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TC-PRAKTIKUM - TCI @ Uni-Hannover.de

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27Es wird <strong>de</strong>r gesamte Inhalt <strong>de</strong>s Reaktionsgefäßes (200mg Träger) eingesetzt.8. Am En<strong>de</strong> <strong>de</strong>r Messungen unbedingt pH-Elektro<strong>de</strong> verschließen.9. VERSUCHSAUFBAUDatenaufnahmesystempH -Stat-Anlage mitthermostatisierbaremReaktor10. PROTOKOLLTheorie:Sollte folgen<strong>de</strong> Stichpunkte behan<strong>de</strong>ln und max. 6 DIN A4 Seiten langsein!Enzyme (Aufbau, Funktion, Cosubstrate (Beispiele), Enzymklassen,Immobilisierungsverfahren, Einsatz von Enzymen i.d. Technik);Kinetik(Michaelis-Menten mit zugrun<strong>de</strong> liegen<strong>de</strong>n Vereinfachungen, Lineweaver-Burk); verschie<strong>de</strong>ne Hemmtypen (Auswirkung <strong>de</strong>r Hemmung auf v maxund K M ; Un-, Nicht- und Kompetitive Hemmung bei graphischerDarstellung bitte in eine Graphik); Einfluss an<strong>de</strong>rer Parameter auf dieEnzymaktivität; Versuchsdurchführung.Auswertung: Bestimmung <strong>de</strong>r Einzelgeschwindigkeiten v, v max , und K M <strong>de</strong>s nativenEnzymsDarstellung nach Lineweaver-Burk (Regress.koef.)Bestimmung von v immob. und Berechnung von v max , immob. unter Annahme,daß K M <strong>de</strong>s nativen Enzyms auch für das immobilisierte gültig ist.Diskussion: Vergleich zwischen nativen und immobilisierten EnzymVergleich <strong>de</strong>r ermittelten Werte mit Daten an<strong>de</strong>rer Gruppen (an<strong>de</strong>reTemperatur bzw. an<strong>de</strong>res Substrat bei gleicher Temperatur)

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