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Tierärztliche Hochschule Hannover - TiHo Bibliothek elib

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Alexa Fluor 488, Ziegenantikörper gegen<br />

Kaninchen IgG<br />

Alexa Fluor 488, Ziegenantikörper gegen<br />

Hühner IgY<br />

Alexa Fluor 488, Ziegenantikörper gegen<br />

Mäuse IgG<br />

Alexa Fluor 555, Ziegenantikörper gegen<br />

Kaninchen IgG<br />

Alexa Fluor 549, Ziegenantikörper gegen<br />

Mäuse IgG<br />

1:500<br />

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4.7.6 Immunfluoreszenzmarkierung von humanen Pankreastumorzellen<br />

Für die Immunfluoreszenz wurden Zellen von CAPAN-1, CAPAN-2, DAN-G, YAPC, HUP-<br />

T3, HUP-T4, HEP G2 vec. PaTu-8988 S, PaTu-8988 T und PaTu-8902 auf Deckgläschen in<br />

12-Loch-Zellkulturschalen kultiviert. Mittels Immunfluoreszenzmarkierung der S100A8/A9<br />

und Reg3A Proteine sollte getestet werden, ob diese Proteine von den Tumorzellen selbst<br />

synthetisiert und sezerniert werden.<br />

Zur Fixierung wurde das Zellkulturmedium abgesaugt und die Zellen mehrfach mit PBS<br />

gewaschen. Anschließend wurde je Loch 1 ml 4% Formaldehyd, 120 mM<br />

Dinatriumhydrogenphosphat pH 8 zugegeben und für 20 Minuten bei RT und 10 Minuten bei<br />

4°C fixiert. Die Fixierlösung wurde abgesaugt, die fixierten Zellen auf den Deckgläschen 3-<br />

mal mit BPS gewaschen und dann 50 Minuten mit Blockpuffer (5% BSA in PBS) inkubiert.<br />

Die Inkubation mit Antikörpern fand in den 12-Loch-Zellkulturschalen statt. Je Loch wurde<br />

immer 750 µl Puffer mit darin verdünntem Antikörper verwendet. Bei Waschschritten wurde<br />

jeweils 1 ml Waschpuffer je Loch verwendet. Der primäre Antikörper wurde in PBS 1% BSA<br />

verdünnt und 3 Stunden mit den Zellen inkubiert. Vor Verwendung des Sekundärantikörper<br />

wurden die Präparate 6-mal mit PBS + 200 mM NaCl gewaschen und dann 20 Minuten in<br />

Blockpuffer geblockt. Alle folgenden Schritte wurden mit möglichst wenig Lichteinfluss<br />

ausgeführt um die photosenitiven Sekundärantikörper nicht auszubleichen. Die<br />

Sekundärantikörper wurden für 1 Stunde mit den Zellen inkubiert. Die DNA der Zellkerne<br />

wurde für 15 Sekunden mit DAPI (0,5µg/ml in PBS) gefärbt. Abschließend wurden die<br />

Präparate mehrfach mit PBS gewaschen, die Deckgläschen mit den Zellen nach unten in einen<br />

Tropfen Glycerin auf einen Objektträger gelegt und zur mittelfristigen Konservierung mit<br />

Nagellack umrandet.<br />

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