Anlage A TECHNISCHES LASTENHEFT FÜR DIE ... - EURAC

Anlage A – Technisches Lastenheft
Anlage A
TECHNISCHES LASTENHEFT FÜR DIE LIEFERUNG EINES INTEGRIERTEN SYSTEMS FÜR
ELEKTROPHYSIOLOGIE, IMAGING UND FOTOMETRIE
CIG 521835853F
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Anlage A – Technisches Lastenheft
TECHNISCHES LASTENHEFT
für ein integriertes System für Elektrophysiologie, Imaging und Fotometrie
1. Einführung
Im vorliegenden Lastenheft werden beschrieben:
i) Ort und Modalität der Lieferung, Lieferbedingungen, Garantie und Eingriffsbedingungen bei Pannen
ii) Der Auftragsgegenstand bzw. die Merkmale der Lieferung, welche wissenschaftliche Instrumente und das Training
des zuständigen Personals umfassen muss
2. Ort und Modalität der Lieferung, Lieferbedingungen, Garantie und Eingriffsbedingungen bei Pannen
Das System muss auf Betreiben des Zuschlagsempfängers in den neuen Labors des Zentrums für Biomedizin (CBM) der
Europäischen Akademie Bozen, Galvanistraße 31, Bozen, geliefert, installiert und für den reibungslosen Betrieb ausgerichtet
werden. Das System wird in einem fensterlosen, für die Mikroskopie vorgesehenen Raum im 2. Obergeschoss
des Gebäudes in Betrieb genommen.
Innerhalb einer Woche ab Vertragsschluss muss der Zuschlagsempfänger einen Lokalaugenschein vornehmen, um die
Installationsbedingungen für das System zu prüfen.
Alle Lieferoperationen werden zu einem einzigen Zeitpunkt innerhalb von maximal 75 aufeinanderfolgenden Kalendertagen
ab der Vertragsunterzeichnung vorgenommen.
Im Vertragspreis inbegriffen sind auch Verpackung, Transport, Laden, Entladen und Platzierung im Zielraum sowie alle
Hubarbeiten; die Abfallentsorgung und die Entsorgung der Verpackungen, die mit dem Einbau und der Installation
zusammenhängen, sind auch inbegriffen sowie der Transport in die Mülldeponie und die Reinigung der Räumlichkeiten
in denen die Installation erfolgt.
Die fachgerechte Inbetriebnahme des gesamten Systems wird innerhalb von maximal 30 Tagen ab der Lieferung der
Geräte und der Bestandteile des Lieferumfangs vorgenommen.
Die Lieferung gilt erst als abgeschlossen, sobald die Konformitätsprüfung mit Ausstellung der entsprechenden Bestätigungsunterlagen
über den fachgerechten Betrieb des Systems erfolgt ist. Bei negativem Ausgang der Konformitätsprüfung
muss der Zuschlagsempfänger auf eigene Kosten und innerhalb von dreißig Arbeitstagen ab dem Datum der Konformitätsprüfung
mit negativem Ausgang die festgestellten Defekte beseitigen bzw. die betreffenden Produkte ersetzen.
Anschließend wird eine neue Konformitätsprüfung innerhalb 5 Tage vorgenommen.
Die Garantie auf das System und all seine Bestandteile muss über mindestens 12 Monate ab der Konformitätsprüfung
mit positivem Ausgang gelten.
Der Zuschlagsempfänger muss außerdem einen Bereitschaftsdienst für Pannenfälle und Fehlfunktionen des Systems
stellen, der über die Garantiedauer hinaus läuft. Die Reaktions- und Eingriffszeiten nach Anruf müssen angegeben
werden und sind ein Bewertungskriterium.
Die Bieter können Lieferungs- und Installationsfristen angeben, die von den oben genannten abweichen und nach den
Kriterien der Angebotsbewertung ausgewertet werden.
3. Merkmale der Lieferung
Die Mindestmerkmale der Lieferung, an die sich die Bieter bei sonstigem Ausschluss zu halten haben, werden im
nachfolgenden Teil erläutert. Die Kompatibilität aller Bestandteile muss garantiert werden und im eingereichten Angebot
detailliert angeführt sein. Das Unternehmen muss zudem für jeden Posten des technischen Lastenheftes in den
Angebotsunterlagen den entsprechenden Bezug angeben.
Alle gelieferten Güter müssen fabrikneu sein.
3.1 Mikroskop
Angefordert wird ein hoch stabiles, vollständig manuell zu bedienendes inverses Mikroskop für Anwendungen in den
Bereichen Elektrophysiologie und Videomikroskopie. Das Mikroskop muss für Fluoreszenzbeobachtung konfiguriert und
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für Beobachtungen mit Phasenkontrast (Leuchtsäule, Halogenlampe, etc.) ausgerüstet sein. Das Mikroskop muss außerdem
über einen Keuztisch verfügen, der mit den Zellkammern (cell chambers) kompatibel sein und neben der
Okularöffnung über mindestens zwei weitere Ausgänge für CCD-Kamera und Fotomultiplier verfügen muss. Das Mikroskop
muss mit einem effizienten System geliefert werden, das während der Messungen mindestens 20 Minuten lang
stabil den Fokus beibehält und garantiert keine durch Wärmeausdehnung bedingten Änderungen aufweist.
Das Mikroskop muss vollständig mit den anderen Systemkomponenten, insbesondere mit dem Setup für Elektrophysiologie
(Mikromanipulatoren, Zellkammern), kompatibel und kombinierbar, stabil und vibrationsfrei sein, um synchrone
Imaging-, Fotometrie- und Patch-Clamp-Experimente zu ermöglichen.
Folgende Objektive müssen inbegriffen sein:
Objektiv 10x mit PH, A.N. ≥ 0.25
Objektiv 20x mit PH, A.N. ≥ 0.4
Objektiv 20x FL, kein PH, A.N. ≥ 0.75
Objektiv 40x FL,Öl, mit effizienter UV-Übertragung (340 nm für Fura-2), A.N. ≥1.30
Objektiv 100x FL,Öl, mit effizienter UV-Übertragung (340 nm für Fura-2), A.N. ≥ 1.30
3.2 Elektrophysiologie
Es werden folgende Komponenten verlangt:
- Doppelter motorisierter X-Y-Z-Mikromanipulator mit Vorrichtigung für die Befestigung, Schrauben und Montagezubehör,
Headstages-Adapter, Verlauf auf drei Achsen, Möglichkeit für Bewegung mit einer Auflösung unterhalb 0.2 μm
und verschiedene Auflösungsoptionen, digitaler Positionscontroller mit Speicher.
- Mit dem Mikroskop kompatible Halterung für beide Mikromanipulatoren. Die Halterung muss auch den für die Mikroperfusion
zuständigen Mikromanipulator tragen können (s. Absatz 3.6)
- Multikanal-Verstärker mit zwei unabhängigen Kanälen und Support für bis zu 4 Kanäle, einsetzbar für einfache und
doppelte I-Clamp und V-Clamp-Anwendungen (geeignet für Aufnahmen unter verschiedenen Bedingungen: Whole Cell,
Einzelkanal, Field Potential oder intrazellulär) und ausgestattet mit zwei widerstandsfähigen Headstages mit Currentto-Voltage-
und Voltage-Following-Kreislauf (für einen raschen Übergang von Current Clamp zu Voltage Clamp).
- Analog-digitale 16-Bit-Schnittstelle mit Samplingfrequenz von mindestens 250 kHz pro Kanal und starker Geräuschunterdrückung,
mit dedizierter Software. PC-Anschluss mittels USB-Schnittstelle.
- Modellzelle für Patch- und Whole-Cell-Probeexperimente, die direkt mit den Headstages des Verstärkers verbunden
werden kann.
- Horizontaler Puller für Patch-Clamp- und Whole-Cell-Pipetten. Soll verschiedene Programme speichern können und ist
mit Probe –( das heisst zum Ausprobieren) Filament- und Glaskapillarensets (das heisst zum Ausprobieren) auf Objektträgern
ausgestattet.
- Vibrationsfester Tisch mit aktiven Luftfedern, faradayschem Käfig und Schutzstäben, ergonomisch und strukturell angepasst
(z.B.: Höhe, Verkleidung, Fläche gegen Salzlösungen resistent, Räder), kann mit einem für Patch-Clamp/Fluoreszenzspektroskopie
geeigneten Setup aufgestellt werden. Mindestabmessungen 750 mm x 1200 mm (muss genügend
Platz für Mikroskop, Manipulatoren und alle weiteren notwendigen Geräte bieten).
3.3 Beleuchtungsapparat
- Xenon-Bogenlampe
- Lampengehäuse vom optischen Gehäuse getrennt, um Überhitzung und Schäden am Optiksystem zu vermeiden
- Monochromator für sichtbare Wellenlängen, UV und IR (300-800nm), kompatibel mit ratiometrischen Messungen und
mit Switch-Geschwindigkeit von wenigen msec zwischen Wellenlängen, Shutter zur Vermeidung von Photobleaching,
effizienter Stray-Light-Reduzierung, kontinuierlicher Kontrollmöglichkeit der durchlaufenden Bandbreite und der Intensität
des Leuchtsignals.
- Garantiert mit der Imaging-/Fotometrie- und Elektrophysiologiesoftware kompatibel.
- Glasfaserverbindung (Liquid Light Guide), um Vibrationsfreiheit zu gewährleisten.
3.4 Fotometrie und Imaging
Das System muss ratiometrische Messungen an Einzelzellen mit hoher Aufnahmegeschwindigkeit (durch Photoröhre)
wie auch an Zellgruppen mit geringerer Aufnahmefrequenz mittels Digitalkamera ermöglichen. Das System wird nicht
lediglich für Ionenflüsse im Zytoplasma, sondern beispielsweise auch für die Auswertung des mitochondrialen Kalziums
verwendet und muss daher für beide Anwendungen konfiguriert sein.
Insbesondere muss das System folgende Elemente umfassen:
- Infrarotkamera und 2 Photovervielfacher-, mindestens eine davon mit hoher Empfindlichkeit im Rotspektrum (kompatibel
mit der Verwendung von SNARF als Fluorophor).
- Dreifachanschluss für die Kamera und die Fotomultiplier.
- Mobiles Diaphragma zur Bestimmung des Sichtfelds.
- Vollständige Optikausstattung (Filterwürfel, Filter, dichroische Filter und weitere notwendige Instrumente) für Fotometrie,
Imaging und Fluoreszenzbeobachtung: SNARF, Fluo-3/GFP, Fura-2, Hoechst/Dapi, TRITC/Rhod-2.
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- Digitalkamera mit folgenden Mindestmerkmalen
o Mindestaufnahmefrequenz 5 Hz (Full Frame)
o Thermoelektrische Kühlung des Detectors
o Kompatibel mit Imaging-Software
3.5 Zubehör für die Temperatursteuerung, Zellkammer (cell chambers) und Elektrofeld-Stimulation
- Zweikanaliges Temperatursteuerungssystem, geräuscharm, um Interferenzen mit den elektrophysiologischen Signalen
zu vermeiden. Das System muss die Steuerung der Temperatur in der Zellkammer (cell chambers) und der Perfusion
der Hauptlösung ermöglichen (z.B.: Normal Tyrode) (siehe Absatz 3.6).
- Manschette zur Steuerung der Temperatur für die Perfusion (In-line Solution Heater).
- Weiteres System zur Steuerung der Temperatur von Lösungen für die Mikroperfusion mittels Manschette mit 8 Kanälen
(oder gleichwertiges System).
- Zellkammer für Feldstimulation (Field Stimulation), mit dem Mikroskopstativ kompatibel, mit Elektroden ausgestattet,
Temperatursteuerung und mit Deckglas verwendbar.
- Zellkammer für Feldstimulation (Field Stimulation), mit dem Mikroskopstativ kompatibel, Temperatursteuerung, Unterbringungsmöglichkeit
für Petrischale zu 35 mm und mit Deckglas verwendbar.
Die Heizplattform und die Kammern müssen ein weites Sichtfeld ermöglichen, damit eine Beobachtung auch mit Tauchobjektiven
(Ölimmersion) gewährleistet ist. Weiters muss ein angemessenes System für die Fixierung der Perfusionsund
Aspirationsröhren vorhanden sein.
- Elektrische Stimulationseinheit für Feldstimulation (Field Stimulation).
3.6 Perfusions- und Mikroperfusionssystem
Das angebotene System muss die Perfusion der gesamten Zellkammer (Wash-out) wie auch das rasche Austauschen der
Perfusionslösung der betreffenden Zelle (mittels geeigneter „Feder“ oder gleichwertiger Lösung) ermöglichen. Die
Wahl der Perfusions-/Mikroperfusionslösung muss sowohl manuell als auch mittels Software über steuerbare Elektroventile
erfolgen. Daher wird die umfassende Kompatibilität mit der Software für Imaging/Fotometrie und Elektrophysiologie
vorausgesetzt. Das System muss Folgendes umfassen:
- Träger und modularen Holder für Spritzen verschiedener Größen (5 bis 140 cm³)
- Absperrhähne (Stopcocks) und Luer-Lock-Verbindungen
- Geeignetes Rohrset
Das Mikroperfusionssystem muss folgende Merkmale aufweisen:
- Totvolumen von Null.
- Möglichkeit, mindestens 8 Lösungen im Laufe eines einzigen Experiments auszutauschen
- Austauschgeschwindigkeit zwischen Lösungen nicht über 25 msec.
- Dediziertes Mikromanipulationssystem mit Holder.
Abschließend wird eine kompakte Peristaltikpumpe mit variablem Fluss für die Steuerung der Perfusion (Richtgeschwindigkeit
0.5 – 5 ml/min) und ein geeignetes Röhrenset verlangt.
3.7 Software und PC-Arbeitsstation:
- Für alle Systemfunktionen optimierter Rechner
- Vollständige Kompatibilität der Hardwarekomponenten des Systems
- Aktualisierte Software (letzte am Markt verfügbare Version) für die Aufnahme von elektrophysiologischen
Daten, mit:
o Treibern für die Steuerung der Hardwarekomponenten.
o Digitalem Oszilloskop.
o Möglichkeit, verschiedene Stimulationswellenlängen zu generieren.
o Möglichkeit, Makros für personalisierte Anpassung der Aufnahmeprotokolle zu erstellen.
o Event Mark Function (Möglichkeit, auf der grafischen Strom- oder Voltanzeige temporäre Marker für besondere Events
einzusetzen, z.B.: Beigabe von Pharmazeutika, Öffnung eines Elektroventils, Aufnahme eines Frames von der Videokamera,
…).
- Aktualisierte Software (letzte am Markt verfügbare Version) für Analyse der elektrophysiologischen Daten mit:
o Möglichkeit, Analyseroutinen und Makros für Analyse und Fitting der Experimentdaten zu erstellen.
- Aktualisierte Software (letzte am Markt verfügbare Version) für die Aufnahme und Analyse der Daten aus Fotometrie
und dynamischem Imaging mit:
o Treibern für die Steuerung der Hardwarekomponenten (Shutter, Monochromator, etc).
o Einsatzmöglichkeit verschiedener Kalibrierungsmethoden für Kalzium Imaging.
o
o
Möglichkeit, mehrere Bildbereiche (ROI) parallel im Rahmen desselben Experiments zu analysieren.
Möglichkeit, Bildbereiche (ROI) zu analysieren und den Hintergrund in Echtzeit während des Experiments zu entfernen.
Falls 2 verschiedene Softwares für Aufnahme/Analyse der Daten aus Fotometrie und dynamischem Imaging angeboten
werden, müssen die Merkmale beider Produkte und deren gegenseitige Kompatibilität bzw. deren Kompatibilität mit
der Elektrophysiologie-Software im Detail geschildert werden.
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- Aktualisierte Aufnahme- und Analysesoftware (letzte am Markt verfügbare Version) für statische Einzel- und Mehrfach-
Epifluoreszenz, Hintergrundentfernung, Zellzählung, Morphometrie; kompatibel mit den anderen Systemelementen.
- Flachbildschirm, mindestens 19’’.
- Möglichkeit, die Steuerungsprogramme der Fotometrie- und Imaging-Experimente mit jenen für Elektrophysiologie zu
verbinden.
- Möglichkeit, Programme für die Datenanalyse auf mindestens zwei PC-Arbeitsstationen zu installieren, welche nicht
der für die Aufnahme genutzten Arbeitsstation entsprechen.
3.8 Training in italienischer und englischer Sprache
Das Training wird in italienischer und englischer Sprache mittels noch festzulegender Methoden und über mehrere
Tage vorgenommen, und ist auf mindestens 3 Teilnehmer ausgerichtet und behandelt folgende Themen:
- Grundlagen der Elektrophysiologie: Wie werden I-Clamp- und V-Clamp-Experimente im Whole-Cell-Modus vorgenommen?
Verwendung der Aufnahme- und Analysesoftware für elektrophysiologische Daten.
- Grundlagen von Imaging und Fotometrie des intrazellulären Kalziums: Analyseparameter und Kalibrierungsverfahren.
Verwendung der Aufnahme- und Analysesoftware für Daten aus Fotometrie, dynamischem und statischem Imaging.
Die Kursteilnehmer erlernen die Grundlagen für die Nutzung des integrierten Systems und die Fähigkeit, die gelieferten
Softwares zu nutzen bzw. Aufnahme und Datenanalyseprotokolle zu erstellen und zu verwalten.
Während des Trainings werden weiters Pilotexperimente nach den Anforderungen der Teilnehmer durchgeführt.
3.9 Verschiedenes
Der Zuschlagsempfänger muss sämtliche Kabel und Verbindungselemente für die Verbindung der Systemkomponenten
untereinander und mit dem Stromnetz liefern.
Das Unternehmen muss zudem auf eigene Kosten alle auch nicht technischen Unterlagen und Handbücher betreffend
den Betrieb der gelieferten Güter und eventueller damit zusammenhängender komplexer Teile zur Verfügung stellen.
Inbegriffen sind auch eventuelle Aktualisierungen, die sich während der Ausführung des Vertrages ergeben.
Der Zuschlagsempfänger muss weiters einen Schulungs- und Wartungskurs erster Ebene für die Mitarbeiter des technischen
Dienstes abhalten.
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