TiHo Bibliothek elib - Tierärztliche Hochschule Hannover
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ANHANG<br />
Transport-Assay nach der Konzentrationsgleichgewichtsmethode (CETA)<br />
1) Versuchspuffer ansetzen (siehe Medien und Puffer) bzw. Opti-MEM ® verwenden<br />
2) Inhibitor lösen: 5 mM TQD in DMSO oder 8,23 mM PSC833 in Ethanol/Tween80 (9:1) und A.<br />
bidest.<br />
3) Versuchsmedium + Inhibitor bzw. Vehikel vorbereiten<br />
TQD wird in einer Konzentration von 0,5 µM, PSC833 in einer Endkonzentration von 10 µM<br />
verwendet.<br />
4) Mikroskopische Kontrolle der Monolayer unter dem Mikroskop, Auswahl der Wells für die<br />
Inkubation mit dem Inhibitor<br />
5) Absaugen des Medium in den Transwell-Inserts (erst basolateral, dann apikal)<br />
6) Versuchsmedium +/- Inhibitor zur Vorinkubation einfüllen: Volumen vom Format der Membran-<br />
Inserts abhängig (12Well bzw. 6Well) basolateral: 1,5 bzw. 2,5 ml, apikal 0,7 bzw. 1,5 ml<br />
7) 1 h Vorinkubation (bei 37 °C und 50 U/min)<br />
8) Vorbereitung des Versuchsmediums mit jeweiligem Substrat: Rhodamin 123, Digoxin oder<br />
Verapamil<br />
Rhodamin 123<br />
Stocklösung: 10 mg/ml in Ethanol<br />
Versuchsmedium + 2 µM Rhodamin 123<br />
Digoxin<br />
Stocklösung 1: 5 mM in DMSO<br />
Stocklösung 2: Stocklösung 1 + Versuchsmedium (100 µM)<br />
Versuchsmedium + 10 nM Stocklösung 2 + 1,85 kBq/ml 3 H-Digoxin<br />
Verapamil<br />
Stocklösung 1: 4,375 mM Verapamil in Ethanol<br />
Stocklösung 2: Stocklösung 1 im Versuchsmedium verdünnen (43,75 µM)<br />
Versuchsmedium + 10 nM Stocklösung 2 + 1,85 kBq/ml 3 H-Verapamil<br />
Vom Versuchsmedium: Medium + Inhibitor bzw. Vehikel vorbereiten<br />
9) Medium für Permeabilitätskontrolle ansetzen:<br />
Versuchsmedium + 0,1 µCi/ml 14 C-Mannitol<br />
10) Vorinkubation beenden, TEER-Messung mit Messkammer oder -pinzette<br />
11) Medium der Vorinkubation entfernen und durch Versuchsmedium mit jeweiligem Substrat +/-<br />
Inhibitor ersetzen (basolateral: 1,5 bzw. 2,7 ml, apikal: 0,7 bzw. 1,5 ml)<br />
Das Medium mit Substrat wird in beide Kammern gegeben. Die Probenentnahme erfolgt<br />
ebenfalls aus beiden Kammern.<br />
Mannitol wird nur in die basolaterale Kammer geben, apikal erfolgen nur die Zugabe des<br />
Versuchsmediums sowie auch die Probenentnahme.<br />
12) Inkubation der Zellen bei 37 °C und 50 U/min<br />
13) Probennahme zu vorher festgelegten Zeitpunkten aus beiden Kammern: 50 bzw. 100 µl<br />
basolateral, 70 bzw. 130 µl apikal<br />
14) Weiteres Vorgehen siehe Bidirektionaler Transport-Assay<br />
Die Auswertung der Ergebnisse erfolgte mittels Analyse der AUC und Two-way ANOVA.<br />
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