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Methoden - Kapitel 3.4.<br />
werden und nur das amplifizierte Produkt übrig bleiben. Für die Aufreinigung wurde<br />
ein kommerzielles Kit (MinElute® PCR Purification Kit, Qiagen) nach Herstelleranleitung<br />
verwendet. Doppelsträngige DNA-Fragmente, die länger als 70 Basenpaare<br />
sind, werden an einer silikatbeschichteten Membran zurückgehalten, während sie für<br />
die übrigen Komponenten durchlässig ist.<br />
Die aufgereinigten Produkte wurden mit Hilfe der Cycle-Sequencing-Reaktion von<br />
Sanger et al. (1977) direktsequenziert. Dabei wurden für alle Proben sowohl forward-Sequenzierungen<br />
(H-Strang) als auch reverse-Sequenzierungen (L-Strang)<br />
durchgeführt. Das Reaktionsvolumen betrug 20µl und setzte sich aus folgenden<br />
Komponenten zusammen (Tab. 3.13):<br />
Tabelle 3.13: Komponenten eines 20µl-Ansatzes für die Sequenzierungsreaktion<br />
nach Sanger.<br />
Komponente<br />
BigDye TM Terminator Ready Reaction<br />
Mix (PE Applied Biosystems)<br />
Sequencing Buffer (5x)<br />
(PE Applied Biosystems)<br />
µl je Probe<br />
Primer 0,6<br />
Aufgereinigtes PCR-Produkt 0,5-1<br />
Ampuwa 13,9-13,4<br />
Gesamtvolumen 20<br />
2<br />
3<br />
Die Sequenzierreaktion fand mit folgenden Parametern statt (Tab. 3.14):<br />
Tabelle 3.14: PCR-Parameter für die Sequenzierungsreaktion.<br />
Schritt Temperatur (°C) Dauer (min) Zyklen<br />
Initial 96 10<br />
Denaturation<br />
Annealing<br />
Elongation<br />
96<br />
50<br />
60<br />
10sec<br />
5sec<br />
4<br />
Soak 10 10<br />
25<br />
Nach dieser Sequenzierungs-PCR mussten die erhaltenen Produkte erneut gereinigt<br />
werden, da überschüssige, fluoreszenzmarkierte ddNTPS, Nukleotide und Polymerase<br />
zu einem starken Hintergrundrauschen führen bzw. die Analysierbarkeit der Probe<br />
stark einschränken. Für die Aufreinigung wurde das NucleoSeq Kit der Firma Macherey-Nagel<br />
verwendet, das auf dem Prinzip der Gelfiltration beruht. Die Durchführung<br />
wurde nach Angaben des Herstellers vorgenommen.<br />
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