TiHo Bibliothek elib - Tierärztliche Hochschule Hannover
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ANHANG<br />
8.3 Gewinnung primärer Astrozyten der Ratte<br />
Medien und Puffer<br />
PBS (pH 7,3)<br />
PBS (pH 7,3) + 2 % (v/v) Penicillin/Streptomycin<br />
Siehe Abschnitt 8.2 Lagerung bei 4 °C<br />
Dissoziationslösung<br />
9,2 ml DMEM<br />
0,4 ml Trypsin/EDTA-Lösung (10x) alle Lösungen<br />
0,2 ml HEPES (1 M) mischen und<br />
0,1 ml DNAse I (Endkonzentration: 0,1 mg/ml) sterilfiltrieren<br />
0,1 ml Penicillin/Streptomycin (10.000 E/10.000 µg/ml)<br />
Astrozyten-Medium<br />
DMEM Low Glucose<br />
10 % (v/v) fetales Kälberserum (nicht-standardisiert)<br />
1 % (v/v) Penicillin/Streptomycin<br />
Präparation<br />
1) 5-6 Ratten (0-3 Tage alt, P0-P3) mit CO 2 betäuben, Dekapitation, Köpfe in Ethanol tauchen, im<br />
Becherglas mit PBS + 2% Penicillin/Streptomycin auf Eis sammeln<br />
2) Schädel eröffnen, Gehirn herauspräparieren, Stammhirn und Kleinhirn entfernen, Cortices in<br />
Petrischale mit eiskaltem PBS + 2 % Penicillin/Streptomycin sammeln<br />
3) Cortices auf Filterpapier von Meningen befreien, Cortexhälften trennen, Hippocampus durch<br />
Herausrollen entfernen Cortices in 15 ml-Röhrchen mit Puffer sammeln, Lagerung auf Eis!<br />
4) Puffer absaugen, Dissoziationslösung zugeben, Cortices mit 10 ml-Pipette homogenisieren<br />
5) Homogenat 30 min bei 37 °C im Wasserbad inkubieren, regelmäßig schütteln<br />
6) Verdau sorgfältig mit 10 ml-Pipette dissoziieren<br />
7) 5 min bei 400xg zentrifugieren, Überstand absaugen (oder dekantieren)<br />
8) Pellet in 10 ml Astrozytenmedium resuspendieren<br />
9) 5 min bei 200xg zentrifugieren, Überstand absaugen<br />
10) Pellet in 6 ml Astrozytenmedium (1 ml/Gehirn) aufnehmen<br />
11) Zellsuspension durch ein Gewebesieb filtrieren (erst 70 µm, dann 40 µm)<br />
12) Aussaat der Zellen in 25 cm 2 Flaschen (3-4 Gehirne/Flasche)<br />
Kultivierung<br />
1) mikroskopische Kontrolle am nächsten Tag, Medium absaugen, abgesetzte Zellen mit<br />
Astrozytenmedium vorsichtig waschen, neues Medium hinzugeben<br />
2) alle 2-3 Tage Mediumswechsel<br />
3) Entfernung der Oligodendrozyten und Mikroglia: Flaschen bei 250 Umdrehungen/min (U/min)<br />
schütteln für einige Stunden oder über Nacht<br />
4) bei ca. 90 % Konfluenz: Passage oder Kryokonservierung<br />
5) für Kokultur mit Hirnkapillarendothelzellen: bei 70-80 % Konfluenz Aussaat der Astrozyten 3 Tage<br />
vor Endothelzellen<br />
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