Effekt selektiver und nicht selektiver nichtsteroidaler Antiphlogistika ...
Effekt selektiver und nicht selektiver nichtsteroidaler Antiphlogistika ... Effekt selektiver und nicht selektiver nichtsteroidaler Antiphlogistika ...
Abbildungsverzeichnis Abb. 1: Histologischer Aufbau der Darmwand .......................................................... 21 Abb. 2: Die Arachidonsäurekaskade in Anlehnung an VANE et al. 1998 ................. 38 Abb. 3: O2C-Sonde und Pulsoxymeter ..................................................................... 61 Abb. 4: Versuchsablauf und Zeitpunkte der Probenentnahme ................................. 64 Abb. 5: Ischämie- und Reperfusionsmodell .............................................................. 65 Abb. 6: Jejunumproben zu den drei Entnahmezeitpunkten ...................................... 66 Abb. 7: Die Produkte der Trizolextraktion ................................................................. 74 Abb. 8: Tunica muscularis und Tunica serosa – schematische Darstellung der Auswertung ............................................................................................................... 83 Abb. 9: Lunafärbung - Repräsentative Darstellung der eosinophilen Granulozyten in der Tunica muscularis und Tunica serosa ................................................................ 89 Abb. 10: Eosinophile Granulozyten pro mm 2 in der zirkulären Muskelschicht........... 91 Abb. 11: Eosinophile Granulozyten pro mm 2 in der intermuskulären Schicht ........... 92 Abb. 12: Eosinophile Granulozyten pro mm 2 in der longitudinalen Muskelschicht .... 93 Abb. 13: Eosinophile Granulozyten pro mm 2 in der Tunica serosa ........................... 94 Abb. 14: Immunhistochemische Darstellung von Zellclustern und Zellsaum der neutrophilen Granulozyten am equinen Jejunum ..................................................... 96 Abb. 15: Immunhistochemische Darstellung der neutrophilen Granulozyten am equinen Jejunum in der Ring- und Längsmuskelschicht in den Reperfusionsproben 98 Abb. 16: Immunhistochemische Darstellung der neutrophilen Granulozyten am equinen Jejunum in den ungeschädigten Jejunumproben 2 (K2) ............................. 99 Abb. 17: Immunhistochemische Darstellung der neutrophilen Granulozyten am equinen Jejunum in den ungeschädigten Jejunumproben 3 (K3) ........................... 102 Abb. 18: Repräsentative Negativ- und Isotypenkontrolle MAC 387 (Calprotectin) .. 104 Abb. 19: Neutrophile Granulozyten pro mm 2 in der zirkulären Muskelschicht ......... 106
Abb. 20: Vergleich des Einflusses von Flunixin-Meglumin und Firocoxib auf die Anzahl neutrophiler Granulozyten pro mm 2 in der zirkulären Muskelschicht........... 107 Abb. 21: Neutrophile Granulozyten pro mm 2 in der intermuskulären Schicht ......... 108 Abb. 22: Vergleich des Einflusses von Flunixin-Meglumin und Firocoxib auf die Anzahl neutrophiler Granulozyten pro mm 2 in der intermuskulären Schicht ........... 109 Abb. 23: Neutrophile Granulozyten pro mm 2 in der longitudinalen Muskelschicht .. 110 Abb. 24: Vergleich des Einflusses von Flunixin-Meglumin und Firocoxib auf die Anzahl neutrophiler Granulozyten pro mm 2 in der longitudinalen Muskelschicht .... 111 Abb. 25: Neutrophile Granulozyten pro mm 2 in der Tunica serosa ......................... 112 Abb. 26: Vergleich des Einflusses von Flunixin-Meglumin und Firocoxib auf die Anzahl neutrophiler Granulozyten pro mm 2 in der Tunica serosa ........................... 113 Abb. 27: Immunhistochemische Darstellung der COX-1 am ungeschädigten equinen Jejunum (K1) .......................................................................................................... 115 Abb. 28: Immunhistochemische Darstellung der COX-1 positiven perinukleären Reaktion in den Muskelzellen der Ringmuskelschicht ............................................ 116 Abb. 29: Immunhistochemische Darstellung von COX-1 positiven Zellen vom Zelltyp A in der Ringmuskelschicht .................................................................................... 117 Abb. 30: Immunhistochemische Darstellung von COX-1 positiven Zellen vom Zelltyp A und B in der Längsmuskelschicht (A, B) und in der Tunica serosa (C, D) ........... 118 Abb. 31: Immunhistochemische Darstellung der COX-1-Expression in den Endothelzellen ........................................................................................................ 119 Abb. 32: Immunhistochemische Darstellung der COX-1 am ischämisch geschädigten equinen Jejunum (I2) .............................................................................................. 121 Abb. 33: Immunhistochemische Darstellung der COX-1 nach Ischämie und Reperfusion des equinen Jejunums (R1) ............................................................... 123 Abb. 34: Repräsentative Negativ- und Isotypenkontrolle COX-1 ............................ 124 Abb. 35: Immunhistochemische Darstellung der COX-2 am ungeschädigten equinen Jejunum im Zeitverlauf (K1, K2, K3) ....................................................................... 128 Abb. 36: Immunhistochemische Darstellung der COX-2 im Bereich der Endothelzellen ........................................................................................................ 129
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Abbildungsverzeichnis<br />
Abb. 1: Histologischer Aufbau der Darmwand .......................................................... 21<br />
Abb. 2: Die Arachidonsäurekaskade in Anlehnung an VANE et al. 1998 ................. 38<br />
Abb. 3: O2C-Sonde <strong>und</strong> Pulsoxymeter ..................................................................... 61<br />
Abb. 4: Versuchsablauf <strong>und</strong> Zeitpunkte der Probenentnahme ................................. 64<br />
Abb. 5: Ischämie- <strong>und</strong> Reperfusionsmodell .............................................................. 65<br />
Abb. 6: Jejunumproben zu den drei Entnahmezeitpunkten ...................................... 66<br />
Abb. 7: Die Produkte der Trizolextraktion ................................................................. 74<br />
Abb. 8: Tunica muscularis <strong>und</strong> Tunica serosa – schematische Darstellung der<br />
Auswertung ............................................................................................................... 83<br />
Abb. 9: Lunafärbung - Repräsentative Darstellung der eosinophilen Granulozyten in<br />
der Tunica muscularis <strong>und</strong> Tunica serosa ................................................................ 89<br />
Abb. 10: Eosinophile Granulozyten pro mm 2 in der zirkulären Muskelschicht........... 91<br />
Abb. 11: Eosinophile Granulozyten pro mm 2 in der intermuskulären Schicht ........... 92<br />
Abb. 12: Eosinophile Granulozyten pro mm 2 in der longitudinalen Muskelschicht .... 93<br />
Abb. 13: Eosinophile Granulozyten pro mm 2 in der Tunica serosa ........................... 94<br />
Abb. 14: Immunhistochemische Darstellung von Zellclustern <strong>und</strong> Zellsaum der<br />
neutrophilen Granulozyten am equinen Jejunum ..................................................... 96<br />
Abb. 15: Immunhistochemische Darstellung der neutrophilen Granulozyten am<br />
equinen Jejunum in der Ring- <strong>und</strong> Längsmuskelschicht in den Reperfusionsproben 98<br />
Abb. 16: Immunhistochemische Darstellung der neutrophilen Granulozyten am<br />
equinen Jejunum in den ungeschädigten Jejunumproben 2 (K2) ............................. 99<br />
Abb. 17: Immunhistochemische Darstellung der neutrophilen Granulozyten am<br />
equinen Jejunum in den ungeschädigten Jejunumproben 3 (K3) ........................... 102<br />
Abb. 18: Repräsentative Negativ- <strong>und</strong> Isotypenkontrolle MAC 387 (Calprotectin) .. 104<br />
Abb. 19: Neutrophile Granulozyten pro mm 2 in der zirkulären Muskelschicht ......... 106
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