse<br />

- sand rats<br />

Die am häufigsten verwendete Bezeichnung mongolian gerbil wird häufig fälschlicherweise<br />

mit Gerbil ins Deutsche übersetzt. Gerbil ist allerdings ein Oberbegriff für alle Mitglie<strong>der</strong> <strong>der</strong><br />

Unterfamilie <strong>der</strong> Rennmäuse und schließt somit auch Sand- und Wüstenmäuse mit ein<br />

(EBERBECK 2002). Zwischen ihnen bestehen aber erhebliche Unterschiede in Bezug auf<br />

Haltung und Pflege (AGREN 1976; HOLLMANN 1987). Auch <strong>Wüstenrennmaus</strong> ist im<br />

eigentlichen Sinne nicht richtig, da es sich um Steppenbewohner handelt (EBERBECK 2002).<br />

2.3 Verbreitung<br />

2.3.1 Natürlicher Lebensraum<br />

Die <strong>Mongolischen</strong> Wüstenrennmäuse sind in den sandigen Steppen <strong>der</strong> Zentral-, Süd- und<br />

Nordostmongolei, sowie im Norden und Nordosten Chinas und in kleinen Teilen<br />

Südrusslands zu finden (NAUMOV u. LOBACHEV 1975). Somit sind sie extremen<br />

Klimaschwankungen ausgesetzt. Sie passen sich ihrem Lebensraum, welcher von starken<br />

Temperaturschwankungen und fehlendem Trinkwasser gekennzeichnet ist, durch den Bau von<br />

unterirdischen Gangsystemen an.<br />

In dünenartigen Sandflächen legen sie mit andauern<strong>der</strong> Scharraktivität weitläufige Höhlen-<br />

und Gangsysteme an, so dass unter <strong>der</strong> Erde ein weitverzweigtes Netz mit Nisthöhlen und<br />

Vorratskammern entsteht (HOLLMANN 1987; ALLANSON 1970). Von Höhlen, in denen<br />

Kot und Urin abgesetzt wird, konnte in <strong>der</strong> Literatur keine Angabe gefunden werden. Die<br />

Gänge haben einen Durchmesser von etwa 4 cm und liegen bis zu 1,70 m unter <strong>der</strong><br />

Erdoberfläche. Im Zentrum befindet sich ein Nest, sowie ein bis zwei Vorratskammern mit<br />

Nahrungsbevorratung für den Winter (SCHRÖPFER 1988). Neben dem zentralen Nestbau<br />

von fünf bis sechs Metern Länge und mit fünf bis zehn Eingängen, finden sich mehrere<br />

temporäre Bauten von zwei bis vier Metern Länge und mit bis zu drei Eingängen. Da


Literaturübersicht 17<br />

Wüstenrennmäuse zahlreiche Fressfeinde wie z.B. Eulen und Füchse haben, benötigen sie<br />

zahlreiche Eingänge, um sich schnell zum Schutz zurückziehen zu können. Die temporären<br />

Bauten umgeben den zentralen Nestbau in einem Radius von zehn bis zwanzig Metern.<br />

Neben Explorationsverhalten ist Graben die zweithäufigste Aktivität dieser Tiere (EHRAT et<br />

al. 1974).<br />

2.3.2 Natürliche Lebensweise<br />

Insgesamt gibt es nur sehr wenige Freilandbeobachtungen dieser Tierart. Meriones<br />

unguiculatus sind sozial lebend und leben mit mehreren Generationen in Familienverbänden.<br />

Meist geht <strong>der</strong> gesamte Verband von einem Paar aus. Sämtliche Mitglie<strong>der</strong> sind also adulte<br />

und subadulte Nachkommen dieses Paares (SAMBRAUS 1993). Die Größe <strong>der</strong> Gruppe<br />

umfasst 15-20 Mitglie<strong>der</strong>. Die Tiere sind monogam, sie halten keinen Winterschlaf und sind<br />

sowohl tag- als auch nachtaktiv (RAUTH-WIDMANN 1999; HEINZELLER u. ASCHAUER<br />

1989). Sowohl in den frühen Morgen- als auch in den Abendstunden kommt es zu je einem<br />

Aktivitätshoch (AGREN 1976; SURJOSUKOTJO 1999). Nach HEINZELLER u.<br />

ASCHAUER (1989) sind die Tiere einer Gruppe synchron aktiv.<br />

In einem Territorium kann nur eine Familieneinheit leben. Das Territorium wird mittels <strong>der</strong><br />

Ventraldrüse markiert, welche Pheromone, Testosteron und Progesteron enthält.<br />

(GLÖCKNER u. GÖBEL 2001) Zudem wird es gegen Eindringlinge verteidigt. Innerhalb <strong>der</strong><br />

Gruppe kommt es nur selten zu Aggressionen. Wenn sie auftreten, dienen sie <strong>der</strong> Bildung des<br />

Stamm-Paares <strong>der</strong> Gruppe sowie <strong>der</strong> Kontrolle <strong>der</strong> Populationsgröße.<br />

In <strong>der</strong> Natur beträgt die bewohnte Fläche einer Gruppe etwa 300-1500 m 2 (YAPA 1994). Die<br />

meisten Gerbillinae ernähren sich granivor o<strong>der</strong> omnivor, einige Arten aber auch insectivor.<br />

Der Wasserbedarf ist gering und wird häufig aus <strong>der</strong> Nahrung gedeckt (ALLANSON 1970),<br />

zudem werden nur geringe Mengen Urin und sehr trockene Kotpellets ausgeschieden<br />

(RAUTH-WIDMANN 1999).


18 Literaturübersicht<br />

2.3.3 Nestbauverhalten<br />

Sowohl das Weibchen, als auch das Männchen beteiligen sich am Nestbau, wobei das<br />

Weibchen eine deutliche höhere Aktivität hierbei zeigt. Beim Graben handelt es sich um eine<br />

angeborene Instinkthandlung, die sich aus Scharren und Auswerfen zusammensetzt<br />

(HEISLER, 1980).<br />

2.3.4 Jungtieraufzucht und Entwicklung<br />

Nach 24-26 Tagen Tragzeit wirft das Weibchen 1-12 Neugeborene, welche in einem Nest<br />

untergebracht werden. Die Tragzeit verlängert sich, wenn die Paarung im postpartialen Östrus<br />

stattfindet. Dann kommt es zur Verzögerung <strong>der</strong> Implantation <strong>der</strong> Blastozyste (ALLANSON<br />

1970). Nach NORRIS und ADAMS (1972) erhöht sich die Tragzeit um 1,9 Tage pro<br />

Neugeborenem, wenn drei o<strong>der</strong> mehr Junge gesäugt werden.<br />

Sowohl die Männchen, als auch die Weibchen beteiligen sich an <strong>der</strong> Aufzucht <strong>der</strong><br />

Nachkommen, welches zu einer deutlich schnelleren Entwicklung des Nachwuchses führt, als<br />

bei Jungtieren, welche allein vom Muttertier aufgezogen werden (BEYNON u. COOPER<br />

1992). Die Anwesenheit des Männchens beeinflusst z. B. den Zeitpunkt des Öffnens <strong>der</strong><br />

Augen, welcher früher stattfindet (ELWOOD u. BROOM 1978). Dies liegt in erster Linie an<br />

<strong>der</strong> zusätzlichen Wärme, die das Männchen mit in das Nest bringt (MCMANUS, 1971).<br />

Im Nest verbringen sie ihre ersten 5 Lebenstage, wo sie schlafen o<strong>der</strong> gesäugt werden<br />

(EHRAT et al. 1974). Die Saugaktivität ist unregelmäßig über den Tag verteilt,<br />

währenddessen werden von den Jungtieren Zirplaute ausgestoßen. Ab dem 5. Lebenstag<br />

finden kleinere Exkursionen statt, zudem können Kratzaktivitäten mit den Hinterextremitäten<br />

beobachtet werden. Die Tiere sind vor allem tagsüber bewegungsaktiv (LERWILL 1974).<br />

Zwischen dem 6. und 10. Lebenstag können erste Putzaktivitäten beobachtet werden. Ab dem<br />

16. Lebenstag nehmen die Tiere zusätzlich feste Nahrung auf (NORRIS u. ADAMS 1972),<br />

zudem beginnen die Tiere mit ersten Grabaktivitäten. Etwa ab dem 18. Lebenstag werden die<br />

Augen geöffnet und die Bewegungsaktivität steigt deutlich an. Ab dem 21. Lebenstag sind die<br />

Tiere selbstständig lebensfähig, werden aber noch oft bis zum 28. Lebenstag gesäugt<br />

(EHRAT et al. 1974).


Literaturübersicht 19<br />

Tabelle 2: Jungtierentwicklung<br />

Entwicklungsstadien Tage<br />

Öffnen <strong>der</strong> Ohren 3-7<br />

Erscheinen <strong>der</strong> ersten Haare 5-7<br />

Durchbruch <strong>der</strong> Incisivi 10-16<br />

Öffnen <strong>der</strong> Augenli<strong>der</strong> 16-20<br />

Abstieg <strong>der</strong> Hoden 30-40<br />

Öffnen <strong>der</strong> Vagina 40-60<br />

2.4 Haltung von Meriones unguiculatus als Versuchstiere<br />

2.4.1 Domestikation<br />

(EHRAT et al. 1974)<br />

Der größte Teil <strong>der</strong> <strong>Mongolischen</strong> Wüstenrennmäuse in Europa und den USA entstammt aus<br />

den 1935 gefangenen 20 Zuchtpaaren. Diese langjährige isolierte Laborzucht hat durch<br />

Langzeitselektion zu Domestikationseffekten geführt. Die Effekte betreffen in erster Linie<br />

Reproduktion, Hirngewicht, Verhalten und Fellfärbung. So haben männliche Labortiere<br />

höhere Hodengewichte und eine höhere Spermienproduktion als Wildfänge (BLOTTNER et<br />

al. 2000). Die Testosteronproduktion ist geringer. Die durchschnittliche Wurfgröße ist von 4 -<br />

4,5 Jungtieren pro Wurf auf eine Wurfgröße von 5,6 Tieren angestiegen (STUERMER 1998).<br />

Die Wildtiere dagegen zeigen eine schnellere Entwicklung als die Labortiere, so öffnen sich<br />

beispielsweise die Augen einen Tag eher. Das Gehirngewicht ist bei Labortieren um 18%<br />

niedriger als bei Wildtieren, was als wichtiges Domestikationskriterium gilt (STUERMER<br />

1998). Die Labortiere sind insgesamt deutlich ruhiger als die Wildtiere. Die Organgewichte,<br />

vor allem Herz, Lunge, Niere und Leber, sind gegenüber den Wildtieren deutlich im Gewicht<br />

reduziert (ZINKE et al. 1997). Der Verdauungstrakt ist zudem verkürzt und das<br />

Magengewicht ist ebenfalls reduziert, was auf eine Adaptation an die menschliche<br />

Futterversorgung schließen lässt. Tiere, die unter natürlichen Lichtbedingungen in <strong>der</strong><br />

Wildbahn aufgewachsen sind, sind im Gegensatz zu den im Labor gehaltenen Tieren eher<br />

geschlechtsreif (HOFMANN 1999). Mongolische Wüstenrennmäuse, welche im Labor<br />

gehalten werden, zeigen im Gegensatz zu den Wildtieren häufig epileptische Krämpfe,


20 Literaturübersicht<br />

Albinismus und Melanismus (STUERMER et al. 1996). Nach WAIBLINGER (2002) sind die<br />

meisten <strong>Verhaltens</strong>eigenschaften und Regulationsmechanismen trotz <strong>der</strong> Domestikation<br />

erhalten geblieben.<br />

2.4.2 Haltung im Labor<br />

Die Haltung von Versuchstieren beruht vor allem auf praktischen Erfahrungen und<br />

berücksichtigt in erster Linie die Interessen des Experimentators (SCHARMANN 1994). Von<br />

allen Rennmausarten werden in <strong>der</strong> Forschung vornehmlich Mongolische Wüstenrennmäuse<br />

verwendet. Von allen Versuchstieren sind Nagetiere die am häufigsten eingesetzten, sie<br />

machen etwa 80 % aller Wirbeltiere im Tierversuch aus. Diese Tiergruppe stellt die größte<br />

Ordnung unter den Säugetieren dar und besteht aus 1800 Arten (VAN ZUTPHEN et al.<br />

1995). Die Haltung von Versuchstieren ist in hohem Maße standardisiert (BUCHENAUER<br />

1998). Die Standardisierung dient dazu, die Versuche reproduzierbar zu machen, um so eine<br />

bessere Vergleichbarkeit <strong>der</strong> Ergebnisse zu erzielen (VAN ZUTPHEN et al. 1995). Meriones<br />

unguiculatus werden meist als monogames Paar zu zweit in Makrolonkäfigen gehalten, die<br />

auch für die Haltung von Mäusen und Ratten verwendet werden, mit einer soliden<br />

Bodenwanne aus durchsichtigem Polycarbonat und einer Gitterabdeckung aus rostfreiem<br />

Stahl. Diese eignen sich, da sie Beobachtungen <strong>der</strong> Tiere zulassen und leicht zu reinigen sind<br />

(HEINE 1998; POOLE 1999). Eine einfache Versorgung muss gewährleistet sein und <strong>der</strong><br />

Käfig soll nicht viel Platz in Anspruch nehmen. Zudem soll er leicht kontrollierbar sein. Als<br />

Einstreumaterialien werden Weichholzgranulate o<strong>der</strong> Sägespäne verwendet, da die<br />

Materialien sterilisierbar und weitgehend staubfrei sind (HEINECKE 1989).<br />

Gefüttert werden die Tiere mit standardisiertem Pellet-Futter. Im Versuch besteht das Futter<br />

aus gereinigten Materialien, welches <strong>der</strong> Standardisierbarkeit dient. Trinkwasser wird in<br />

durchsichtigen Flaschen angeboten, welche außen am Käfig bzw. in <strong>der</strong> Raufe befestigt sind.<br />

Somit ist ihre Bewegungsfreiheit im Vergleich zur Wildnis stark eingeschränkt und sie<br />

können eine große Zahl ihrer natürlichen <strong>Verhaltens</strong>weisen nicht ausführen (STAMP<br />

DAWKINS 1982; STAUFFACHER 1994; HOLLMANN 1987).


Literaturübersicht 21<br />

2.4.3 Käfigarten<br />

Für die Haltung von <strong>Mongolischen</strong> Wüstenrennmäusen werden die Käfiggrößen Makrolon<br />

Typ III und IV verwendet. Die Grundfläche des Typs III liegt bei 820 cm 2 , die Höhe beträgt<br />

15 cm, bzw. bei <strong>der</strong> Ausführung „hoch“ 18 cm. Die Grundfläche bei Typ IV liegt bei 1800<br />

cm 2 , die Höhe beträgt 20 cm (STUERMER 2002). STUERMER (2002) empfiehlt für Paare<br />

mit o<strong>der</strong> ohne Jungtiere den Käfigtyp IV und für Einzeltiere den Typ III. Grundsätzlich wird<br />

aber in <strong>der</strong> Literatur dringend von <strong>der</strong> Einzelhaltung abgeraten (SAMBRAUS u. A. STEIGER<br />

1997).<br />

2.4.4 Gesetzliche Vorschriften<br />

Beim Europäischen Parlament liegt <strong>der</strong>zeitig eine in Überarbeitung befindliche Richtlinie zur<br />

Haltung von <strong>Mongolischen</strong> Wüstenrennmäusen vor. Sie for<strong>der</strong>t eine Mindesthöhe von 18 cm<br />

und eine Bodenfläche von 150 cm 2 pro Tier bis zu einem Körpergewicht von 40 g und 250<br />

cm 2 pro Tier für Tiere mit einem Körpergewicht von mehr als 40 g. Monogame Zuchtpaare<br />

mit Nachkommen sollen eine Grundfläche von 1200 cm 2 erhalten. Zur Laborhaltung<br />

existieren mit Ausnahme <strong>der</strong> Raumtemperatur keine spezifisch gesetzlichen Vorschriften.<br />

Aktuellen Anfor<strong>der</strong>ungen werden diese Richtwerte nach SALOMON et al. (2001) in keiner<br />

Weise gerecht. NOWAK (1995) hält Verbesserungen <strong>der</strong> Versuchstierhaltungen für<br />

unbedingt nötig, da die in internationalen Rechtsvorschriften vorgegebenen Minimalstandards<br />

eine tiergerechte Haltung nicht o<strong>der</strong> nicht ausreichend ermöglichen. Dem arttypischen<br />

Verhalten <strong>der</strong> verschiedenen Spezies, v. a. <strong>der</strong> Nager und Kaninchen, werden die Richtlinien<br />

kaum gerecht. Mit einer Neufassung <strong>der</strong> Haltungsnormen, die auf ethologischen<br />

Erkenntnissen basieren, wird erst in einigen Jahren zu rechnen sein (SCHARMANN 1994).<br />

Im Laufe des 20. Jahrhun<strong>der</strong>ts hat sich das Verhältnis des Menschen zum Tier grundlegend<br />

geän<strong>der</strong>t. Käfiggröße, Struktur und Ausstattung, sowie Belegdichte und Gruppengröße<br />

wurden in den letzten Jahrzehnten verän<strong>der</strong>t, da die Tiere häufig Probleme hatten. Mo<strong>der</strong>ne<br />

Haltungssysteme für Nutztiere und Versuchstiere führen oft zu Störungen des <strong>Verhaltens</strong> und<br />

<strong>der</strong> Physiologie, weil diese Haltungssysteme oft nicht die Minimalstandards <strong>der</strong> Tiere<br />

erfüllen. Der Mensch ist moralisch verpflichtet, Tiere in einem Zustand optimalen<br />

Wohlbefindens zu halten. Die Umwelt eines Tieres ist nicht vergleichbar mit unserer Umwelt


22 Literaturübersicht<br />

und deshalb können scheinbar kleine Verän<strong>der</strong>ungen <strong>der</strong> Haltung, wie Belüftung, Hygiene<br />

und Pflege, oft dramatische Auswirkungen auf die Tiere haben (VAN ZUTPHEN et al. 1995).<br />

Bei <strong>der</strong> Einführung neuer Haltungsmethoden ist zu bedenken, dass in <strong>der</strong> Laborhaltung eine<br />

hohe Tierzahl betroffen ist, und dass die Wie<strong>der</strong>holbarkeit und Vergleichbarkeit <strong>der</strong> Versuche<br />

durch Standardisierung gewährleistet sein muss. Sie dient dazu Risiken <strong>der</strong> Fehlinterpretation<br />

von Versuchsergebnissen zu minimieren (MILITZER 1986).<br />

Nach MEIER (2001) und SUNDRUM (1994) würden bei standardisierter Haltung die<br />

Bedürfnisse <strong>der</strong> Tiere vernachlässigt. Zudem würden exakt identische Bedingungen die<br />

Aussagekraft von Forschungsresultaten in <strong>der</strong> Relevanz beschränken. Nach HOLLMANN<br />

und BEUERBERG (1990) ist es unbedingt notwendig, dass Tiere ihrer Art und ihren<br />

Bedürfnissen entsprechen angemessen gehalten werden, da es sonst zu <strong>Verhaltens</strong>störungen<br />

kommen kann. Nach BURKE (1992) entstehen viele Krankheitsbil<strong>der</strong> bei Nagern durch<br />

fehlerhafte Haltung.<br />

2.4.5 Einsatz <strong>der</strong> <strong>Mongolischen</strong> <strong>Wüstenrennmaus</strong> in <strong>der</strong> Forschung<br />

Die Tiere werden für Forschungen im Bereich <strong>der</strong> Human-Akustik verwendet. Die<br />

Hörsensitivitätskurve ist <strong>der</strong> des Menschen sehr ähnlich. Zudem leiden die Tiere praktisch nie<br />

an einer Otitis media und machen sie somit zu einem geeigneten Modell (DANIEL u.<br />

LOESCHE 1975).<br />

Auf dem Gebiet <strong>der</strong> Parasitologie werden die Tiere vielfältig eingesetzt. Sie sind anfällig für<br />

Toxoplasmose, Echinococcose, Babesiose und Leishmaniose (ROBINSON 1975).<br />

Bakterielle Erkrankungen mit Yersinia enterocolitica, Listeria monocytogenes, Bacillus<br />

anthracis, Staphylococcus aureus und zahlreichen an<strong>der</strong>en Bakterienarten und <strong>der</strong>en Therapie<br />

werden ebenfalls an Meriones unguiculatus erforscht. Außerdem sind die Tiere sehr<br />

empfänglich für Viren, insbeson<strong>der</strong>e für respiratorische Viruserkrankungen (ROBINSON<br />

1976).<br />

Da die Tiere sich als relativ resistent gegen Röntgenstrahlung erweisen, werden sie ebenfalls<br />

in <strong>der</strong> Krebsforschung eingesetzt.


Literaturübersicht 23<br />

Im Vergleich zu Mäusen und Hamstern zeigen Mongolische Wüstenrennmäuse eine<br />

langsamere spät-pränatale Entwicklung. Diesen Umstand nutzt man in <strong>der</strong> Forschung aus, um<br />

pharmakologische Versuche bei trächtigen Tieren durchzuführen, wenn ein exaktes Timing<br />

<strong>der</strong> Medikamentenapplikation und die Erholung des Embryos wichtig sind (ROBINSON<br />

1978).<br />

Da 20 % <strong>der</strong> Tiere zu epileptischen und kataleptischen Anfällen bei Stress neigen, sind sie ein<br />

beliebtes Tier in <strong>der</strong> neuronalen Forschung, sowie in <strong>der</strong> Epilepsieforschung. Hier dienen sie<br />

als Modell für die ideopathische Epilepsie des Menschen (RICHARDSON 1997; VAN<br />

ZUTPHEN et al. 1995; LÖSCHER 1986).<br />

Mongolische Wüstenrennmäuse zeigen einen hohen Serum- und Leber-Cholesterinspiegel,<br />

sogar unter einer relativ fettarmen Diät. Sie werden deshalb für Untersuchungen des<br />

Cholesterinstoffwechsels und <strong>der</strong> experimentellen Atherosklerose benutzt (VAN ZUTPHEN<br />

et al. 1995).<br />

2.5 Zucht <strong>der</strong> <strong>Mongolischen</strong> <strong>Wüstenrennmaus</strong><br />

2.5.1 Management<br />

Sowohl ALLANSON (1970) als auch HARTMANN et al. (1994) raten in <strong>der</strong> Laborhaltung<br />

zu monogamer Haltung. Die Paarbildung <strong>der</strong> <strong>Mongolischen</strong> Wüstenrennmäuse sollte vor <strong>der</strong><br />

8. Lebenswoche stattfinden, da dann Aggressionen und die daraus entstehenden Kämpfe und<br />

Verletzungen weitgehend ausgeschlossen sind. Die Weibchen sind polyöstrisch. Bei einem<br />

Lichtregime von 12:12 Stunden kann man mit ihnen das gesamte Jahr über züchten (VAN<br />

ZUTPHEN et al. 1995).<br />

Bereits am Tag <strong>der</strong> Geburt deckt das Männchen das Weibchen erneut. Diese wirft dann aber<br />

nicht nach 24-26 Tagen. Die Geburt verzögert sich, wenn das Tier in <strong>der</strong> Hochlaktation ist,<br />

um 1,9 Tage pro Nachkomme (AGREN 1984).<br />

In <strong>der</strong> Literatur wird relativ früh -bereits in den 60er Jahren- geraten, den Tieren eine Nestbox<br />

zur Verfügung zu stellen, um darin die Jungtiere aufzuziehen und um eine<br />

Rückzugsmöglichkeit vor störenden Umwelteinflüssen zu bieten, ohne dass dabei genau auf


24 Literaturübersicht<br />

Größe und Aussehen so einer Box eingegangen wird (SAMBRAUS 1981; BROOM u.<br />

JOHNSON 1983; BEAVER1989; BRAIN 1992).<br />

2.5.2 Absetzen<br />

Die empfohlene Säugedauer schwankt zwischen drei und fünf Wochen. Während<br />

SCHWENDTKER (1963) die Tiere mit 21 Tagen absetzt, empfehlen die meisten Autoren das<br />

Absetzen mit 28 Lebenstagen (KORNERUP HANSEN 1990; FIELD u. SIBOLD 1999).<br />

Nach dem Absetzen können die Jungtiere in gleichgeschlechtlichen Gruppen gehalten werden<br />

(ALLANSON 1970) o<strong>der</strong> schon als monogame Paare vergesellschaftet werden.<br />

Die Geschlechtsdifferenzierung gelingt bereits nach <strong>der</strong> Geburt. Bei den unbehaarten<br />

Neugeborenen sind beim weiblichen Tier Zitzenanlagen erkennbar. Beim Männchen ist die<br />

Genitalpapille prominenter und besitzt eine runde Öffnung. Beim adulten Tier ist <strong>der</strong><br />

Anogenitalbstand des Männchens doppelt so groß wie beim Weibchen, bei Geschlechtsreife<br />

sind das dunkelpigmentierte Scrotum und die Vergrößerung <strong>der</strong> Ventraldrüse erkennbar.<br />

Insgesamt sind die Männchen etwas kräftiger als die Weibchen und ihr Schädel ist breiter<br />

(METTLER 1999).<br />

2.6 Wohlbefinden<br />

2.6.1 Definition<br />

Gesundheit, Zufriedenheit, die Erfüllung sozialer und ethologischer Bedürfnisse und normales<br />

Verhalten sind kennzeichnend für Wohlbefinden (TSCHANZ et al. 2001; VAN PUTTEN<br />

1982). Das Tier muss frei von negativen Empfindungen sein. Anknüpfungspunkt für diesen<br />

Zustand sind die gesamten Lebensumstände eines Tieres. Laut VAN PUTTEN (1982) ist<br />

Wohlbefinden ein Zustand physischer und psychischer Harmonie. Jedes Tier strebt zu je<strong>der</strong><br />

Zeit danach, seine körperlichen Bedürfnisse, sowie seine Bedürfnisse hinsichtlich des<br />

<strong>Verhaltens</strong> optimal zu befriedigen.<br />

Die Unterordnung des Zustandes eines Tieres unter den Begriff des Wohlbefindens unterliegt<br />

subjektiven Eindrücken. Im Zusammenhang mit veterinämedizinisch allgemein anerkannten<br />

Grundsätzen ist aber eine genaue Bestimmung dieses Merkmals durchaus gewährleistet. In


Literaturübersicht 25<br />

<strong>der</strong> Regel wird man das Wohlbefinden eines Tieres bejahen können, wenn bei seiner Haltung<br />

und Unterbringung die gesetzlichen Vorschriften, die im Einklang mit dem §1 des<br />

Tierschutzgesetz stehen müssen, hinreichend beachtet worden sind (HACKBARTH u.<br />

LÜCKERT 2002). TSCHANTZ (1986) hat das Bedarfsdeckungs– und<br />

Schadensvermeidungskonzept entwickelt zur wissenschaftlichen Beurteilung von<br />

Befindlichkeiten bei Tieren. Sie sind die Grundvoraussetzung für Wohlbefinden. Durch seine<br />

Sinnesorgane ist das Tier in <strong>der</strong> Lage, die in seiner Umwelt befindlichen bedarfsdeckenden<br />

Objekte o<strong>der</strong> Situationen zu erkennen und mittels spezifischer <strong>Verhaltens</strong>leistungen zu<br />

nutzen. Das Tier erreicht damit Bedarfsdeckung und Schadensvermeidung, vorausgesetzt, die<br />

Umgebung enthält die tierspezifischen Bedingungen und das Tier ist durch seine Erbanlagen<br />

und/o<strong>der</strong> Anpassungsfähigkeit zu entsprechend spezifischem Verhalten fähig. Erst wenn<br />

sowohl die Bedürfnisse und das <strong>Verhaltens</strong>muster von Tieren, sowie ihre<br />

Adaptationsfähigkeit genau bekannt sind, können die Umgebungsbedingungen für die Tiere<br />

optimiert werden. Eine solche Haltungssituation wäre dann als tiergerecht zu bezeichnen.<br />

Ein gutes Wohlbefinden ist dadurch gekennzeichnet, dass das Tier eine große Vielfalt an<br />

normalen <strong>Verhaltens</strong>weisen zeigt und in <strong>der</strong> Lage ist sich fortzupflanzen (BROOM u.<br />

JOHNSON 1993; TSCHANZ 1997). Laut MILITZER und BÜTTNER (1994) ist<br />

Spielverhalten ebenfalls ein Anzeichen eines guten Wohlbefindens. Die Kontrolle über die<br />

Umwelt ist weiterhin sehr wichtig für das Wohlbefinden eines Tieres. So ist <strong>der</strong> ständige<br />

Zugang zu Trinkwasser essentiell (WÜNNEMANN 2002). Ebenso ist es notwendig, Tieren<br />

die Möglichkeit zu bieten, sich innerhalb ihrer Umwelt zurückzuziehen. So ist das Anbieten<br />

einer Nestbox ebenfalls eine Möglichkeit, das Wohlbefinden zu steigern (BROOM u.<br />

JOHNSON 1983).<br />

Ein mangelndes Wohlbefinden ist dagegen gekennzeichnet durch eine geringere<br />

Lebenserwartung, vermin<strong>der</strong>tes Wachstum, reduzierte Fortpflanzung, Krankheiten und<br />

Immunsuppressionen. Normales Verhalten wird immer weniger gezeigt und es kommt zu<br />

Stereotypien.


26 Literaturübersicht<br />

2.6.2 Definition: „artgemäß“<br />

Die in §2 des Tierschutzgesetzes verwendeten Begriffe wie „artgemäß“ und<br />

„verhaltensgerecht“ lassen nicht erkennen, an welche gesetzlichen Richtlinien man sich zu<br />

halten hat (HACKBARTH u. LÜCKERT 2002). Erst die auf Grund von §2 a des<br />

Tierschutzgesetzes erlassenen Rechtsverordnungen regeln konkret, wie das Tier gehalten<br />

werden muss. Allerdings ist nicht für jede Tierhaltung eine Rechtsverordnung erlassen<br />

worden. Nach HOLLMANN (1993) und LOEFFLER (1984) ist die Haltung dann artgemäß,<br />

wenn sich nach den Regeln <strong>der</strong> tierärztlichen Kunst o<strong>der</strong> nach an<strong>der</strong>en<br />

naturwissenschaftlichen Kenntnissen keine gestörten körperlichen Funktionen, die auf<br />

Mängel o<strong>der</strong> Fehler in <strong>der</strong> Ernährung und Pflege zurückgeführt werden können, feststellen<br />

lassen.<br />

2.6.3 Definition: „verhaltensgerecht“<br />

Wer ein Tier hält, muss es laut §2 des Tierschutzgesetzes nach seiner Art und seinen<br />

Bedürfnissen entsprechend angemessen ernähren, pflegen und verhaltensgerecht<br />

unterbringen. Nach HOLLMANN (1993) ist eine Haltung dann verhaltensgerecht, wenn das<br />

angeborene, arteigene und essentielle <strong>Verhaltens</strong>muster des Tieres durch sie nicht so<br />

eingeschränkt o<strong>der</strong> verän<strong>der</strong>t worden ist, dass dadurch Schmerzen, Leiden o<strong>der</strong> Schäden am<br />

Tier selbst o<strong>der</strong> durch ein so gehaltenes Tier an an<strong>der</strong>en entstehen.<br />

2.6.4 Schmerzen, Leiden und Schäden<br />

Schmerzen: 1979 wurde von <strong>der</strong> International Association for the Study of Pain (IASP)<br />

Schmerz wie folgt definiert: „Schmerz ist ein unangenehmes Sinnes- und Gefühlserlebnis, das<br />

in Zusammenhang mit tatsächlicher o<strong>der</strong> potentieller Schädigung steht o<strong>der</strong> mit Begriffen<br />

einer solchen Schädigung beschrieben wird. ZIMMERMANN (1984) ergänzt die Definition<br />

des IASP mit folgendem Wortlaut: „Schmerzen bei Tieren ist eine aversive<br />

Empfindungserfahrung, verursacht durch aktuelle o<strong>der</strong> potentielle Verletzung (Schädigung),<br />

die ihrerseits schützende motorische und vegetative Reaktionen auslöst, sowie erlerntes<br />

Meideverhalten bewirkt und das spezifische Artverhalten - einschließlich des Sozialverhaltens<br />

- modifizieren kann.“ Zu unterscheiden ist zwischen dem körperlichen und dem psychischen


Literaturübersicht 27<br />

Schmerz. Rein begrifflich erfor<strong>der</strong>t <strong>der</strong> Schmerz keine unmittelbare Einwirkung auf das Tier.<br />

Maßgebend ist auch die Fähigkeit des Schmerzempfindens. Liegen keine wissenschaftlichen<br />

Erkenntnisse für die Schmerzempfindlichkeit einer Tierart vor, so muss von <strong>der</strong> gleichen<br />

Schmerzempfindung, wie beim Menschen ausgegangen werden (HACKBARTH u.<br />

LÜCKERT 2002).<br />

Aus den Definitionen ist zu entnehmen, dass es sich bei Schmerz um ein subjektives<br />

Phänomen handelt, d.h. Schmerzen sind einerseits unerfreuliche Erfahrungen, denen eher aus<br />

dem Weg gegangen wird. An<strong>der</strong>erseits sind Schmerzen physiologische Warnfunktionen, um<br />

Tiere von Verletzungsquellen und tödlichen Gefahren fernzuhalten (MOYAL 1999).<br />

Die Nervensysteme von Wirbeltieren sind mit Nervenzellen ausgestattet, die bei Einwirkung<br />

noxischer, d.h. gewebsschädigen<strong>der</strong> o<strong>der</strong> potentiell gewebsschädigen<strong>der</strong>, Reize auf den<br />

Organismus aktiviert werden. Die Aufnahme, Weiterleitung und Verarbeitung dieser<br />

noxischen Informationen durch das periphere und zentrale Nervensystem wird als<br />

Nozizeption bezeichnet. Diese Reize aktivieren diejenigen Neurone des ZNS, die für die<br />

Steuerung des <strong>Verhaltens</strong> und <strong>der</strong> vegetativen Reaktionen verantwortlich sind.<br />

Da es für jedes Individuum biologisch sinnvoll erscheint, physische Bedrohungen für das<br />

eigene Leben zu vermeiden, dürfen ebenso nie<strong>der</strong>e Wirbeltierarten neuronale Systeme zur<br />

Erkennung und Vermeidung von Gewebsschädigungen besitzen. Inwieweit die nozizeptiven<br />

Prozesse mit erlebter Schmerzempfindung einhergehen, kann aber letztendlich nicht<br />

abschließend beantwortet werden.<br />

Leiden: Heutzutage wird selbstverständlich von <strong>der</strong> Leidensfähigkeit von Tieren, v. a. bei den<br />

höher entwickelten Tierarten, ausgegangen. Gesetzlich ist diese Auffassung im Europäischen<br />

Übereinkommen vom 18. März 1986 zum Schutz <strong>der</strong> für Versuche und an<strong>der</strong>e<br />

wissenschaftliche Zwecke verwendeten Wirbeltiere verankert. Hier wir auf die ethische<br />

Verpflichtung des Menschen hingewiesen, „alle Tiere zu achten und ihre Leidensfähigkeit<br />

und ihr Erinnerungsvermögen angemessen zu berücksichtigen.“<br />

Leiden sind alle vom Begriff des Schmerzes nicht erfassten Beeinträchtigungen des<br />

Wohlbefindens, die über Unbehagen hinausgehen und eine gewisse Zeitspanne fortdauern.<br />

Maßgebend hierfür ist die Leidensfähigkeit eines Tieres, welche an die Höhe seiner


28 Literaturübersicht<br />

Organisationsstufe innerhalb des Tierreiches gebunden ist. Eindeutig unter diesen Begriff<br />

fallen seelische und psychische Ängste und Qualen. Der Ausdruck <strong>der</strong> Empfindungen erfolgt<br />

beim Tier weniger komplex, als beim Menschen, sie stellen sie offener und unverstellter zur<br />

Schau. Leiden kann als Konsequenz von Schmerzen entstehen und immer dann auftreten,<br />

wenn das Tier längerfristig einer belastenden Situation ausgesetzt ist, welches seine<br />

Anpassungsvermögen übersteigt (HACKBARTH u. LÜCKERT 2002).<br />

HARTMANN (1986) hat fünf Grundformen des Leidens bei kranken Menschen definiert. Sie<br />

umfassen Nie<strong>der</strong>geschlagenheit – Schmerz – Angst – Scham – Sterblichkeitsbewusstsein.<br />

Während die ersten drei Formen auch bei leidenden Tieren zu beobachten sind, haben Scham<br />

und Sterblichkeitsbewusstsein bei ihnen keine Bedeutung. So vernachlässigen leidende Tiere<br />

z. B. ihre Körperpflege. Im Gegensatz zum Menschen setzen sie sie nicht aufgrund eines<br />

Schamgefühls fort. Weiterhin sehen Tiere sich nicht genötigt, aus dem<br />

Sterblichkeitsbewusstsein heraus mit <strong>der</strong> Nahrungsaufnahme fortzufahren.<br />

LOEFFLER (1993) bezeichnet Leid als Unlustgefühl. Nach SAMBRAUS (1982) muss man<br />

materielle von immateriellen Leiden unterscheiden. Sie treten auf, wenn ein Tier ein<br />

Verhalten ausüben möchte und durch bestimmte Haltungsbedingungen daran gehin<strong>der</strong>t wird.<br />

SALOMON et al. (2001) beschreibt, dass eine vom Menschen geschaffene und an<br />

Umwelteindrücken begrenzte Umwelt tierisches Verhalten in <strong>der</strong> Weise einschränkt, dass<br />

Situationen <strong>der</strong> Unsicherheit und des Kontrollverlustes entstehen können, welche er als eine<br />

Form des Leidens beschreibt.<br />

Wie beim Schmerz handelt es sich also auch beim Leiden um eine rein individuelle, nicht<br />

vollständig nachvollziehbare Empfindung, die mit wissenschaftlich messbaren Methoden nur<br />

sehr schwer zugänglich ist (WOLFF 1993). Wie<strong>der</strong>um sind eine genaue Beobachtungsgabe<br />

und biologische als auch ethologische Kenntnisse <strong>der</strong> einzelnen Tierarten erfor<strong>der</strong>lich, um<br />

Leiden bei Tieren zu diagnostizieren. Eine belastende Situation kann sich beispielsweise aus<br />

Unwohlsein entwickeln, je nachdem, wie lange und mit welcher Intensität dieser Zustand<br />

anhält. Eine erhebliche Rolle spielen dabei Einwirkungen, die <strong>der</strong> Wesensart des Tieres,<br />

seinen Instinkten, seinem Selbst- und Arterhaltungstrieb zuwi<strong>der</strong>laufen und deshalb als<br />

lebensfeindlich empfunden werden.


Literaturübersicht 29<br />

Unwohlsein stellt sich dabei als Mißverhältnis zwischen <strong>der</strong> aktuellen Umgebungssituation<br />

und dem inneren Normwert dar. Das Tier wird versuchen, diese Diskrepanz mit<br />

motivationellen <strong>Verhaltens</strong>weisen zu überbrücken, um so den Normwert wie<strong>der</strong> zu erreichen.<br />

Gelingt dies dem Tier nicht, so kann <strong>der</strong> Zustand des Leidens eintreten. Folgereaktionen<br />

wären z. B. <strong>Verhaltens</strong>störungen und –anomalien, wie zum Beispiel Stereotypien. Folglich<br />

sind leidende Tiere daran zu erkennen, dass sie starke Abweichungen vom Normalverhalten<br />

zeigen und nicht in gewohnter Weise auf Umgebungsreize reagieren (MOYAL 1999).<br />

Schäden: Schaden an einem Tier liegt dann vor, wenn <strong>der</strong> Zustand eines Tieres, indem es<br />

sich befindet, sich zum Schlechteren verän<strong>der</strong>t. Dazu ist keine Dauerwirkung notwendig, eine<br />

vorübergehende Beeinträchtigung ist ausreichend. Schmerzen und Leiden können einem<br />

Schaden vorausgehen, ihn begleiten, o<strong>der</strong> ihm nachfolgen. Schäden können physischer und<br />

psychischer Natur sein. Der Schaden setzt keine Schmerz- o<strong>der</strong> Leidensfähigkeit des Tieres<br />

voraus. Als Anzeichen von Schäden gelten beispielsweise Abmagerung, Unfruchtbarkeit,<br />

Etho- o<strong>der</strong> Psychopathien, sowie Wunden und Gleichgewichtsstörungen (HACKBARTH u.<br />

LÜCKERT 2002).<br />

Beim Säuger sind <strong>Verhaltens</strong>muster zur Schadensbegrenzung und/o<strong>der</strong> –vermeidung meist<br />

ererbt o<strong>der</strong> unterliegen frühen Prägungseinflüssen. Sie ermöglichen dem Tier, sich erfolgreich<br />

mit <strong>der</strong> Umwelt und sich selbst auseinan<strong>der</strong>zusetzen (TSCHANZ 1993).<br />

In den Tierschutzgesetzen und –verordnungen ist unter dem Begriff „Schäden“ weniger ein<br />

Schaden allgemeiner Art gemeint, son<strong>der</strong>n einer, <strong>der</strong> zu Schmerzen und Leiden führt. Mit<br />

an<strong>der</strong>en Worten: Beim Schaden geht es hier nicht um die umfassende Bedeutung dieses<br />

Begriffes. Vielmehr soll er als Maßstab dazu dienen, Schmerzen und Leiden zu objektivieren,<br />

denn Störungen des <strong>Verhaltens</strong> und <strong>der</strong> Physiologie sowie morphologische Schäden sind im<br />

Gegensatz zu Schmerzen bzw. Befindlichkeiten naturwissenschaftlich beschreibbare,<br />

quantifizierbare und interpretierbare Parameter.<br />

2.6.5 Stress<br />

Tiere haben die Fähigkeit, sich auf wechselnde Umweltbedingungen mit einer Reihe<br />

verschiedenster körpereigener Anpassungsmechanismen einzustellen. Sie dienen dazu,<br />

lebenswichtige innere Betriebsgrößen (Homöostase) konstant zu halten. Eine wechselnde


30 Literaturübersicht<br />

Umweltbedingung, die einen solchen Anpassungsmechanismus auslöst wird unter dem<br />

Begriff Stress zusammengefasst, <strong>der</strong> das Tier in freier Natur ständig ausgesetzt ist.<br />

Übersteigen externe Reize die Adaptationsmöglichkeit des Tieres, tritt Distress als Vorstufe<br />

des Leidens auf, welcher wie<strong>der</strong>um eine Belastung für das Tier darstellt. Darüber hinaus kann<br />

dieser Zustand zu einer erheblichen Beeinträchtigung von Versuchsergebnissen führen, die<br />

durch frühzeitiges Erkennen und Beseitigen potentieller stressauslösen<strong>der</strong> <strong>Ursachen</strong> reduziert<br />

bzw. vermieden werden kann.<br />

„Stress“ entsteht, wenn ein Tier einer unangenehmen Situation ausgesetzt ist, welche<br />

nachteilige Effekte hervorruft (BROOM u. JOHNSON 1983). Die Bedrohung, die den Stress<br />

auslöst, wird als Stressor bezeichnet. Labortiere sind sehr vielen Stressoren ausgesetzt<br />

(WÜRBEL u. STAUFFACHER, 1995a). Versuchsbedingt kann es zu Stress durch Schmerzen<br />

und Infektionen kommen, aber auch psychischer Stress, wie Angst, Einzelhaltung o<strong>der</strong><br />

externer Stress durch Temperatur und Lärm sind nicht zu vernachlässigen. Stress ist ein<br />

Syndrom, welches viele Än<strong>der</strong>ungen in neurochemischen und metabolischen Prozessen<br />

beinhaltet. MOBERG (1985) äußerte sich zu Stress wie folgt: „Je<strong>der</strong> externe Reiz, <strong>der</strong> die<br />

Homöostase bedroht, kann als Stressor bezeichnet werden und jede verän<strong>der</strong>te biologische<br />

Funktion die auftritt, sobald das Tier seine Homöostase beizubehalten versucht, zeigt die<br />

Stressantwort des Tieres.“<br />

Diesen Definitionen ist gemeinsam, dass es sich bei Stress um einen Effekt handelt, <strong>der</strong> durch<br />

externe (d.h. physikalische und Umgebungs-) Reize ausgelöst wird o<strong>der</strong> durch interne (d.h.<br />

physiologische o<strong>der</strong> psychologische) Faktoren beeinflusst wird, die ihrerseits wie<strong>der</strong>um als<br />

Stressor bezeichnet werden und eine Bedrohung <strong>der</strong> Homöostase darstellen. Stressreaktionen<br />

sind daher nicht zwangsläufig als bedrohlich für das Tier einzustufen, son<strong>der</strong>n notwendig,<br />

sich verän<strong>der</strong>ten Gegebenheiten anzupassen (EWBANK 1985).<br />

2.6.6 Coping<br />

Coping bezeichnet <strong>Verhaltens</strong>reaktionen, die Stress, <strong>der</strong> durch physiologische Parameter<br />

gemessen wird, verringern. Beseitigen Flucht- o<strong>der</strong> agonistisches Verhalten erfolgreich die<br />

Wirkung eines Furcht- o<strong>der</strong> Stressreizes, so liegt Copingverhalten vor. Dieser Copingtyp, <strong>der</strong><br />

darauf gerichtet ist, den für die Belastung verantwortlichen Reiz zu kontrollieren, wird als


Literaturübersicht 31<br />

problembezogenes Coping bezeichnet. Ist es einem Tier anfangs nicht gelungen, eine<br />

Belastungssituation zu bewältigen, so kann es später Copingmuster entwickeln, die seine<br />

physiologische Homöostase teilweise, o<strong>der</strong> vollständig wie<strong>der</strong>herstellen, auch wenn die<br />

auslösende Reizsituation weiter fortbesteht. Es liegt dann emotionsbezogenes Coping vor<br />

(ANDERSON u. EDNEY 1994).<br />

Nach BROOM u. JOHNSON (1983) erfolgt <strong>der</strong> Ausgleich von Stress sowohl auf <strong>der</strong><br />

mentalen und auf <strong>der</strong> physiologischen Ebene. Coping bezeichnet also die Möglichkeiten und<br />

Fähigkeiten eines Tieres auf eine Stresssituation zu reagieren, um die Homöostase des<br />

Körpers wie<strong>der</strong> herzustellen. Je besser das Coping gelingt, desto weniger belastend ist die<br />

Stresssituation für das Tier.<br />

2.7 <strong>Verhaltens</strong>törungen<br />

2.7.1 Definition<br />

Eine <strong>Verhaltens</strong>törung liegt nach MEYER (1984) dann vor, wenn das Verhalten in Bezug auf<br />

Modalität, Frequenz o<strong>der</strong> Intensität erheblich von dem arttypischen Verhalten abweicht und<br />

Schäden hervorrufen kann. Die Störung kann permanent o<strong>der</strong> wie<strong>der</strong>holt auftreten und ererbt<br />

o<strong>der</strong> erworben sein (FÖLSCH et al. 1993). WECHSLER (1990) beschreibt<br />

<strong>Verhaltens</strong>störungen als einen Indikator einer Überfor<strong>der</strong>ung <strong>der</strong> evoluierten<br />

<strong>Verhaltens</strong>steuerung. Tiere können dann <strong>Verhaltens</strong>störungen entwickeln, wenn ihre<br />

Haltungsbedingungen so gestaltet sind, dass diese erheblich von den Umgebungsbedingungen<br />

abweichen, in denen die evolutionäre Anpassung stattgefunden hat. Das heißt, dass die<br />

künstliche Umwelt vom natürlichen Lebensraum <strong>der</strong> Spezies so abweicht, dass eine<br />

Anpassung an diese nicht möglich ist (WECHSLER 1993; GÄRTNER 1989). Nach<br />

SAMBRAUS (1982) ist ein Tier mit einer <strong>Verhaltens</strong>anomalie nicht als gesund o<strong>der</strong> normal<br />

zu bezeichnen.


32 Literaturübersicht<br />

Er unterglie<strong>der</strong>t die <strong>Ursachen</strong> für <strong>Verhaltens</strong>störungen in 5 Punkte:<br />

1. Symptomatisch: Trauma, Infektion<br />

2. Zentralnervös: Infektiös o<strong>der</strong> traumatisch<br />

3. Mangelbedingt: dem Körper fehlen Substanzen und das daraus<br />

resultierende Verhalten führt nicht zur<br />

Beseitigung des Mangels<br />

4. Endogen: durch Verän<strong>der</strong>ungen des Nervensystems o<strong>der</strong><br />

des endokrinologischen Systems<br />

5. Reaktiv: Folge auf ungeeignete Umweltbedingungen<br />

Ethopathien sind höchstgradig ausgeprägte funktionelle krankhafte <strong>Verhaltens</strong>störungen. Sie<br />

beinhalten sogar z. T. organische Verän<strong>der</strong>ungen und sind nur schwer, o<strong>der</strong> nicht reversibel<br />

(MEYER 1984).<br />

MILITZER (1990) beschreibt <strong>Verhaltens</strong>törungen als Handlungen, welche von <strong>der</strong><br />

Ursprungshandlung in Häufigkeit und Variation abweichen. <strong>Verhaltens</strong>störungen rufen beim<br />

Tier selbst, o<strong>der</strong> bei seinen Artgenossen Schmerzen und Schäden hervor und sind Ausdruck<br />

schlechter Befindlichkeit (BUCHHOLZ 1994; SCHMITZ 1994). Sie stellen<br />

<strong>Verhaltens</strong>abweichungen vom Normalverhalten in Raum und Zeit sowie Frequenz und<br />

Sequenz dar (GRAUVOGL 1972).<br />

Nach TSCHANZ (1994) kann man mit <strong>der</strong> Analyse <strong>der</strong> <strong>Verhaltens</strong>steuerung in<br />

Zusammenhang mit Bedarfsdeckung und Bedürfnisbefriedigung ermitteln, welche<br />

Bedingungen zum emotionalen Zustand „angenehm sicher“ bzw. „unangenehm unsicher“ und<br />

damit zum Wohlbefinden o<strong>der</strong> Leiden führen.


Literaturübersicht 33<br />

Um <strong>Verhaltens</strong>störungen entgegen zu wirken, gibt es laut SALOMON et al. (2001)<br />

verschiedene Möglichkeiten:<br />

- Spielzeug<br />

- Futtersuche zur Reduzierung <strong>stereotypen</strong> und aggressiven <strong>Verhaltens</strong><br />

- sensorische Stimulation<br />

- manipulierbare Objekte<br />

- Unterschlupfmöglichkeiten<br />

- soziale Interaktion<br />

2.7.2 Stereotypien<br />

Tiere in Gefangenschaft zeigen Bewegungsabläufe, die aus einem o<strong>der</strong> mehreren<br />

<strong>Verhaltens</strong>elementen bestehen, die andauernd wie<strong>der</strong>holt werden und die an spezielle<br />

räumliche Strukturen <strong>der</strong> Haltungsumgebung gebunden sind. Es sind Bewegungsmuster,<br />

welche gleichförmig wie<strong>der</strong>holt werden und keine erkennbare Funktion erfüllen. Sie<br />

entwickeln sich aus <strong>Verhaltens</strong>elementen des natürlichen <strong>Verhaltens</strong>repertoirs. Solche<br />

Stereotypien werden als Indikator dafür verwendet, dass Haltungssysteme nicht den<br />

Anfor<strong>der</strong>ungen eines Tieres an seine Umwelt entsprechen (KÖNIG u. WAIBLINGER 2001).<br />

Bis heute fehlt aber eine einheitliche Theorie zur Verursachung und Funktion von<br />

Stereotypien, da im Verhältnis zur Komplexität des <strong>Verhaltens</strong> nur wenig schlüssige<br />

experimentelle Studien vorliegen (WIEDENMAYER 1995). Stereotypien können als<br />

Ritualisierung von Konfliktverhalten angesehen werden. Untersuchungen zeigen, dass<br />

Stereotypien durch den Einsatz von Opiatantagonisten reduziert werden können. Das lässt<br />

darauf schließen, dass das Auftreten von Stereotypien mit <strong>der</strong> Freisetzung von analgetisch<br />

wirkendem Endorphin aus dem Zentralnervensystem gekoppelt ist. Diese Befunde belegen<br />

die funktionelle Bedeutung von Stereotypien. Somit können Stereotypien eine signifikant<br />

biologische Bedeutung für das Tier haben und das Auftreten von Stereotypien weistdarauf<br />

hin, dass sich die Tiere in einem Zustand von chronischem Stress befinden. Deshalb sollten


34 Literaturübersicht<br />

Haltungsbedingungen, bei denen es zu Stereotypien kommt, vermieden werden (VAN<br />

ZUTPHEN et al. 1995).<br />

Stereotypien sind laut WÜRBEL u. STAUFFACHER (1994) keine Bewältigungsstrategie in<br />

Bezug auf chronischen Haltungsstress, son<strong>der</strong>n vielmehr die Folge belasten<strong>der</strong> Ereignisse<br />

zum Zeitpunkt ihres Entstehens. DANTZER (1990) konnte z. B. nicht nachweisen, dass Tiere<br />

Stereotypien zeigen, um sich über die Stimulation <strong>der</strong> Ausschüttung endogener Opiate selbst<br />

zu narkotisieren und damit die emotionale Situation unter von Konflikt, Frustration und Stress<br />

geprägten Haltungsbedingungen zu verbessern. Die Reduktion von Stressbelastung ist keine<br />

Eigenschaft von Stereotypien, wohl aber manchmal ein Nebeneffekt. DANTZER (1986)<br />

macht für die Entwicklung einer Stereotypie vom Ursprungsverhalten zur Endform einen<br />

neuronalen Sensitivierungsprozeß verantwortlich. Die wie<strong>der</strong>holt aktivierten, für die<br />

motorische Steuerung zuständigen Neuronen im dopaminergen System werden sensitiviert,<br />

was einer Schwellenreizerniedrigung gleichkommt. Dies hat zur Folge, dass das<br />

entsprechende <strong>Verhaltens</strong>muster leichter ausgelöst und überdies zunehmend unabhängig von<br />

Umgebungsreizen wird.<br />

Laut MASON (1991) werden die <strong>Verhaltens</strong>elemente, welche Stereotypien auslösen, als<br />

Ursprungselemente bezeichnet. Stereotypien sind weit verbreitet in Haltungssystemen, die<br />

durch räumliche Einengung, Reizarmut und nicht artgemäße Gruppenzusammensetzung und<br />

die damit einhergehende Deprivatisierung charakterisiert sind (WIEDENMAYER 1991).<br />

Tiere mit einer Stereotypie sind in <strong>der</strong> Integrität ihres <strong>Verhaltens</strong> beeinträchtigt. Ist es einem<br />

Tier nicht gelungen, seine Belastungssituation z. B. durch Flucht zu bewältigen, so kann das<br />

später zu Stereotypien führen (ANDERSON u. EDNEY 1994). Stereotypien verschlechtern<br />

dann das Wohlbefinden, wenn mehr als 10% <strong>der</strong> Wachzeit stereotyp verbracht wird.<br />

Versuchstiere leben unter Laborbedingungen in standardisierten Umwelten. Sowohl früher,<br />

als auch heute geht man davon aus, durch diese Haltungsform die Vergleichbarkeit von<br />

Studien besser gewährleisten zu können. Nicht jede standardisierte Haltungsform löst<br />

zwangsläufig Stereotypien aus. Es mehren sich aber die Hinweise, dass Stereotypien selbst<br />

massive Verän<strong>der</strong>ungen in den Tieren auslösen, die die Interpretation <strong>der</strong> Resultate<br />

erschweren und die Variabilität in den untersuchten Versuchsgruppen erhöhen können<br />

(WÜRBEL u. STAUFFACHER 1995).


Literaturübersicht 35<br />

2.7.3 Stereotypien bei <strong>Mongolischen</strong> Wüstenrennmäusen<br />

Trotz Domestikation sind die meisten <strong>Verhaltens</strong>eigenschaften und Regulationsmechanismen<br />

bei <strong>der</strong> <strong>Mongolischen</strong> <strong>Wüstenrennmaus</strong> noch vorhanden. Die Aufzucht und Haltung in nichtstrukturierten<br />

Laborkäfigen wird diesen Anfor<strong>der</strong>ungen in keiner Weise gerecht, so dass<br />

neben abnormen <strong>Verhaltens</strong>weisen auch Stressreaktionen und verän<strong>der</strong>te Hirnfunktionen die<br />

Folge sind. Dies alles beeinflusst natürlich auch den experimentellen Wert <strong>der</strong> Ergebnisse<br />

(WAIBLINGER 2002). Laut WÜRBEL u. STAUFFACHER (1994) ist es dringend<br />

notwendig, zunächst ethologische Kenntnisse zu berücksichtigen, bevor Haltungsstandards<br />

überarbeitet werden.<br />

Mongolische Wüstenrennmäuse zeigen vor allem <strong>Verhaltens</strong>störungen im Bereich <strong>der</strong><br />

Funktionskreise Lokomotion und Fressverhalten (WEINANDY 1996).<br />

Stereotypes Graben tritt vor allem in standardisierten Käfigen in <strong>der</strong> Versuchstierhaltung auf.<br />

Die Tiere scharren mit den Vor<strong>der</strong>beinen bevorzugt in den Käfigecken, mit den Hinterbeinen<br />

wird die Einstreu zur Seite geworfen. Die Tiere halten die Augen währenddessen geschlossen<br />

und die Ohren sind angelegt. Das Graben, dass dem Erstellen von Höhlen dient, ist in <strong>der</strong><br />

Makrolonhaltung nicht erfolgreich. Reize, die dieses Graben beenden dürften, fehlen. Das<br />

Graben wird wie<strong>der</strong>holt ausgeführt und wird durch eine Art Lernprozess länger und<br />

einförmiger, d. h. stereotyp. GÄRTNER und MILITZER (1993) werten das stereotype<br />

Graben bei <strong>Mongolischen</strong> Wüstenrennmäusen als ein Zeichen für Schmerzen und Schäden.<br />

Bereits ab dem 5. Lebenstag zeigen Wüstenrennmäuse ungerichtete Grabebewegungen. Ab<br />

dem 16. Lebenstag ist deutliches Graben vor allem in <strong>der</strong> Mitte des Käfigs sichtbar. Diese<br />

Grabesequenzen nehmen täglich an Dauer und Intensität zu und richten sich von Tag zu Tag<br />

mehr auf die Rän<strong>der</strong> und Ecken des Käfigs. Ab dem 24. Lebenstag kann man die<br />

Grabebewegungen als stereotyp bezeichnen. Da sich also Grabefolgen aus normalem Graben<br />

entwickeln, muss ein Grenzwert definiert werden, <strong>der</strong> stereotypes Graben von normalem<br />

Graben differenziert (WIEDENMAYER 1995). Er legt diesen bei 12 sec fest.<br />

Stereotypes Gitternagen, das Nagen am Gitter des Käfigdeckels wurde unter<br />

Standardbedingungen von WIEDENMAYER (1997) untersucht. Erstmals tritt diese<br />

Verhalten mit 18 Lebenstagen auf. Die Tiere stehen dabei auf den Hinterbeinen und greifen


36 Literaturübersicht<br />

mit den Vor<strong>der</strong>pfoten an die Gitter des Käfigdeckels. Erreichbar sind dabei vor allem die<br />

Gitter <strong>der</strong> Futterraufe. Die Tiere beißen entwe<strong>der</strong> auf einem bestimmten Punkt einer Stange<br />

o<strong>der</strong> auf mehreren Punkten entlang einer Stange. Die Dauer <strong>der</strong> Sequenzen nimmt mit dem<br />

Alter <strong>der</strong> Tiere zu, Unterschiede zwischen den Geschlechtern sind nicht vorhanden.<br />

WIEDENMAYER (1997) vermutet, dass die Stäbe im Futtertrog mit <strong>der</strong> Fressaktivität<br />

interferieren und Gitternagen induzieren o<strong>der</strong> verstärken können. Eine an<strong>der</strong>e Hypothese ist<br />

die Entwicklung in <strong>der</strong> Ontognese im Kontext mit dem Explorationsverhalten.<br />

WAIBLINGER (1999) fand heraus, dass we<strong>der</strong> die Zugabe von bearbeitbarem Nestmaterial,<br />

noch <strong>der</strong> Ort <strong>der</strong> Futterdarbietung - in <strong>der</strong> Einstreu anstatt in <strong>der</strong> Futterraufe - einen Einfluss<br />

auf das stereotype Gitternagen haben. Sie zog den Schluss, dass das Absetzen und somit das<br />

Trennen von <strong>der</strong> Familie die Entstehung von Gitternagen för<strong>der</strong>t, da es nach dem Absetzen zu<br />

einem signifikanten Anstieg dieses <strong>Verhaltens</strong> kommt. Trennt man Familie und Juvenile erst<br />

nach dem nächsten Wurf, so kann die Entwicklung von Gitternagen reduziert werden. Nach<br />

HOLLMANN (1993) begünstigt die Einzelhaltung die Entwicklung von Gitternagen.<br />

Ob es sich beim Gitternagen um eine Stereotypie handelt, ist nicht hinreichend geklärt. Es<br />

scheint jedoch in <strong>der</strong> frühen Ontogenese durch eine reizarme Käfigumgebung induziert zu<br />

werden, denn unter seminatürlichen Bedingungen kommt es nicht vor.<br />

2.8 Verbesserung <strong>der</strong> Haltungsbedingungen<br />

Haltungsmanagement beinhaltet die tägliche Pflege des Tieres. Dazu gehört die Versorgung<br />

mit Futter und Wasser, das Wechseln <strong>der</strong> Einstreu, <strong>der</strong> Umgang mit dem Tier während eines<br />

Experiments, aber auch die Zeit, die das Tier zur Adaptation an eine neue Umgebung zum<br />

Beispiel nach einem Transport benötigt (WEISS et al. 2003). Ziel ist es, die Belastung des<br />

Tieres so niedrig wie möglich zu halten und seine Grundbedürfnisse zu befriedigen. Um<br />

Angst zu vermeiden, sollte man einen regelmäßigen Umgang mit den Tieren pflegen und<br />

Än<strong>der</strong>ungen vermeiden. Die Umweltbedingungen wie Temperatur, Belüftung und<br />

Luftfeuchtigkeit müssen regelmäßig kontrolliert werden (RUSCH 2003).<br />

Das Eindringen von Keimen, Parasiten und Insekten muss durch geeignete Maßnahmen<br />

verhin<strong>der</strong>t werden. Deshalb sollte nur eine begrenzte Anzahl von Leuten Zugang zu dem


Literaturübersicht 37<br />

Tierraum haben. Zudem sollte Schutzkleidung, wie Kittel, Handschuhe und Überschuhe<br />

getragen werden (SCHIFFER 1997).<br />

Außerdem sollten Tiere regelmäßig auf ihren Gesundheitszustand hin untersucht werden, da<br />

ein krankes Tier nicht in <strong>der</strong> Lage ist sich wohlzufühlen. Deshalb ist es wichtig, geschultes<br />

Personal zu haben, welches in <strong>der</strong> Lage ist, schon erste Anzeichen von Schmerzen und Stress<br />

bei Tieren zu erkennen (SCHIFFER 1997). Das körperliche Wohlbefinden eines Tieres hängt<br />

oft mit dem Wissen und den Fähigkeiten des verantwortlichen Tierpflegers ab. Es sollten nur<br />

gut ausgebildete und hochmotivierte Personen eingestellt werden. Tierpfleger mit einem<br />

Grundverständnis von Tierverhalten sind in <strong>der</strong> Lage, mit den Tieren sicher umzugehen, so<br />

dass Stress und Verletzungsgefahr vermin<strong>der</strong>t werden (HEINE 1998).<br />

Bei Tierexperimenten sollte auf das größtmögliche Wohlbefinden des Tieres geachtet werden.<br />

Aus dem Tierschutzgesetz, in den §§ 7-9, sind folgende Fragestellungen abzuleiten:<br />

- Ist es nötig, Tiere zu verwenden o<strong>der</strong> gibt es alternative Methoden?<br />

- Ist die Spezies, die für den Versuch ausgewählt wurde, die Richtige?<br />

- Wie viele Tiere werden höchstens gebraucht? Es sollten nie mehr Tiere als notwendig<br />

eingesetzt werden.<br />

- Stress und Schmerzen sollten weitgehend vermeidbar bleiben.<br />

- Vorangegangene Versuche sollten nicht wie<strong>der</strong>holt werden, wenn es nicht zwingend<br />

notwendig ist.<br />

Die Tiere sollten vor dem Experiment gesund sein und nicht unter Stress stehen (SCHIFFER<br />

1997).<br />

2.9 Umweltanreicherung, sogenanntes „Environmental Enrichment“<br />

In <strong>der</strong> Zootierhaltung ist die Anreicherung <strong>der</strong> Umwelt („Environmental Enrichment“) schon<br />

lange üblich. So erhalten z.B. Menschenaffen in ihren Gehegen Gerüste, Seile und Spielzeug.<br />

Das Futter müssen sich die Tiere selber in ihrem Gehege suchen, sie erhalten es nicht an


38 Literaturübersicht<br />

einem festen Platz. Ziel dieser Anreicherung ist es, den Tieren eine naturgetreue Umgebung<br />

zu schaffen (BEAVER 1989).<br />

Umweltanreicherungen gibt es mittlerweile auch in <strong>der</strong> Nutztierhaltung, so werden z.B. in <strong>der</strong><br />

Sauenhaltung Stroh als Einstreu angeboten und Ketten zum Spielen. Ferkel erhalten z.B.<br />

Bälle in ihren Flatdecks (SAMBRAUS 1982).<br />

Die aktuelle Standardhaltung von Ratten, Mäusen und Wüstenrennmäusen besteht aus einem<br />

Makrolonkäfig, einer Schicht Einstreu, Wasser und Pelletfutter ad libitum. Diese Einrichtung<br />

bietet den Tieren wenig Möglichkeiten ihre normalen <strong>Verhaltens</strong>weisen auszuführen<br />

(HOLLMANN 1993). Seit 1970 stellt man sich auch in <strong>der</strong> Labortierhaltung die Frage, ob es<br />

möglich ist, das Wohlbefinden <strong>der</strong> Tiere durch sogenanntes „Environmental Enrichment“ zu<br />

steigern, in dem man ihnen die Möglichkeit gibt, ihre natürlichen <strong>Verhaltens</strong>weisen zu zeigen.<br />

Ein weiteres Ziel ist es, eine Umgebung zu schaffen, die den Stress <strong>der</strong> Tiere und die<br />

Entwicklung von abnormem Verhalten reduziert (MEIER 2001; MILITZER 1990).<br />

Umweltanreicherungen müssen jedoch gewisse Bedingungen erfüllen: sie dürfen nicht teuer<br />

sein, müssen in je<strong>der</strong> Haltungsform anwendbar sein und dürfen die jeweiligen<br />

Versuchsvorhaben nicht beeinflussen (VAN ZUTPHEN et al. 1995).<br />

2.9.1 Mögliche Anreicherungen<br />

Es erweist sich als sinnvoll, Tiere in angereicherten Käfigen mit solchen zu vergleichen, die<br />

unter Standardbedingungen leben. Durch vergleichende <strong>Verhaltens</strong>beobachtungen werden die<br />

Unterschiede zwischen den Haltungsformen deutlich. Die Beobachtung erfolgt entwe<strong>der</strong><br />

durch eine Videokamera, o<strong>der</strong> durch sogenannte <strong>Verhaltens</strong>tests (WARD et al. 1991).<br />

Weitere Möglichkeiten, die Auswirkungen von Anreicherungen zu testen, sind<br />

Körpergewicht, Organgewichte, Futter- und Wasserverbrauch sowie Kortikosteron und<br />

an<strong>der</strong>e Hormone als messbare Werte (OLSSEN u. DAHLBORN 2001). Die Möglichkeiten<br />

<strong>der</strong> Anreicherungen sind vielfältig und müssen den jeweiligen Bedürfnissen <strong>der</strong> Tiere<br />

angepasst sein. Sie beziehen sich auf die Einrichtung des Käfigs wie Einstreu, Nestmaterial,<br />

Unterschlupfmöglichkeiten, Klettermöglichkeiten und Futter. Aber auch die Größe und Art<br />

des Käfigs, sowie die Gruppenzusammensetzung bieten hierzu Möglichkeiten. So wird nach


Literaturübersicht 39<br />

POWELL et al. (2000) eine zu geringe Käfiggröße als Ursache für die Entstehung von<br />

Stereotypien angesehen.<br />

2.9.2 Anreicherungen zur Vermin<strong>der</strong>ung, bzw. Verhin<strong>der</strong>ung des <strong>stereotypen</strong> Grabens bei<br />

Meriones unguiculatus<br />

Da die Tiere in ihrer natürlichen Umgebung sehr viel graben, um Gangsysteme und<br />

Nesthöhlen zu erstellen, gab es zwei Hypothesen (WIEDENMAYER 1995):<br />

1. Man muss den Tieren die Möglichkeit geben ihre Grabeaktivität ausführen zu können.<br />

2. Man muss den Tieren den Zugang zu einem Bau geben, <strong>der</strong> ihnen als Rückzugsmöglichkeit<br />

dient.<br />

Die Zugabe von Sand und vermehrter Einstreu än<strong>der</strong>te nichts an dem <strong>stereotypen</strong><br />

Grabeverhalten (WAIBLINGER 1999). Allerdings erzielte WIEDENMAYER (1995) sehr<br />

gute Erfolge dadurch, dass er den Tieren unterhalb ihres Käfigs eine Kammer zur Verfügung<br />

stellte. Diese Kammer war zum einen direkt und zum an<strong>der</strong>en indirekt durch eine Röhre zu<br />

erreichen.<br />

Die Zugabe <strong>der</strong> Kammer ohne Röhre brachte nur einen mäßigen Erfolg. Die Tiere scharrten<br />

zwar vermin<strong>der</strong>t stereotyp in den Ecken, aber ein Ausbleiben war nicht zu beobachten. Im<br />

Gegensatz zu den Kammern mit Röhrenzugang. Tiere, die mit dieser Käfiganreicherung<br />

aufwuchsen, zeigten kaum noch stereotypes Graben. Daraus lässt sich schließen, dass <strong>der</strong><br />

Reiz, die Rückzugsmöglichkeit in eine Baustruktur zu haben, bei den Tieren die<br />

Grabmotivation senkt.<br />

HÜNEMÖRDER (1996) brachte einen umgedrehten, schwarz lackierten Makrolon I-Käfig,<br />

sowie ein Laufrad in das Haltungssystem ein und erzielte hiermit ebenfalls eine<br />

Vermin<strong>der</strong>ung des <strong>stereotypen</strong> Grabens, allerdings nicht so eindeutig, wie WIEDENMAYER<br />

(1995). Sie konnte zudem zwischen Haltungssystemen mit Anreicherung und ohne<br />

Anreicherung keine unterschiedlichen Werte hinsichtlich morphometrischen, histologischen<br />

und endokrinologischen Parametern feststellen.


40 Literaturübersicht<br />

Laut POWELL et al. (2000) soll den Tieren möglichst früh nach dem Absetzen das<br />

Enrichment angeboten werden.<br />

WIEDENMAYER (1995a) hat zudem Versuche gemacht, in denen er die Käfiggröße variiert<br />

hat. Dies brachte aber hinsichtlich des <strong>stereotypen</strong> Grabens keine Verän<strong>der</strong>ung, was auch von<br />

BRÜCKMANN (1997) bestätigt wird. Seine gesamte Forschung zeigte, dass das einzig<br />

Entscheidende das Zufügen einer Box war (WIEDENMAYER u. BRUNNER 1993). Dies<br />

bestätigen auch die Untersuchungen, die VAN DEN BROECK et al. ( 1995) gemacht hat und<br />

die beweisen, dass Mongolische Wüstenrennmäuse Käfige mit einer Rückzugsmöglichkeit in<br />

einen dunklen Bereich bevorzugen.<br />

KÖNIG (2000) kommt zu dem Schluss, das es nur dann zum Ausbleiben des <strong>stereotypen</strong><br />

Grabens kommt, wenn das Enrichment bereits dem juvenilen Tier angeboten wird.<br />

WAIBLINGER (2002) erzielte mit Zufügen einer undurchsichtigen Nestbox, welche durch<br />

eine rechtwinklige Röhre erreichbar ist und sich am Ende des Käfigs, abgetrennt von einer<br />

Plexiglasscheibe befindet, gute Ergebnisse. Die adulten Tiere scharrten auffallend weniger.<br />

Nirgendwo in <strong>der</strong> Literatur wird beschrieben, dass Meriones unguiculatus ihre angebotene<br />

Nestbox nutzen, um ihren Urin vor möglichen Fressfeinden zu verstecken. Der Urin von<br />

Mäusen reflektiert UV-Licht und zeigt Greifvögeln, welche über Zapfen-Typen verfügen,<br />

welche dies sehen können, wo sich viele Mäuse aufhalten und wie frisch diese Spuren sind<br />

(WILKE 2002).


Eigene Untersuchungen 41<br />

3 Material und Methoden<br />

3.1 Versuchstiere<br />

Insgesamt wurden alle Versuche mit 34 männlichen und weiblichen Tieren (davon 18<br />

männliche und 16 weibliche Tiere) vom 24. bis 33. Lebenstag durchgeführt. Am 40.<br />

Lebenstag wurden alle Tiere euthanasiert. Sie sind Nachkommen von zwei Elternpaaren,<br />

welche aus <strong>der</strong> Medizinischen Hochschule Hannover bezogen und in <strong>der</strong> eigenen Haltung<br />

geboren wurden.<br />

3.2 Standardhaltung<br />

Sowohl die Elterntiere, als auch <strong>der</strong>en Nachkommen nach dem Absetzen, wurden in einem<br />

Makrolon IV–Käfig gehalten, welcher 58 cm lang, 38 cm breit und 20 cm hoch ist. Die<br />

Elterntiere wurden als monogame Paare in jeweils einem Käfig gehalten. Die abgesetzten<br />

Tiere befanden sich, je nach Wurfgröße, zu zweit, zu dritt o<strong>der</strong> zu viert in einem Käfig. Die<br />

Tiere wurden farblich markiert und mittels Losverfahren, wenn nötig, randomisiert. Die<br />

Käfige waren mit ca. 270 g Fasereinstreu (Altromin GmbH Lage Deutschland), ca. 60 g Heu,<br />

sowie vier Nestlets ausgestattet. Sie wurden alle drei Wochen gereinigt, sofern keine<br />

juvenilen Tiere vorhanden waren und standen auf einem sogenannten „Offenen Regal“, einem<br />

Regal mit vier Einlegeböden. Es standen immer zwei Käfige nebeneinan<strong>der</strong>. Die<br />

Umweltbedingungen im Tierraum sind in Tabelle 3 aufgeführt.<br />

Sämtliche Gegenstände, welche vorher in den Raum verbracht worden sind, wurden<br />

desinfiziert. Personen, die den Raum betraten, wurden auf ein Minimum beschränkt und<br />

betraten den Raum nur nach Anziehen von Überschuhen, Tragen von Schutzkleidung und<br />

Waschen und Desinfizieren <strong>der</strong> Hände.


42 Eigene Untersuchungen<br />

Tabelle 3: Umweltbedingungen<br />

Hell- Dunkel- Rhytmus 12:12 Stunden (7:00 – 19:00 und 19:00 – 7:00 Uhr)<br />

Lichtintensität 210 lx, 1m über dem Boden<br />

Relative Luftfeuchtigkeit 55 +/- 10 %<br />

3.3 Futter und Wasser<br />

Temperatur 22 +/- 1 °C<br />

Luftaustausch 700 m 3 /h<br />

Raumgröße 20m 2<br />

Trinkwasser und Pellets (Altromin, Nr. 1324) wurden ad libitum in die Einstreu gegeben.<br />

Während <strong>der</strong> Trächtigkeit <strong>der</strong> Weibchen und <strong>der</strong> Aufzucht <strong>der</strong> Jungen wurde ein spezielles<br />

Zuchtfutter (Altromin, Nr.: 1310), ebenfalls in Pelletform, ad libitum in die Einstreu gegeben.<br />

Die Zusammensetzung des pelletierten Futters wird in Tabelle 4 dargestellt.<br />

Tabelle 4: Futterzusammensetzung (Herstellerangaben)<br />

Altromin Nr: 1324 Altromin Nr: 1310<br />

Rohprotein 19,0 % 22,5 %<br />

Rohfett 4,0 % 5,0 %<br />

Rohfaser 6,0 % 4,5 %<br />

Rohasche 7,0 % 6,5 %<br />

Calcium 0,9 % 0,9 %<br />

Phosphat 0,7 % 0,7 %<br />

Vitamin A 15.000 I.E. / kg 15.000 I.E. / kg<br />

Vitamin D3 600 I.E. / kg 600 I.E. / kg<br />

Vitamin E 75 mg / kg 75 mg / kg<br />

Kupfer 5 mg / kg 5 mg / kg


Eigene Untersuchungen 43<br />

3.4 Versuchsaufbau<br />

Versuchsdesign<br />

1. Gruppe<br />

2. Gruppe<br />

3. Gruppe<br />

Tieranzahl Bedingungen<br />

12<br />

� n=5<br />

� n=7<br />

12<br />

� n=7<br />

� n=5<br />

10<br />

� n=4<br />

� n=6<br />

keine Box/keine Röhre<br />

Box/Röhre seit Geburt<br />

Box/Röhre seit 29. LT<br />

24. -34. LT filmen, 7 - 19 Uhr 40. LT Sektion<br />

Auswertung:<br />

Videos: Dauer des <strong>stereotypen</strong> Scharrens (> 12 sec.) wird für jedes Tier einzeln notiert<br />

Sektion: Organgewichte von Leber, Milz, Herz, Thymus, Nieren (rechts/links),<br />

Nebennieren (rechts/links), Ovarien (rechts/links), Hoden (rechts/links) werden<br />

ermittelt; Körpergewicht, Kopf- Schwanzlänge und Geschlecht werden notiert<br />

Rhythmus: 12/ 12 h (Helligkeitsphase 7-19 Uhr)<br />

Haltung: Die Tiere werden am 23. Lebenstag von den Eltern abgesetzt.<br />

Es können zwei Makrolon VI-Käfige zur gleichen Zeit gefilmt werden. Je nach<br />

Wurfgröße sind 2, 3 o<strong>der</strong> 4 Wüstenrennmäuse in einem Käfig, wobei männliche<br />

und weibliche Tiere je nach Randomisierung zusammen in einem Käfig waren.<br />

Die Jungtiere wuchsen bis zum 23. Lebenstag im Käfig ihrer Elterntiere auf. Da ab dem 24.<br />

Lebenstag gefilmt wurde, wurden sie am 23. Lebenstag abgesetzt und mit einem schwarzen<br />

Stift (Marke Edding 3000 permanent marker, Farbe schwarz) sowohl am Bauch, als auch auf


44 Eigene Untersuchungen<br />

dem Rücken unterschiedlich markiert, so dass sie später auf dem Videofilm zu unterscheiden<br />

waren, wenn sie in den vor<strong>der</strong>en beiden und in den hinteren beiden Ecken stereotypes<br />

Scharren zeigten. Die Untersuchungen glie<strong>der</strong>ten sich in drei Gruppen.<br />

Abb. 1: Haltung <strong>der</strong> Kontrollgruppe<br />

Gruppe 1: Gruppe 1 ist die Kontrollgruppe. Sie bestand aus 12 Tieren. Die Tiere wuchsen<br />

unter Standardbedingungen in einem Makrolon IV-Käfig bei ihren Eltern auf, allerdings war<br />

<strong>der</strong> Käfig durch eine in eine Führungsschiene eingezogene Plexiglasscheibe in seiner Länge<br />

um 4,5 cm verkürzt, um einen Ausgleich zu <strong>der</strong> Grundflächenverkleinerung <strong>der</strong> Käfige <strong>der</strong><br />

Gruppen 2 und 3 zu erreichen. Nach dem Absetzen wurden die Tiere, welche nun ebenfalls in<br />

einem in seiner Länge um 4,5 cm verkürzten Makrolon IV-Käfig untergebracht sind, vom 24.<br />

–33. Lebenstag während <strong>der</strong> Lichtphase gefilmt.


Eigene Untersuchungen 45<br />

Zeichnung 1: Standardhaltung<br />

2 Gruppen erhielten eine Anreicherung. Hierbei handelte es sich um eine undurchsichtige<br />

Nestbox, welche aus Kunststoff besteht und 12,0 cm breit, 17 cm lang und 8 cm hoch ist. Die<br />

Box hat einen Deckel, welcher von oben und nur von außen zu öffnen ist. Die Box ist<br />

erreichbar durch eine ebenfalls undurchsichtige Röhre, welche aus Aluminium besteht und 33<br />

cm lang ist und einen Innendurchmesser von 4 cm hat. Das Knie des Rohres ist aus<br />

Kunststoff. Das Teil des Rohres, das in den Käfig reicht ist 15 cm lang, das Stück welches<br />

sich hinter <strong>der</strong> Plexiglasscheibe befindet, ist 18 cm lang. Box und Röhre befanden sich im<br />

hinteren Drittel des Käfigs, damit <strong>der</strong> Käfig von vorne weiterhin einsehbar war. Dadurch<br />

wurde <strong>der</strong> Käfig um 13 cm verkürzt. Sämtliche Bestandteile, Box, Röhre, Plexiglasscheibe<br />

und Käfig sind nicht fest miteinan<strong>der</strong> verbunden und somit einzeln zu reinigen.<br />

Die gesamte Grundfläche des Standardkäfigs beträgt, mit <strong>der</strong> Verkürzung, 2033 cm 2 . Die<br />

Grundfläche des eingerichteten Käfigs beträgt, inklusive <strong>der</strong> Box und <strong>der</strong> Röhre, 2034 cm 2 .


46 Eigene Untersuchungen<br />

Zeichnung 2: Eingerichtete Haltung<br />

Gruppe 2: Gruppe 2 bestand ebenfalls aus 12 Tieren. Die Tiere wuchsen vom Tag ihrer<br />

Geburt an in einem Makrolon IV-Käfig auf, welcher mit <strong>der</strong> Nestbox und <strong>der</strong> rechtwinklig<br />

verlaufenden Röhre angereichert war. Nach dem Absetzen erhielten sie ebenfalls einen<br />

Makrolon IV-Käfig welcher mit Box und Röhre angereichert war. Auch sie wurden vom 24. –<br />

33. Lebenstag während <strong>der</strong> Lichtphase gefilmt.


Eigene Untersuchungen 47<br />

Abb. 2: Haltung mit Box<br />

Abb. 3: Haltung mit Box


48 Eigene Untersuchungen<br />

Gruppe 3: Gruppe 3 bestand aus 10 Tieren. Die Tiere wuchsen ohne Anreicherung in einem<br />

Makrolon IV-Käfig auf, welcher ebenfalls in seiner Länge, durch eine Plexiglasscheibe, um<br />

4,5 cm verkürzt war. Nach dem Absetzen erhielten sie zunächst 5 Tage, also vom 24. –28.<br />

Lebenstag, keine Anreicherung. Erst vom 29. –33. Lebenstag erhielten sie die Nestbox und<br />

die rechtwinklig verlaufende Röhre. Auch diese Tiere wurden vom 24. –33. Lebenstag<br />

während <strong>der</strong> Lichtphase gefilmt.<br />

Das Verhalten <strong>der</strong> Tiere wurde mittels einer schwarz-weiß-Videokamera <strong>der</strong> Firma Panasonic<br />

(CC TV-Kamera, Modell No. WV–BP 330/GE) und einem Langzeitvideorekor<strong>der</strong><br />

(Panasonic, AG-TL550E) aufgenommen. Je<strong>der</strong> Käfig wurde innerhalb des<br />

Versuchszeitraumes von 10 Tagen täglich während <strong>der</strong> Lichtphase von 7:00 – 19:00 Uhr<br />

aufgenommen. Es wurden je nach Wurfgröße ein bis zwei Käfige gleichzeitig beobachtet. In<br />

jedem Käfig befanden sich maximal vier Tiere. Die 12 Stunden Aufnahmedauer wurden auf<br />

drei Stunden komprimiert und auf einem Videorekor<strong>der</strong> viermal schneller als Echtzeit<br />

abgespielt. Die Beobachtung erfolgte nur hinsichtlich <strong>der</strong> <strong>Verhaltens</strong>weise stereotypes<br />

Graben.<br />

Stereotypes Graben definiert sich wie folgt: Die Tiere stehen auf den Hinterbeinen und<br />

scharren mit den Vor<strong>der</strong>beinen in einer <strong>der</strong> vier Ecken des Käfigs o<strong>der</strong> an den Seitenwänden.<br />

Dabei werden die Augen geschlossen und die Ohren angelegt gehalten. Eine Grabefolge muß<br />

länger als 12 Sekunden andauern, um als stereotyp zu gelten. Diese Angabe wurde von Dr.<br />

Wiedenmayer übernommen. Eine einzelne Grabeaktivität dauert also mindestens 12<br />

Sekunden an. Sie endet mit <strong>der</strong> Beendigung des <strong>stereotypen</strong> <strong>Verhaltens</strong>. Eine neue<br />

Grabeaktivität beginnt mit <strong>der</strong> erneuten Aufnahme des <strong>stereotypen</strong> Scharrens.


Eigene Untersuchungen 49<br />

3.5 Ergänzung<br />

Zudem erhielt ein adultes Paar, welches ebenfalls aus <strong>der</strong> Medizinischen Hochschule<br />

Hannover stammte, zwei Nistboxen. Jede Box besteht aus Acryl und ist 14,5 cm lang, 10,5<br />

cm breit und 14,5 cm hoch. Auch sie sind undurchsichtig, und von oben zu öffnen. Sie<br />

befanden sich im hinteren Drittel des Käfigs und waren vom übrigen Käfig durch eine<br />

Plexiglasscheibe abgetrennt. Die Boxen konnten über ein ebenfalls undurchsichtiges T-Rohr<br />

erreicht werden, welches die Boxen miteinan<strong>der</strong> und mit dem Käfig verband. Es besteht<br />

ebenfalls aus Acryl. Das Teil des Rohres, welches in den Käfig ragt ist 14,5 cm lang, die<br />

sowohl nach rechts als auch nach links abgehenden Seitenstücke sind jeweils 5,5 cm lang.<br />

Diese Anreicherung verkürzt den Käfig in seiner Gesamtlänge ebenfalls um 13 cm. Auch<br />

diese Bestandteile sind nicht fest miteinan<strong>der</strong> verbunden und einzeln zu reinigen.<br />

Zeichnung 3: Doppelbox


50 Eigene Untersuchungen<br />

Abb. 4: Haltung mit 2 Boxen<br />

Abb. 5: Einblick in die Boxen


Eigene Untersuchungen 51<br />

Die gesamte Grundfläche, die den Tieren hier zur Verfügung steht, beträgt 2104,5 cm 2 .<br />

Bei diesem Versuchsaufbau sollte überprüft werden, wofür die Boxen vorrangig genutzt<br />

werden.<br />

Möglichkeiten wären:<br />

- Vorratskammer<br />

- Schlafhöhle<br />

- zur Aufzucht <strong>der</strong> Jungtiere<br />

- um Urin und Kot abzusetzen<br />

Da in den Boxen nicht gefilmt werden konnte, wurden sie täglich geöffnet und es wurde<br />

notiert, wofür sie in erster Linie genutzt worden sind. Dies erfolgte über einen Zeitraum von<br />

30 Tagen. Innerhalb dieses Zeitraumes wurden Junge geboren und bis zum Alter von 25.<br />

Tagen großgezogen. We<strong>der</strong> die Elterntiere, noch die Jungtiere gingen in einen <strong>der</strong> vorherigen<br />

Versuche mit ein. Vergleichend dazu erhielt ein weiteres adultes Paar nur eine Box mit Röhre,<br />

so wie die Tiere in den Gruppen zwei und drei. Auch diese Tiere zogen in den 30 Tagen<br />

Beobachtungszeit Jungtiere groß. Die Box wurde ebenfalls täglich geöffnet, um zu<br />

überprüfen, wofür sie in erster Linie genutzt wurde.<br />

3.6 Euthanasie<br />

Am 40. Lebenstag, d.h. 7 Tage nach Beendigung <strong>der</strong> <strong>Verhaltens</strong>beobachtungen wurden die<br />

Tiere in einem Makrolon III-Käfig euthanasiert. In diesen Käfig sind sie einen Tag zuvor<br />

verbracht worden. Der Käfig wird dazu mit einer Plexiglasplatte abgedeckt. Durch ein Loch<br />

in <strong>der</strong> Platte strömte über einen Schlauch CO2 mit einer Durchflussrate von 6 l/min<br />

(HACKBARTH et al. 2000).<br />

3.7 Sektion<br />

Direkt nach <strong>der</strong> Euthanasie wurde das Gewicht jedes einzelnen Tieres mittels einer Tierwaage<br />

(Ohaus, Explorer, GT-4000) in Gramm auf zwei Kommastellen genau erfasst. Die Kopf-


52 Eigene Untersuchungen<br />

Schwanzlänge wurde mit einem Lineal gemessen. Die Organgewichte wurden nach <strong>der</strong><br />

Sektion mittels einer Präzisionswaage (Sartorius, BP 211 D) in Gramm auf fünf<br />

Kommastellen ermittelt. Die Werte wurden in einer Tabelle festgehalten.<br />

3.8 Statistik<br />

Alle Daten werden durch das StatView ver. 5,0 Computerprogramm (SAS Institute Inc., Cary,<br />

NC, USA, 1998) ausgewertet. Die Daten (Körpergewicht, Kopf-Schwanz-Länge und relative<br />

Organgewichte) werden berechnet und mit Hilfe einer zweifaktoriellen Varianzanalyse<br />

(ANOVA) mit den Faktoren Geschlecht und Einrichtungsform verglichen, gefolgt vom<br />

Scheffé Test (Signifikanzlevel 10%). Auf Normalverteilung wurde mit Hilfe <strong>der</strong> Z-Verteilung<br />

geprüft. Die Daten <strong>der</strong> <strong>Verhaltens</strong>untersuchungen <strong>der</strong> Tiere von allen drei Gruppen wurden<br />

aufgezeichnet und verglichen mit Hilfe des Kruskal-Wallis-Test (nichtparametrische<br />

einfaktorielle Varianzanalyse), da diese Daten nicht normalverteilt waren. Zusätzliche wird<br />

<strong>der</strong> Mann-Whitney-U-Test (nichtparametrischer ungepaarter t-Test) verwendet, um die<br />

Unterschiede zwischen den Geschlechtern zwischen den drei Durchgängen zu bestimmen.<br />

Zudem wurde <strong>der</strong> Wilcoxon Rank Test angewendet um die Unterschiede zwischen den ersten<br />

fünf Tagen und den zweiten fünf Tagen <strong>der</strong> einzelnen Gruppen darzustellen.


Eigene Untersuchungen 53<br />

4 Ergebnisse<br />

4.1 Verhalten<br />

Der prozentuale Anteil des <strong>stereotypen</strong> Grabens an <strong>der</strong> Gesamtzeit des Versuchs wird im<br />

Kapitel 4.1.1 als Box Plots in den Abbildungen fünf, sechs und sieben dargestellt. Hierbei<br />

wird zwischen <strong>der</strong> Gesamtzeit von 10 Tagen, sowie den ersten fünf Versuchstagen, also vom<br />

24. –28. Lebenstag und den zweiten fünf Versuchstagen, also vom 29. –33. Lebenstag,<br />

unterschieden. Diese Darstellungsart zeigt den Median und den interquartilen Anstand <strong>der</strong><br />

Werte zwischen 25 % und 75 % als Box. Werte, die sich unterhalb o<strong>der</strong> oberhalb dieses<br />

Interquartilsintervalls befinden, werden in Form von Strichen bei 10 % und 90 % dargestellt.<br />

Die ebenfalls dargestellten Kreise bezeichnen die Werte, die sich unterhalb von 10 % bzw.<br />

oberhalb von 90 % befinden. Abbildung 8 zeigt die Entwicklung <strong>der</strong> Stereotypie <strong>der</strong><br />

einzelnen Gruppen als Diagramm. Die Anzahl <strong>der</strong> einzelnen Grabeaktivitäten werden<br />

ebenfalls als Box Plots dargestellt und auch hier wird zwischen <strong>der</strong> Gesamtzeit von 10 Tagen,<br />

sowie den ersten 5 Tagen und den zweiten 5 Tagen unterschieden. Es wird nicht zwischen<br />

männlichen und weiblichen Tieren unterschieden, da es laut Literaturangaben und eigenen<br />

Beobachtungen kein unterschiedliches Grabeverhalten zwischen den Geschlechtern gibt.<br />

4.2 Übersicht <strong>der</strong> zeitlichen Aufteilung des <strong>stereotypen</strong> Grabens<br />

Die Darstellung <strong>der</strong> Abbildungen 5, 6, 7 und 8 erfolgt in Prozent. Dies bezieht sich auf die<br />

Helligkeitsphase von 12 Stunden, in <strong>der</strong> gefilmt, bzw. beobachtet und ausgewertet wurde.


54 Eigene Untersuchungen<br />

Gesamter Versuchszeitraum von 10 Tagen:<br />

7<br />

6<br />

5<br />

4<br />

3<br />

2<br />

1<br />

0<br />

Ohne Box Mit Box Ohne, dann mit Box<br />

Abb. 5: Gesamtzeit des Versuchs (24. – 33. Lebenstag)<br />

Die prozentuale Verteilung <strong>der</strong> <strong>Verhaltens</strong>weise „stereotypes Graben“ zeigt einen<br />

signifikanten Unterschied p


Eigene Untersuchungen 55<br />

Erste 5 Tage des Versuchs:<br />

7<br />

6<br />

5<br />

4<br />

3<br />

2<br />

1<br />

0<br />

-1<br />

Ohne Box Mit Box Ohne, dann mit Box<br />

Abb. 6: Tag 1 – 5 des Versuchs (24. – 28. Lebenstag)<br />

Einen signifikanten Unterschied p


56 Eigene Untersuchungen<br />

Zweite 5 Tage des Versuchs:<br />

9<br />

8<br />

7<br />

6<br />

5<br />

4<br />

3<br />

2<br />

1<br />

0<br />

Ohne Box Mit Box Ohne, dann mit Box<br />

Abb. 7: Tag 6 – 10 des Versuchs (29. – 33. Lebenstag)<br />

Während <strong>der</strong> zweiten fünf Tage des Versuchs, d.h. vom 29. – 33. Lebenstag <strong>der</strong><br />

mongolischen Wüstenrennmäuse, gibt es ebenfalls einen signifikanten Unterschied p


Eigene Untersuchungen 57<br />

10<br />

9<br />

8<br />

7<br />

6<br />

5<br />

4<br />

3<br />

2<br />

1<br />

0<br />

-1<br />

Ohne Box<br />

Mit Box<br />

Ohne, dann mit box<br />

Tag 1 Tag 2 Tag 3 Tag 4 Tag 5 Tag 6 Tag 7 Tag 8 Tag 9 Tag 10<br />

Abb. 8: Entwicklung <strong>der</strong> Stereotypie in den verschiedenen Gruppen (Mittelwerte ±<br />

SEM)<br />

Die Abbildung 8 zeigt den prozentualen Anteil des <strong>stereotypen</strong> Grabens im Verlauf <strong>der</strong> 10<br />

Tage, an denen gefilmt wurde. An ihr wird deutlich, dass die Tiere aus <strong>der</strong> Standardhaltung<br />

auffallend mehr stereotyp graben, als die Tiere <strong>der</strong> beiden an<strong>der</strong>en Einrichtungsformen. Die<br />

Tiere <strong>der</strong> Gruppe, welche die Box erst am 29. Lebenstag als Anreicherung erhielt, zeigen die<br />

Stereotypie die ersten 5 Tage <strong>der</strong> Beobachtungszeit ähnlich ausgeprägt, wie die Tiere <strong>der</strong><br />

Standardhaltung. Nach Zugabe <strong>der</strong> Umweltanreicherung Box mit Röhre geht das stereotype<br />

Verhalten jedoch drastisch zurück. Die letzten 5 Tage <strong>der</strong> Beobachtungszeit verhalten sich die<br />

Tiere, wie die <strong>Mongolischen</strong> Wüstenrennmäuse <strong>der</strong> eingerichteten Haltung. Das stereotype<br />

Verhalten macht ebenso hier nur noch einen geringen Prozentsatz des Tages aus.<br />

4.3 Anzahl <strong>der</strong> einzelnen <strong>stereotypen</strong> Grabeaktivitäten<br />

Die Darstellung <strong>der</strong> Abbildungen 10, 11 und 12 zeigt die Anzahl <strong>der</strong> einzelnen<br />

Grabeaktivitäten. Dies bezieht sich auf die Helligkeitsphase von 12 Stunden, in <strong>der</strong> gefilmt,<br />

bzw. beobachtet und ausgewertet wurde.


58 Eigene Untersuchungen<br />

250<br />

225<br />

200<br />

175<br />

150<br />

125<br />

100<br />

75<br />

50<br />

25<br />

0<br />

Ohne Box Mit Box Ohne, dann mit Box<br />

Abb. 10: Gesamtzeit des Versuchs (24. – 33. Lebenstag)<br />

Die Anzahl <strong>der</strong> einzelnen Grabeaktivitäten zeigt einen signifikanten Unterschied p


Eigene Untersuchungen 59<br />

Einen signifikanten Unterschied p


60 Eigene Untersuchungen<br />

Einen weiteren signifikanten Unterschied p


Eigene Untersuchungen 61<br />

Tag 8 Urin- und Kotabsatz Urin- und Kotabsatz Nest<br />

Tag 9 Urin- und Kotabsatz Urin- und Kotabsatz Nest<br />

Tag 10 Urin- und Kotabsatz Nest Nest (Jungtiere)<br />

Tag 11 Urin- und Kotabsatz Urin- und Kotabsatz Nest (Jungtiere)<br />

Tag 12 Urin- und Kotabsatz Urin- und Kotabsatz Nest (Jungtiere)<br />

Tag 13 Urin- und Kotabsatz Urin- und Kotabsatz Nest (Jungtiere)<br />

Tag 14 Urin- und Kotabsatz Urin- und Kotabsatz Nest (Jungtiere)<br />

Tag 15 Urin- und Kotabsatz Urin- und Kotabsatz Nest (Jungtiere)<br />

Tag 16 Urin- und Kotabsatz Urin- und Kotabsatz Nest (Jungtiere)<br />

Tag 17 Urin- und Kotabsatz Urin- und Kotabsatz Nest (Jungtiere)<br />

Tag 18 Urin- und Kotabsatz Urin- und Kotabsatz Nest (Jungtiere)<br />

Tag 19 Urin- und Kotabsatz Nest (Jungtiere) Urin- und Kotabsatz<br />

Tag 20 Urin- und Kotabsatz Nest (Jungtiere) Urin- und Kotabsatz<br />

Tag 21 Urin- und Kotabsatz Nest (Jungtiere) Urin- und Kotabsatz<br />

Tag 22 Urin- und Kotabsatz Nest (Jungtiere) Urin- und Kotabsatz<br />

Tag 23 Urin- und Kotabsatz Nest (Jungtiere) Urin- und Kotabsatz<br />

Tag 24 Urin- und Kotabsatz Nest (Jungtiere) Urin- und Kotabsatz<br />

Tag 25 Urin- und Kotabsatz Nest (Jungtiere) Urin- und Kotabsatz<br />

Tag 26 Urin- und Kotabsatz Urin- und Kotabsatz Nest (Jungtiere)<br />

Tag 27 Urin- und Kotabsatz Urin- und Kotabsatz Nest (Jungtiere)<br />

Tag 28 Urin- und Kotabsatz Urin- und Kotabsatz Nest (Jungtiere)<br />

Tag 29 Urin- und Kotabsatz Urin- und Kotabsatz Nest (Jungtiere)<br />

Tag 30 Urin- und Kotabsatz Urin- und Kotabsatz Nest (Jungtiere)


62 Eigene Untersuchungen<br />

Deutlich wird, dass die Tiere, denen nur eine Box zur Verfügung stand, diese in erster Linie<br />

zum Kot- und Urinabsatz nutzen, selbst wenn ihnen die Box am ersten Tag mit Einstreu und<br />

Heu zur Verfügung gestellt wird. Es wurde aber sowohl tagsüber als auch nachts beobachtet,<br />

dass vor allem die Jungtiere die Box als Rückzugsort benutzen. Das Paar, dem zwei Boxen<br />

zur Verfügung standen, nutzten diese unterschiedlich, zunächst die linke zum Kot- und<br />

Urinabsatz und die rechte Box als Nest zum Schlafen und zum Rückzug. Die Würfe fanden<br />

beide innerhalb des Käfigs statt, hierzu wurden die Boxen nicht genutzt. Am 5. Tag nach <strong>der</strong><br />

Geburt verbrachte das Paar, welches die Doppelbox zur Verfügung hatte, die Jungen in die<br />

rechte Box. Sowohl am 19. als auch am 26. Tag fand ein Wechsel <strong>der</strong> Nutzung statt. Die<br />

Jungtiere verließen ab dem 13. Lebenstag zeitweise ihr Nest in <strong>der</strong> Box und befanden sich<br />

auch im Käfig.<br />

4.5 Darstellung <strong>der</strong> Körpermaße<br />

Die Darstellung <strong>der</strong> Körpermaße, des Körpergewichts und <strong>der</strong> relativen Organgewichte<br />

erfolgt in den Tabellen 6-15. Die Gruppenunterschiede beziehen sich auf die Unterschiede <strong>der</strong><br />

Gruppen 1, 2 und 3.�<br />

4.6 Körpergewicht, Körpermaße, Organgewichte<br />

Tabelle 6: Körpergewicht, Mittelwert in g (± SD)<br />

Weibchen<br />

Männchen<br />

Gruppe 1<br />

(ohne Box)<br />

� n=5<br />

� n=7<br />

42,98g<br />

± 4,577<br />

46,01g<br />

± 2,801<br />

Gruppe 2<br />

(mit Box)<br />

��n=7<br />

� n=5<br />

46,91g<br />

± 6,870<br />

53,14g<br />

± 10,359<br />

Gruppe 3<br />

(Box ab 29. LT)<br />

��n=4<br />

� n=6<br />

51,20g<br />

± 1,780<br />

58,27g<br />

± 3,498<br />

Gruppenunterschiede<br />

Geschlecht<br />

P= 0,0013 P= 0,0110


Eigene Untersuchungen 63<br />

Beim Körpergewicht gibt es einen signifikanten Unterschied p


64 Eigene Untersuchungen<br />

Tabelle 8: Leber, relative Gewichte in % KGW, Mittelwert (± SD)<br />

Weibchen<br />

Männchen<br />

Gruppe 1<br />

(ohne Box)<br />

� n=5<br />

� n=7<br />

4,9549 %<br />

± 0,5422<br />

5,0675 %<br />

± 0,6820<br />

Gruppe 2<br />

(mit Box)<br />

� n=7<br />

� n=5<br />

5,4665 %<br />

± 0,4373<br />

5,4589 %<br />

± 0,5186<br />

Gruppe 3<br />

(Box ab 29. LT)<br />

� n=4<br />

� n=6<br />

5,4215 %<br />

± 0,2432<br />

5,5860 %<br />

± 0,4656<br />

Gruppenunterschiede<br />

Geschlecht<br />

P= 0,0587 P= 0,6227<br />

Die relativen Lebergewichte unterscheiden sich nicht signifikant zwischen den<br />

unterschiedlichen Haltungsbedingungen und den Geschlechtern.<br />

Tabelle 9: Milz, relative Gewichte in % KGW, Mittelwert (± SD)<br />

Weibchen<br />

Männchen<br />

Gruppe 1<br />

(ohne Box)<br />

� n=5<br />

� n=7<br />

0,1253 %<br />

± 0,0139<br />

0,1180 %<br />

± 0,0149<br />

Gruppe 2<br />

(mit Box)<br />

� n=7<br />

� n=5<br />

0,0969 %<br />

± 0,0119<br />

0,1113 %<br />

± 0,0068<br />

Gruppe 3<br />

(Box ab 29. LT)<br />

� n=4<br />

� n=6<br />

0,1051 %<br />

± 0,0156<br />

0,1053 %<br />

± 0,0073<br />

Gruppenunterschiede<br />

Geschlecht<br />

P= 0,0026 P= 0,5752<br />

Das relative Milzgewicht zeigt eine signifikante Abweichung p


Eigene Untersuchungen 65<br />

Tabelle 10: Herz, relative Gewichte in % KGW, Mittelwert (± SD)<br />

Weibchen<br />

Männchen<br />

Gruppe 1<br />

(ohne Box)<br />

� n=5<br />

� n=7<br />

0,4442 %<br />

± 0,0615<br />

0,4385 %<br />

± 0,0521<br />

Gruppe 2<br />

(mit Box)<br />

� n=7<br />

� n=5<br />

0,4320 %<br />

± 0,0395<br />

0,4106 %<br />

± 0,0353<br />

Gruppe 3<br />

(Box ab 29. LT)<br />

� n=4<br />

� n=6<br />

0,4107 %<br />

± 0,0237<br />

0,3757 %<br />

± 0,0127<br />

Gruppenunterschiede<br />

Geschlecht<br />

P= 0,0421 P= 0,1656<br />

Das relative Herzgewicht zeigt eine signifikante Abweichung p


66 Eigene Untersuchungen<br />

Tabelle 12: Nieren, relative Gewichte in % KGW, Mittelwert (± SD)<br />

Weibchen<br />

Männchen<br />

Gruppe 1<br />

(ohne Box)<br />

� n=5<br />

� n=7<br />

1,0285 %<br />

± 0,0706<br />

0,9910 %<br />

± 0,0858<br />

Gruppe 2<br />

(mit Box)<br />

� n=7<br />

� n=5<br />

0,9716 %<br />

± 0,0320<br />

0,9650 %<br />

± 0,0469<br />

Gruppe 3<br />

(Box ab 29. LT)<br />

� n=4<br />

� n=6<br />

0,9957 %<br />

± 0,0763<br />

0,9306 %<br />

± 0,0511<br />

Gruppenunterschiede<br />

Geschlecht<br />

P= 0,1736 P= 0,1071<br />

Es gibt ebenfalls bei den relativen Nierengewichten keinen signifikanten Unterschied<br />

zwischen Gruppe 1, 2 und 3, sowie zwischen den Geschlechtern.<br />

Tabelle 13: Nebennieren, relative Gewichte in % KGW, Mittelwert (± SD)<br />

Weibchen<br />

Männchen<br />

Gruppe 1<br />

(ohne Box)<br />

� n=5<br />

� n=7<br />

0,0308 %<br />

± 0,0062<br />

0,0344 %<br />

± 0,0052<br />

Gruppe 2<br />

(mit Box)<br />

� n=7<br />

� n=5<br />

0,0341 %<br />

± 0,0040<br />

0,0361 %<br />

± 0,0052<br />

Gruppe 3<br />

(Box ab 29. LT)<br />

� n=4<br />

� n=6<br />

0,0401 %<br />

± 0,0047<br />

0,0352 %<br />

± 0,0044<br />

Gruppenunterschiede<br />

Geschlecht<br />

P= 0,0803 P= 0,9031<br />

Die relativen Gewichte <strong>der</strong> Nebennieren weisen keine signifikanten Unterschiede hinsichtlich<br />

<strong>der</strong> drei Gruppen und <strong>der</strong> Geschlechter auf.


Eigene Untersuchungen 67<br />

Tabelle 14: Ovarien, relative Gewichte in % KGW, Mittelwert (± SD)<br />

Weibchen<br />

Gruppe 1<br />

(ohne Box)<br />

� n=5<br />

0,0303 %<br />

± 0,0119<br />

Gruppe 2<br />

(mit Box)<br />

� n=7<br />

0,0233 %<br />

± 0,0098<br />

Gruppe 3<br />

(Box ab 29. LT)<br />

� n=4<br />

0,0289 %<br />

± 0,0089<br />

Gruppen-<br />

unterschiede<br />

P= 0,4829<br />

Bei den relativen Ovariengewichten ist auch kein signifikanter Unterschied zwischen den<br />

verschiedenen Haltungen erkennbar.<br />

Tabelle 15: Hoden, relative Gewichte in % KGW, Mittelwert (± SD)<br />

Männchen<br />

Gruppe 1<br />

(ohne Box)<br />

� n=7<br />

0,6870 %<br />

± 0,1433<br />

Gruppe 2<br />

(mit Box)<br />

� n=5<br />

0,6829 %<br />

±0,0910<br />

Gruppe 3<br />

(Box ab 29. LT)<br />

� n=6<br />

0,8281 %<br />

± 0,0563<br />

Gruppen-<br />

unterschiede<br />

P= 0,0544<br />

Die relativen Hodengewichte zeigen ebenfalls keine auffälligen Unterschiede zwischen den<br />

drei unterschiedlichen Haltungsbedingungen.


68 Diskussion<br />

5 Diskussion<br />

5.1 Umweltanreicherung<br />

Die Versuchstierhaltung ist in hohem Maße standardisiert. Dies dient dazu, Versuche<br />

reproduzierbar zu machen, um so eine bessere Vergleichbarkeit <strong>der</strong> Ergebnisse zu erzielen<br />

und die Zahl <strong>der</strong> Versuchstiere zu reduzieren (BUCHENAUER 1998). Gelten<br />

Versuchsergebnisse jedoch nur unter diesen speziellen Bedingungen, wäre <strong>der</strong>en Relevanz<br />

entsprechend beschränkt. Das könnte dazu führen, dass man mehr Kontrollversuche und<br />

somit mehr Tiere benötigen würde. Es fehlt an grundlegendem Wissen, inwiefern Resultate<br />

aus Tierversuchen in Bezug auf verschiedene Umweltbedingungen robust sind. Tiere können<br />

beson<strong>der</strong>s dann <strong>Verhaltens</strong>störungen entwickeln, wenn ihre Haltungsbedingungen so gestaltet<br />

sind, dass sie erheblich von den Umgebungsbedingungen abweichen, in denen die<br />

evolutionäre Anpassung stattgefunden hat. Eine standardisierte Haltung kann also durch eine<br />

Vernachlässigung <strong>der</strong> Bedürfnisse <strong>der</strong> Tiere zu <strong>Verhaltens</strong>störungen und Stereotypien führen<br />

(SUNDRUM 1994). Jedoch ergaben Studien, dass in eingerichteten Käfigen Blutparameter<br />

einer größeren Streuung unterliegen (TSAI et al. 2002). Was zur Folge hat, dass wie<strong>der</strong>um<br />

eine höhere Anzahl an Tieren eingesetzt werden muß, um diese Varianzen auszugleichen.<br />

Zwischen dem gesteigerten Wohlbefinden des Tieres durch Anreicherung und <strong>der</strong><br />

Beeinflussung <strong>der</strong> Versuchsergebnisse und daraus resultierenden höheren Tierzahlen muß bei<br />

jedem Versuchsvorhaben aufs Neue abgewogen werden.<br />

Ziel dieser Arbeit war es zu überprüfen, ob eine Umweltanreicherung in Form einer Nestbox<br />

mit rechtwinkliger Röhre ein Ausbleiben des <strong>stereotypen</strong> Grabens bei <strong>Mongolischen</strong><br />

Wüstenrennmäusen zur Folge hat. Mongolische Wüstenrennmäuse zeigen in standardisierter<br />

Haltung Stereotypien. Vor allem in <strong>der</strong> Versuchstierhaltung tritt bei <strong>Mongolischen</strong><br />

Wüstenrennmäusen stereotypes Graben auf. Ab dem 16. Lebenstag ist deutliches Graben vor<br />

allem in <strong>der</strong> Mitte des Käfigs sichtbar. Das stereotype Graben nimmt täglich an Dauer und<br />

Intensität zu und richtet sich von Tag zu Tag mehr auf die Rän<strong>der</strong> und Ecken des Käfigs. Die<br />

Grabebewegungen kann man ab dem 24. Lebenstag als stereotyp bezeichnen. Die Tiere<br />

scharren mit den Vor<strong>der</strong>beinen bevorzugt in den Käfigecken, mit den Hinterbeinen wird die


Diskussion 69<br />

Einstreu zur Seite geworfen. Sie halten die Augen währenddessen geschlossen und die Ohren<br />

sind angelegt. Das Graben dient normalerweise dem Erstellen von Höhlen und ist deswegen<br />

in <strong>der</strong> Haltung in einem Makrolonkäfig nicht erfolgreich. Reize, die dieses Graben<br />

offensichtlich beenden, fehlen. Das Graben wird wie<strong>der</strong>holt ausgeführt und wird durch eine<br />

Art Lernprozess länger und einförmiger, d. h. stereotyp. GÄRTNER und MILITZER (1993)<br />

werten das stereotype Graben bei <strong>Mongolischen</strong> Wüstenrennmäusen als ein Zeichen für<br />

Schmerzen und Schäden. Grabefolgen entwickeln sich also aus normalem Graben, deshalb<br />

muss eine Definition festgelegt werden, die stereotypes Graben von normalem Graben<br />

unterscheidet .WIEDENMAYER (1995) bezeichnet eine Grabefolge dann als stereotyp, wenn<br />

sie länger als 12 sec. andauert.<br />

Die Methode, die hier angewendet wurde, bezog sich auf die Lebensweise <strong>der</strong> Tiere in ihrer<br />

natürlichen Umgebung. Sie legen ein weit verzweigtes Tunnelsystem und Höhlenbauten an.<br />

Deshalb war davon auszugehen, dass die Tiere nicht nur eine Art Höhle zum Unterschlupf,<br />

son<strong>der</strong>n auch einen Tunnel benötigen, welcher zu dieser Höhle führt. Zudem gab es bereits<br />

Studien, wie zum Beispiel von WIEDENMAYER (1995). Er erzielte gute Erfolge durch<br />

Zugabe einer Kammer, welche sich unterhalb des Käfigs befand und durch eine Röhre<br />

erreichbar war. Seine Versuche, den Tieren durch Zugabe von Sand und Stroh die<br />

Möglichkeit zu geben Grabeaktivitäten auszuführen, blieben erfolglos. Die Stereotypie blieb<br />

erhalten. Auch seine Versuche, das stereotype Graben bei <strong>Mongolischen</strong> Wüstenrennmäusen<br />

durch Zugabe einer Box ohne Röhre zu verhin<strong>der</strong>n, brachten nicht den gewünschten Erfolg.<br />

Da eine Anreicherung, welche nicht innerhalb des Käfigs ist, bzw. hygienische<br />

Schwierigkeiten bereiten würde, nicht praktikabel erschien, wurde in dieser Arbeit eine<br />

Nestbox mit rechtwinkliger Röhre eingesetzt, welche im hinteren Teil des Käfigs zu finden<br />

ist. Dies ähnelt dem Versuchsaufbau von WAIBLINGER (2002), welche damit die<br />

Standardhaltung von adulten Tieren angereichert hat.<br />

Mongolische Wüstenrennmäuse sind tag- und nachtaktiv. In dieser Studie wurden die Tiere<br />

nur am Tag gefilmt. Dies schränkt die Aussage über das stereotype Graben während eines<br />

gesamten 24 Stunden Tages ein. An Hand <strong>der</strong> Ergebnisse sieht man zudem, dass sowohl in<br />

<strong>der</strong> Standardhaltung, als auch in <strong>der</strong> eingerichteten Haltung während <strong>der</strong> letzten 5<br />

Beobachtungstage ein leichter Anstieg des <strong>stereotypen</strong> <strong>Verhaltens</strong> zu verzeichnen ist. Es ist


70 Diskussion<br />

also nicht sicher, dass dieser Zustand bereits stabil ist. Möglicherweise kommt es dazu, dass<br />

auch die Tiere aus <strong>der</strong> eingerichteten Haltung nach weiteren Beobachtungstagen ein erhöhtes<br />

stereotypes Verhalten zeigen werden. Ein weiterer Punkt könnte die Aussage dieser Studie<br />

einschränken. Die Anzahl <strong>der</strong> Tiere in den beobachteten Käfigen variierte, bedingt durch die<br />

unterschiedlichen Wurfgrößen, zwischen 2, 3 und 4 Tieren. Dies kann zur Folge haben, dass<br />

es innerhalb <strong>der</strong> Käfige zu verschiedenen Rangordnungen gekommen ist, wodurch die Tiere<br />

ein unterschiedliches Verhalten gezeigt haben. In meinen Versuchen gab es hierzu keine<br />

Indizien.<br />

Die Ergebnisse <strong>der</strong> Gruppe, welche unter Standardbedingungen aufwuchs und gehalten<br />

wurde, und <strong>der</strong> Gruppe, die in einem eingerichteten Käfig gehalten wurde, bestätigen die<br />

Studien von WIEDENMAYER (1995a) und WAIBLINGER (2002). Die Zugabe einer Box<br />

mit Röhre vermin<strong>der</strong>t das Ausbilden des <strong>stereotypen</strong> Grabens. Zudem zeigte sich in dieser<br />

Arbeit, dass auch das spätere Zugeben dieser Umweltanreicherung einen deutlichen Rückgang<br />

<strong>der</strong> Stereotypie zur Folge hat. Ob eine Stereotypie reversibel sein kann, ist in <strong>der</strong> Literatur<br />

umstritten. BRYANT et al. (1988) beschreiben, dass Stereotypien und Autoagressionen bei<br />

Affen, welche in Standardkäfigen gehalten wurden, deutlich zurück gegangen sind, als man<br />

ihnen einen Käfig anbot, welcher mit Spielzeug ausgestattet war. Die Stereotypien traten<br />

allerdings verstärkt auf, als die Tiere in die Standardhaltung zurück verbracht wurden. Eine<br />

an<strong>der</strong>e Studie an Vögeln dagegen besagt, dass man nur einen erfolgreichen Rückgang von<br />

Stereotypien erzielen kann, in dem man die Tiere mit Psychopharmaka behandelt (JENKINS<br />

2001). Selbst die Behandlung mit psychisch wirksamen Medikamenten bringt aber nicht<br />

immer den gewünschten Erfolg. Die Medikamente zeigen entwe<strong>der</strong> nicht die gewünschte<br />

Wirkung, werden von <strong>der</strong> betreffenden Tierart nicht vertragen o<strong>der</strong> führen dazu, dass das Tier<br />

keinen Anteil mehr an seiner Umgebung nimmt (HELLINGER 2000). Von einer Möglichkeit<br />

<strong>der</strong> Prävention von Stereotypien sprechen LAWRENCE und TERLOUW (1993), die zu dem<br />

Ergebnis kamen, dass die Zugabe von Umweltanreicherungen vor Ausbilden <strong>der</strong> Stereotypie<br />

erfolgen muß. Das bestätigt die Studie von KÖNIG (2000), die ebenfalls nicht zu dem Schluß<br />

kommt, dass das Anreichern des Käfigs nach Ausbildung des <strong>stereotypen</strong> Grabens eine<br />

Vermin<strong>der</strong>ung dessen zur Folge hat. POWELL et al. (2000) spricht auch davon, dass den<br />

Tieren möglichst früh das Enrichment zur Verfügung gestellt werden sollte. Dadurch würden<br />

Stereotypien weniger ausgebildet. Von einer Reversibilität von Stereotypien geht er jedoch


Diskussion 71<br />

nicht aus. LEBELT (1998) beschreibt, dass Stereotypien auch nach Beseitigung <strong>der</strong><br />

eigentlichen Ursache immer wie<strong>der</strong> auftreten. Es gibt also keine einheitlichen Aussagen über<br />

die Reversibilität von Stereotypien. In <strong>der</strong> hier vorliegenden Arbeit kann man die<br />

Reversibilität des <strong>stereotypen</strong> Grabens klar bejahen.<br />

In Käfigen, die eine strukturierte Einrichtung besaßen, nahm das aggressive Verhalten, vor<br />

allem von männlichen Mäusen deutlich zu (HAEMISCH et al. 1994). Es ist fraglich, ob eine<br />

Umweltanreicherung bei allen Tieren zu einer Verbesserung des Wohlbefindens führt, o<strong>der</strong><br />

ob sie in erster Linie Stress für die Tiere bedeutet, die in <strong>der</strong> Rangfolge weiter unten stehen.<br />

Der beengte Platz verhin<strong>der</strong>t zwangsläufig die Möglichkeit <strong>der</strong> Flucht. Auch dominantere<br />

Tiere könnten eher mehr Stress als Wohlbefinden empfinden, da es nun mehrere Bereiche<br />

gibt, die verteidigt werden müssen.<br />

Es stellt sich also die Frage, ob eine Einrichtung <strong>der</strong> Käfige wirklich sinnvoll ist, das<br />

Wohlbefinden <strong>der</strong> Tiere steigert und die eventuell erhöhten Tierzahlen rechtfertigt.<br />

Standardisierte, nicht eingerichtete Käfige, sind bezogen auf ihre Grundfläche relativ klein<br />

und gelten als restriktive Haltungsform. Aber nicht jede standardisierte Haltungsform führt zu<br />

einem Ausbilden von Stereotypien. Die Ausführung einer Reihe von <strong>Verhaltens</strong>weisen, wie<br />

Jungtieraufzucht, Körperpflege, Nahrungsaufnahme, Ausscheidungsverhalten, Ruhen und<br />

Fortbewegung bedarf keines großen Flächenanspruchs. Eine Beschränkung von<br />

<strong>Verhaltens</strong>weisen, die eine schnelle Distanzüberwindung voraussetzen, wie Laufen und<br />

Springen wird <strong>der</strong>zeit in gebräuchlichen Käfigen in Kauf genommen. Sollte nachgewiesen<br />

werden, dass ein bestimmtes Verhalten für die Lebenserhaltung essentiell ist o<strong>der</strong> seine<br />

Nichtausführung den Tieren Schaden zufügt, muß die entsprechende Haltung als nicht<br />

tiergerecht betrachtet werden (MILITZER 1990). Es müssen also weiterführende<br />

<strong>Verhaltens</strong>untersuchungen durchgeführt werden, um die <strong>Verhaltens</strong>weisen herauszufinden,<br />

die für die Tiere essentiell sind. Diese müssen die Tiere dann in je<strong>der</strong> Haltung<br />

uneingeschränkt ausführen können. Die Haltungsformen müssen folglich an die jeweiligen<br />

Bedürfnisse <strong>der</strong> Tierart angepasst sein.


72 Diskussion<br />

5.2 <strong>Verhaltens</strong>beobachtungen<br />

Durch <strong>Verhaltens</strong>beobachtungen sollte die Frage geklärt werden, ob eine Umweltanreicherung<br />

in Form einer Nestbox mit Röhre zu einem gesteigerten Wohlbefinden von<br />

<strong>Mongolischen</strong> Wüstenrennmäusen führt und das Ausbleiben, bzw. die Vermin<strong>der</strong>ung des<br />

<strong>stereotypen</strong> Grabens zur Folge hat. Dabei stellte sich heraus, dass Tiere, die in <strong>der</strong><br />

Standardhaltung aufwuchsen und gehalten wurden, bis zu 9,5 % <strong>der</strong> Helligkeitsphase von 12<br />

Stunden mit stereotypem Graben verbrachten. Mongolische Wüstenrennmäuse dagegen, die<br />

diese Anreicherung bereits von Geburt an zur Verfügung hatten, zeigten die Stereotypie nur<br />

höchstens zu 0,5 %, anteilig an <strong>der</strong> Helligkeitsphase. Dies bestätigt die Studie von<br />

WIEDENMAYER 1995, in <strong>der</strong> die Tiere, die einen unterirdischen Nestbau welcher durch<br />

eine Röhre zu erreichen war, zur Verfügung hatten. Er erzielte damit ähnliche Ergebnisse wie<br />

in dieser Arbeit. Ebenso werden die Ergebnisse <strong>der</strong> Studie von WAIBLINGER 2002, welche<br />

eine undurchsichtige Nestbox mit angrenzen<strong>der</strong> rechtwinkliger Röhre adulten Tieren zur<br />

Verfügung stellte, durch die vorliegende Arbeit bestätigt.<br />

Tiere, die die Box erst am 29. Lebenstag bekamen, nachdem sie die Stereotypie bereits<br />

ausgeprägt hatten, zeigten einen deutlichen Rückgang <strong>der</strong> <strong>Verhaltens</strong>störung von bis zu 5 %,<br />

anteilig an <strong>der</strong> Helligkeitsphase, auf etwa 1 %. Dies entspricht nicht den Ergebnissen <strong>der</strong><br />

Studie von KÖNIG 2000, die zu dem Schluss kam, dass einzig das Anbieten des Enrichments<br />

an juvenile Tiere, die die Stereotypie noch nicht ausgebildet haben, zum Ausbleiben <strong>der</strong><br />

Stereotypie führt.<br />

Es zeigten sich signifikante Unterschiede zwischen <strong>der</strong> Standardhaltung und <strong>der</strong><br />

angereicherten Haltung bei den Tieren, die die Umweltanreicherung bereits von Geburt an<br />

erhielten. Die Tiere <strong>der</strong> Standardhaltung gruben auffallend häufiger stereotyp in den Ecken,<br />

als die Tiere <strong>der</strong> angereicherten Haltung. Daraus kann man schließen, dass die Tiere, welche<br />

die Box und die Röhre zur Verfügung hatten, ihren Bedürfnissen entsprechend und dadurch<br />

artgerechter gehalten wurden und somit ein gesteigertes Wohlbefinden hatten, im Gegensatz<br />

zu den Tieren aus <strong>der</strong> Standardhaltung. Zudem lässt sich ein signifikanter Unterschied<br />

zwischen <strong>der</strong> Standardhaltung und <strong>der</strong> Haltung feststellen, welche die Box erst am 29.<br />

Lebenstag, sprich nach dem Ausbilden <strong>der</strong> Stereotypie, erhielt. Die Tiere, die erst später die


Diskussion 73<br />

Einrichtung erhalten haben, gruben deutlich weniger stereotyp, als die Tiere aus <strong>der</strong><br />

Standardhaltung. Man kann daraus schließen, dass das stereotype Graben bei<br />

Wüstenrennmäusen auch dann reversibel ist, wenn die Box später angeboten wird. Auffällig<br />

war, dass die Elterntiere, die bei <strong>der</strong> Geburt ihres Nachwuchses 9 Wochen und älter waren,<br />

auch weniger scharrten als vor Zugabe <strong>der</strong> Nestbox, die Stereotypie aber noch einen großen<br />

Teil <strong>der</strong> Tagesbeschäftigung ausmachte.<br />

Die Gruppen 1 und 2 zeigten jeweils einen signifikanten Anstieg <strong>der</strong> Stereotypie während <strong>der</strong><br />

zweiten fünf Tage. Bei Gruppe 1 läßt sich dieser graphisch auch eindeutig darstellen. Ebenso<br />

<strong>der</strong> signifikante Rückgang <strong>der</strong> Stereotypie <strong>der</strong> Gruppe 3 an den zweiten fünf Tagen. Der<br />

Anstieg des <strong>stereotypen</strong> <strong>Verhaltens</strong> bei Gruppe 2 während <strong>der</strong> zweiten fünf Tage ist im<br />

Vergleich dazu minimal, obwohl statistisch signifikant.<br />

Es zeigte sich weiterhin, dass die adulten Tiere, welche ebenfalls Zugang zu <strong>der</strong> Nestbox<br />

hatten während sie ihre Jungen großzogen, diese überwiegend zum Kot- und Urinabsatz<br />

nutzten. Sie hielten sich darin auch auf, bauten aber we<strong>der</strong> ein Nest in die Box, noch legten<br />

sie darin eine Futterkammer an o<strong>der</strong> zogen ihren Nachwuchs hierin auf. Die Box mußte<br />

bedingt dadurch regelmäßig gereinigt werden und das Material litt unter dem konzentrierten<br />

Urin. Die abgesetzten Jungtiere nutzen die Box etwa 11 Tage als Nest und hielten sich<br />

überwiegend darin auf. Erst ab dem 35. Lebenstag wurde in alle Käfigen, gleich ob die Tiere<br />

zu zweit, zu dritt o<strong>der</strong> zu viert gehalten wurden, das Nest entfernt und die Box überwiegend<br />

zum Kot- und Urinabsatz genutzt. Nirgendwo in <strong>der</strong> Literatur wird beschrieben, dass<br />

Meriones unguiculatus ihre angebotene Nestbox nutzen, um ihren Urin vor möglichen<br />

Fressfeinden zu verstecken. Dies erscheint jedoch sinnvoll, da <strong>der</strong> Urin von Mäusen UV-Licht<br />

reflektiert und Greifvögeln zeigt, die über Zapfen-Typen verfügen, welche dies sehen können,<br />

wo sich viele Mäuse aufhalten und wie frisch diese Spuren sind (WILKE 2002). Der Schutz<br />

vor möglichen Fressfeinden scheint ein wichtigeres Kriterium zu sein, als einen dunklen Ort<br />

zum Rückzug und Schlafen zu haben, die Jungen groß zu ziehen, o<strong>der</strong> eine Vorratskammer<br />

anzulegen.<br />

Die Tiere, die die Doppelbox aus Acryl zur Verfügung hatten, nutzen eine Box, um darin ein<br />

Nest zu bauen und später auch die Jungtiere großzuziehen die an<strong>der</strong>e Box zum Urin- und<br />

Kotabsatz. Beide Boxen blieben erheblich sauberer als in <strong>der</strong> Haltung, die nur mit einer Box


74 Diskussion<br />

ausgestattet war. Zudem erwies sich das Material deutlich beständiger, als <strong>der</strong> Kunststoff, aus<br />

dem die einzelne Box bestand. Eine Möglichkeit Korrosion zu vermeiden wäre, konisch<br />

zulaufende Löcher in den Boden <strong>der</strong> Box zu bohren durch die <strong>der</strong> Urin leichter ablaufen kann.<br />

Die Röhre, die zu <strong>der</strong> Box führt bzw. die beiden Boxen miteinan<strong>der</strong> verbindet, sollte nicht aus<br />

Kunststoff bestehen. Die <strong>Mongolischen</strong> Wüstenrennmäuse in diesem Versuch hatten sie in<br />

wenigen Tagen vollständig zerstört. Erst nachdem die Enden mit Aluminiumröhren verstärkt<br />

worden waren, blieben sie dauerhaft haltbar. Die Röhren <strong>der</strong> Doppelbox bestanden aus Acryl,<br />

welches sich ebenfalls als nagebeständiges Material erwies.<br />

Während <strong>der</strong> <strong>Verhaltens</strong>beobachtungen wurde zudem deutlich, dass die Tiere aus <strong>der</strong> von<br />

Beginn an angereichrten Haltung das ruhigste Verhalten zeigten. Sie hielten sich überwiegend<br />

in <strong>der</strong> Box auf, hatten aber auch einen Nestplatz innerhalb des Käfigs eingerichtet. Die<br />

Nahrungsaufnahme und das Schlafen bzw. Ruhen wurde nicht ständig durch wie<strong>der</strong>holtes,<br />

zielloses Umherlaufen und stereotypes Graben unterbrochen. Die Tiere aus <strong>der</strong><br />

Standardhaltung dagegen verhielten sich insgesamt sehr unruhig. Viele <strong>Verhaltens</strong>weisen, wie<br />

z.B. Fressen und Schlafen wurden immer wie<strong>der</strong> durch stereotype Grabesequenzen und<br />

Umherlaufen unterbrochen. Die Tiere <strong>der</strong> dritten Gruppe, welche die Box erst nach dem<br />

Ausbilden <strong>der</strong> Stereotypie erhielt, zeigten einen deutlichen Rückgang des <strong>stereotypen</strong><br />

<strong>Verhaltens</strong>, waren aber ebenfalls auffallend unruhiger als die Tiere aus <strong>der</strong> eingerichteten<br />

Haltung, wenn auch nicht so unruhig, wie die Tiere aus <strong>der</strong> Standardhaltung. Sie nutzten die<br />

Box allerdings fast gar nicht zum Schlafen, son<strong>der</strong>n schliefen beinahe ausschließlich in einem<br />

Nest im Käfig. Daraus kann man schließen, dass die Zugabe dieser Einrichtung den Stress <strong>der</strong><br />

Tiere deutlich reduziert und somit zu einem gesteigerten Wohlbefinden führt. Allerdings<br />

scheint es für eine volle Akzeptanz und Nutzung dieser Umweltanreicherung notwendig zu<br />

sein, den Tieren die Box von Anbeginn an anzubieten, was die Arbeit von KÖNIG (2000)<br />

zumindest zum Teil bestätigt.<br />

5.3 Körpermaße<br />

In <strong>der</strong> vorliegenden Studie zeigte sich ein signifikanter Unterschied p


Diskussion 75<br />

1. Die Ursache hierfür könnte sein, dass die Tiere in <strong>der</strong> Standardhaltung einem so enormen<br />

Stress ausgesetzt sind, dass sie wesentlich mehr Kalorien verbrennen, als die Tiere in den<br />

an<strong>der</strong>en Haltungen. Wie schon zuvor beschrieben, zeigten sich die Tiere <strong>der</strong> Standardhaltung<br />

ausgesprochen unruhig und selbst die Futteraufnahme wurde mehrmals von einzelnen<br />

Grabeaktivitäten unterbrochen. Die Zugabe <strong>der</strong> Box ab dem 29. Lebenstag scheint diesen<br />

Stress doch auffallend zu minimieren, so dass es vermutlich innerhalb des weiteren<br />

Versuchszeitraums zu einer auffallenden Gewichtszunahme kommt, da <strong>der</strong> Stress <strong>der</strong> Tiere<br />

vermin<strong>der</strong>t wurde, indem sie diese Umweltanreicherung erhalten haben. Auch<br />

MANOSEVITZ und JOEL (1973) stellten fest, dass Mäuse aus angereicherten Haltungen<br />

signifikant schwerer sind, als Tiere aus Standardhaltungen. Die Tiere <strong>der</strong> Gruppe 3 waren<br />

zudem auch schwerer als die Tiere <strong>der</strong> Gruppe 2. Die lässt sich möglicherweise aus einem<br />

übersteigerten Fressverhalten nach Beendigung einer Stresssituation erklären. Die Tiere <strong>der</strong><br />

Gruppe 3 fraßen nach Zugabe <strong>der</strong> Nestbox auffallend mehr.<br />

Zwischen den Geschlechtern gab es ebenfalls einen signifikanten Unterschied p


76 Diskussion<br />

schließen, dass die Tiere welche unter Standardbedingungen gehalten wurden, die ihrem<br />

Anspruch an die Umwelt nicht entsprechen, einem Zustand von chronischem Stress<br />

ausgesetzt sind. Möglicherweise führt dieser zu einer Erhöhung des Blutdrucks, bedingt durch<br />

eine Überreaktion des sympathischen Nervensystems (NEVISON et al. 1999). So könnte es<br />

zu einer Erhöhung des Herzgewichtes kommen. Auch zeigt sich wie<strong>der</strong>, dass selbst die<br />

spätere Zugabe <strong>der</strong> Umweltanreicherung „Box mit Röhre“ eine Vermin<strong>der</strong>ung des<br />

chronischen Stress zur Folge und somit nicht zu einer Erhöhung des Herzgewichts geführt<br />

haben könnte.<br />

5.5 Abschlussbetrachtung<br />

Eine Umweltanreicherung in Form einer Nestbox, welche durch eine rechtwinklige Röhre<br />

erreicht wird, ist dringend in <strong>der</strong> Haltung von Meriones unguiculatus anzuraten. Diese Studie<br />

hat nachgewiesen, dass das Vorhandensein eines bauähnlichen Gegenstandes ein Indiz für ein<br />

gutes Wohlbefinden ist und zum Ausbleiben von <strong>stereotypen</strong> Graben führt. Die Tiere in <strong>der</strong><br />

eingerichteten Haltung zeigten diese Stereotypie kaum noch. Eine Haltung ohne diese<br />

Anreicherung muß demnach als nicht artgerecht angesehen werden. Sie führt sogar zu so<br />

massiven <strong>Verhaltens</strong>verän<strong>der</strong>ungen, dass diese sich in den Organgewichten wi<strong>der</strong>spiegeln.<br />

Das stereotype Graben kann also als Indikator dafür verwendet werden, dass eine<br />

Standardhaltung nicht den Anfor<strong>der</strong>ungen <strong>der</strong> <strong>Mongolischen</strong> Wüstenrennmäuse an ihre<br />

Umwelt entspricht und dass die Stereotypie ein Hinweis auf chronischen Stress ist, dem die<br />

Tiere permanent ausgesetzt sind. Eine Erhöhung des Stresses von rangnie<strong>der</strong>en Tieren, bzw.<br />

ranghöheren Tieren in eingerichteter Haltung konnte hier nicht nachgewiesen werden, da sich<br />

alle Tiere auffallend ruhiger verhielten als die Tiere <strong>der</strong> Standardhaltung. Zwischen dem<br />

gesteigerten Wohlbefinden des Tieres durch Anreicherung und <strong>der</strong> Beeinflussung <strong>der</strong><br />

Versuchsergebnisse und daraus resultierenden höheren Tierzahlen muß bei jedem<br />

Versuchsvorhaben aufs Neue abgewogen werden. Aus dem Ergebnis dieser Studie kann man<br />

schließen, dass die Entscheidung zu Gunsten <strong>der</strong> Tiere getroffen werden sollte. In<br />

weiterführenden Versuchen könnte beispielsweise durch die Untersuchung von<br />

Blutparametern überprüft werden, in wie weit physiologische Parameter in den<br />

unterschiedlichen Haltungen erhöhten Streuungen unterliegen. Weiterhin könnte man sich auf<br />

die Erhebung von Stressparametern konzentrieren. Um zu überprüfen, ob das verringerte


Diskussion 77<br />

stereotype Verhalten, bzw. das minimale Ausbilden <strong>der</strong> Stereotypie konstant bleibt, sollte<br />

man die Tiere einen deutlich längeren Zeitraum beobachten. Zudem wäre es interessant, ob<br />

die Nachkommen <strong>der</strong> Tiere, welche in <strong>der</strong> angereicherten Haltung aufwuchsen noch weniger<br />

o<strong>der</strong> gar nicht mehr stereotyp Graben im Gegensatz zu ihren Elterntieren, welche in dieser<br />

Haltung aufwuchsen.


78 Zusammenfassung<br />

6 Zusammenfassung<br />

Martina Schmoock<br />

<strong>Ursachen</strong> <strong>stereotypen</strong> <strong>Verhaltens</strong> <strong>der</strong> <strong>Mongolischen</strong> <strong>Wüstenrennmaus</strong> (Meriones<br />

unguiculatus)<br />

Unter Laborbedingungen gehaltene Mongolische Wüstenrennmäuse zeigen in <strong>der</strong><br />

Standardversuchshaltung in hoher Frequenz "stereotypes Grabeverhalten". Deshalb sollte in<br />

<strong>der</strong> vorliegenden Arbeit untersucht werden, ob durch eine entsprechende Käfiganreicherung<br />

(Environmental Enrichment) die Ausbildung <strong>der</strong>artiger Stereotypien verhin<strong>der</strong>t bzw. nach<br />

<strong>der</strong>en Ausbildung reduziert werden kann.<br />

Zu diesem Zweck wurden drei Gruppen von <strong>Mongolischen</strong> Wüstenrennmäusen (insgesamt 34<br />

Tiere bei<strong>der</strong>lei Geschlechts) zwischen dem 24. und 33. Lebenstag täglich über 12 Stunden per<br />

Videoaufzeichnung beobachtet. Ein Gruppe (Kontrolle) wurde unter Standardlaborbedingungen<br />

gehalten (Makrolonkäfig Typ IV, Einstreu, Futter, Wasser). Die zweite Gruppe<br />

erhielt von Geburt an eine undurchsichtige Nestbox, die über eine ebenfalls undurchsichtige,<br />

rechtwinkelige Röhre erreichbar war. Die dritte Gruppe erhielt die gleiche Käfiganreicherung<br />

aber erst ab dem 29. Lebenstag, nachdem sie von <strong>der</strong> Geburt an bis zum 29. Lebenstag unter<br />

Standardbedingungen gehalten wurde.<br />

Die Daten dieser Untersuchung zeigen, dass das stereotype Grabverhalten <strong>der</strong> einzelnen<br />

Gruppen sich signifikant (p


Zusammenfassung 79<br />

Unterschiede weisen ebenfalls auf eine höhere Stressbelastung <strong>der</strong> Tiere in <strong>der</strong><br />

Standardhaltung hin.<br />

Mongolische Wüstenrennmäuse benötigen offensichtlich eine Umweltanreicherung in Form<br />

einer über eine rechtwinklige Röhre zugänge Nestbox. Sie scheint das Wohlbefinden <strong>der</strong><br />

Tiere zu verbessern und chronischen Stress zu reduzieren bzw. zu verhin<strong>der</strong>n. Ein Haltung<br />

von <strong>Mongolischen</strong> Wüstenrennmäusen unter Laborstandardbedingungen erscheint, nach<br />

diesen Untersuchungen, nicht artgerecht. Das stereotype Graben ist selbst bei späterem<br />

Hinzufügen dieser Umweltanreicherung z.T. reversibel. Ob diese Form <strong>der</strong><br />

Haltungsanreicherung, wie für Mäuse beschrieben, zu einer Beeinflussung von<br />

Versuchsergebnissen und <strong>der</strong>en Varianz führt, sollte überprüft werden, bevor eine solche<br />

Haltungsanreicherung (Environenmtal Enrichment) gesetzlich vorgeschrieben wird.


80 Summary<br />

7 Summary<br />

Martina Schmoock<br />

Reasons for stereotypical behaviour of Mongolian gerbils (Meriones unguiculatus)<br />

Mongolian gerbils kept un<strong>der</strong> standard conditions show in high frequency stereotyped<br />

digging. Therefore this thesis aimed at investigating whether an Environmental Enrichment<br />

prevents the development of this stereotypy, or if whether is partly reversible.<br />

Three groups of Mongolian gerbils (34 male and female animals) aged between 24 and 33<br />

days, were analysed. They were videotaped daily over 12 hours. One group (control) was kept<br />

un<strong>der</strong> standard laboratory conditions (Macroloncage Typ IV, bedding, food, water). The<br />

second group got a non-transparent nesting box starting from birth, which could be reached<br />

via a non-transparent right-angled tube. The third group got the same cage enrichment on the<br />

29 th day of age, after they were kept un<strong>der</strong> standard conditions since birth.<br />

The data of the study shows that the stereotyped digging differed significantly between<br />

groups (p


Summary 81<br />

enrichment is added later. But it should be checked if this enrichment has any influence on<br />

other experimental results before this enrichment is legally prescribed.


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Eidesstattliche Erklärung Hannover, den 20.08.2004<br />

Hiermit erkläre ich, dass ich die Dissertation mit dem Titel „<strong>Ursachen</strong> <strong>stereotypen</strong> <strong>Verhaltens</strong><br />

<strong>der</strong> <strong>Mongolischen</strong> <strong>Wüstenrennmaus</strong> (Meriones unguiculatus) “ selbständig verfasst habe. Bei<br />

<strong>der</strong> Anfertigung wurden folgende Hilfen und Hilfsmittel in Anspruch genommen:<br />

• Redaktionelle Überarbeitung durch wissenschaftliche Mitarbeiter und Leiter<br />

des Instituts für Tierschutz und Verhalten (Heim-, Labortiere und Pferde) <strong>der</strong><br />

Tierärztlichen Hochschule Hannover.<br />

Ich habe keine entgeltliche Hilfe von Vermittlungs- bzw. Beratungsdiensten<br />

(Promotionsberater o<strong>der</strong> an<strong>der</strong>en Personen) in Anspruch genommen. Niemand hat von mir<br />

unmittelbar o<strong>der</strong> mittelbar entgeltliche Leistungen für Arbeiten erhalten, die im<br />

Zusammenhang mit dem Inhalt <strong>der</strong> vorgelegten Dissertation stehen.<br />

Die Dissertation wurde im Institut für Tierschutz und Verhalten (Heim-, Labortiere und<br />

Pferde) <strong>der</strong> Tierärztlichen Hochschule Hannover unter <strong>der</strong> Leitung von Univ. Prof. Dr.<br />

Hansjoachim Hackbarth angefertigt und bisher nicht für eine Prüfung o<strong>der</strong> Promotion o<strong>der</strong> für<br />

einen ähnlichen Zweck zur Beurteilung eingereicht.<br />

Ich versichere, dass ich die vorstehenden Angaben nach bestem Wissen vollständig und <strong>der</strong><br />

Wahrheit entsprechend gemacht habe.<br />

Martina Schmoock


Danksagung<br />

Ich danke Herrn Prof. Dr. H. Hackbarth herzlich für die Überlassung des interessanten<br />

Themas, die För<strong>der</strong>ung meiner Geduld und die väterliche und hilfsbereite Unterstützung auf<br />

die ich mich je<strong>der</strong>zeit verlassen konnte.<br />

Mein großer Dank gilt weiterhin Ping-Ping Tsai, PhD, die bei <strong>der</strong> statistischen Auswertung<br />

eine große Hilfe war und mir vieles mit Engelsgeduld erklärt hat.<br />

Helge Stelzer danke ich sehr dafür, dass er für mich zum Techniker wurde und für die immer<br />

währende Unterstützung in sämtlichen an<strong>der</strong>en Bereichen meiner Doktorarbeit. Helge – ich<br />

wäre nichts ohne Dich!<br />

Ich danke Silke Corbach, die für alle Computer- und Formatierungsfragen stets eine Lösung<br />

parat hatte, meinen Fragen niemals müde wurde und eigene Belange für mich zurückgestellt<br />

hat.<br />

Ganz herzlich danke ich Dr. Christiane Kott, die mir die gesamte Zeit mit Rat und Tat zur<br />

Seite stand, meine Launen ertrug und mir immer wie<strong>der</strong> versicherte, dass alles gut wird.<br />

Ein ganz großes Dankeschön geht an alle Mitarbeiter des Instituts für Tierschutz und<br />

Verhalten, beson<strong>der</strong>s an Willa Bohnet, Silke Corbach, Pamela Do<strong>der</strong>er, Günter Grahwit,<br />

Hansjoachim Hackbarth, Anke Schraepler, Helge Stelzer und Astrid Zimmermann, die mir<br />

eine sehr familiäre Atmosphäre geschaffen haben und in allen Lebenslagen für mich da<br />

waren. Es wird schwer werden ein vergleichbares Arbeitsteam zu finden.<br />

Meiner Familie möchte ich meinen beson<strong>der</strong>en Dank aussprechen. Meine Eltern haben mich<br />

das werden lassen, was ich wollte und dafür eigene Entbehrungen in Kauf genommen. Sie<br />

haben mich in Krisenzeiten mit dem einen o<strong>der</strong> an<strong>der</strong>en Carepaket unterstützt und mir stets<br />

geduldig am Telefon zugehört. Meine Schwester hat mir zudem in den letzten Wochen meiner<br />

Arbeit ihren Computer zur Verfügung gestellt, was meine Arbeit sehr erleichtert hat.


Ich danke weiterhin meinen Freunden Maike Andrzejewski, Volker Arland, Sonja Driemeier,<br />

Astrid Hotze, Andrea Meiwes und Inga Siemer dafür, dass ich mich immer auf sie verlassen<br />

kann und sie je<strong>der</strong>zeit für mich da sind. Wie schön, dass es Euch gibt.<br />

Außerdem möchte ich mich bei allen Mitarbeitern <strong>der</strong> Tierklinik in Steinbergkirche bedanken,<br />

die mir die Gelegenheit gaben, neben meiner Doktorarbeit auch praktische Erfahrungen zu<br />

sammeln und ihr enormes Wissen mit mir geteilt haben.<br />

Mein Dank gilt auch meinem Lehrer Detlev Eichmann, <strong>der</strong> einen wichtigen Teil meines<br />

Lebensweges mit mir beschritten hat und immer noch präsent ist, wenn man ihn braucht.<br />

Abschließend möchte ich mich bei Dr. Elisabeth Drimalla und Anke Meinhardt für die<br />

deutliche Verbesserung meiner Lebensqualität bedanken.

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