28.02.2014 Aufrufe

TiHo Bibliothek elib - Tierärztliche Hochschule Hannover

TiHo Bibliothek elib - Tierärztliche Hochschule Hannover

TiHo Bibliothek elib - Tierärztliche Hochschule Hannover

MEHR ANZEIGEN
WENIGER ANZEIGEN

Sie wollen auch ein ePaper? Erhöhen Sie die Reichweite Ihrer Titel.

YUMPU macht aus Druck-PDFs automatisch weboptimierte ePaper, die Google liebt.

ANHANG<br />

8.3 Gewinnung primärer Astrozyten der Ratte<br />

Medien und Puffer<br />

PBS (pH 7,3)<br />

PBS (pH 7,3) + 2 % (v/v) Penicillin/Streptomycin<br />

Siehe Abschnitt 8.2 Lagerung bei 4 °C<br />

Dissoziationslösung<br />

9,2 ml DMEM<br />

0,4 ml Trypsin/EDTA-Lösung (10x) alle Lösungen<br />

0,2 ml HEPES (1 M) mischen und<br />

0,1 ml DNAse I (Endkonzentration: 0,1 mg/ml) sterilfiltrieren<br />

0,1 ml Penicillin/Streptomycin (10.000 E/10.000 µg/ml)<br />

Astrozyten-Medium<br />

DMEM Low Glucose<br />

10 % (v/v) fetales Kälberserum (nicht-standardisiert)<br />

1 % (v/v) Penicillin/Streptomycin<br />

Präparation<br />

1) 5-6 Ratten (0-3 Tage alt, P0-P3) mit CO 2 betäuben, Dekapitation, Köpfe in Ethanol tauchen, im<br />

Becherglas mit PBS + 2% Penicillin/Streptomycin auf Eis sammeln<br />

2) Schädel eröffnen, Gehirn herauspräparieren, Stammhirn und Kleinhirn entfernen, Cortices in<br />

Petrischale mit eiskaltem PBS + 2 % Penicillin/Streptomycin sammeln<br />

3) Cortices auf Filterpapier von Meningen befreien, Cortexhälften trennen, Hippocampus durch<br />

Herausrollen entfernen Cortices in 15 ml-Röhrchen mit Puffer sammeln, Lagerung auf Eis!<br />

4) Puffer absaugen, Dissoziationslösung zugeben, Cortices mit 10 ml-Pipette homogenisieren<br />

5) Homogenat 30 min bei 37 °C im Wasserbad inkubieren, regelmäßig schütteln<br />

6) Verdau sorgfältig mit 10 ml-Pipette dissoziieren<br />

7) 5 min bei 400xg zentrifugieren, Überstand absaugen (oder dekantieren)<br />

8) Pellet in 10 ml Astrozytenmedium resuspendieren<br />

9) 5 min bei 200xg zentrifugieren, Überstand absaugen<br />

10) Pellet in 6 ml Astrozytenmedium (1 ml/Gehirn) aufnehmen<br />

11) Zellsuspension durch ein Gewebesieb filtrieren (erst 70 µm, dann 40 µm)<br />

12) Aussaat der Zellen in 25 cm 2 Flaschen (3-4 Gehirne/Flasche)<br />

Kultivierung<br />

1) mikroskopische Kontrolle am nächsten Tag, Medium absaugen, abgesetzte Zellen mit<br />

Astrozytenmedium vorsichtig waschen, neues Medium hinzugeben<br />

2) alle 2-3 Tage Mediumswechsel<br />

3) Entfernung der Oligodendrozyten und Mikroglia: Flaschen bei 250 Umdrehungen/min (U/min)<br />

schütteln für einige Stunden oder über Nacht<br />

4) bei ca. 90 % Konfluenz: Passage oder Kryokonservierung<br />

5) für Kokultur mit Hirnkapillarendothelzellen: bei 70-80 % Konfluenz Aussaat der Astrozyten 3 Tage<br />

vor Endothelzellen<br />

212

Hurra! Ihre Datei wurde hochgeladen und ist bereit für die Veröffentlichung.

Erfolgreich gespeichert!

Leider ist etwas schief gelaufen!