Tierärztliche Hochschule Hannover - TiHo Bibliothek elib
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erhöhte Salzkonzentration sollte den Wascheffekt verstärken. Alle folgenden Schritte wurden<br />
mit möglichst wenig Lichteinfluss ausgeführt um die photosenitiven Sekundärantikörper nicht<br />
auszubleichen. Die Sekundärantikörper wurden 1:450 verdünnt eingesetzt und für 1 Stunde<br />
mit den Zellen inkubiert. Die DNA der Zellkerne wurde für 15 Sekunden mit DAPI (0,5<br />
µg/ml in PBS) gefärbt. Abschließend wurden die Präparate mehrfach mit PBS gewaschen, die<br />
Deckgläschen mit den Zellen nach unten in einen Tropfen Glycerin auf einen Objektträger<br />
gelegt und zur mittelfristigen Konservierung mit Nagellack umrandet.<br />
4.7.3 Methoden zur Verringerung der Eigenfluoreszenz von Pankreasgewebeproben<br />
Da Eigenfluoreszenz die Auswertung von fluoreszenzmarkierten Pankreasgewebeproben<br />
erschwert oder sogar unmöglich macht, wurden einige in Literatur beschriebene Verfahren<br />
zur Unterdrückung der Eigenfluoreszenz durchgeführt.<br />
Kupfersulfat-Behandlung<br />
Kupfer-II-sulfat in Konzentrationen von 10 bis 100 mM wurde in Anlehnung an Schnell<br />
(Schnell 1999) in Ammoniumazetat gelöst. Die Präparate wurden nach dem Demaskieren für<br />
60-90 Minuten im Dunkeln mit der hergestellten Lösung inkubiert und anschließend<br />
mehrfach in BPS gewaschen. Jetzt wurde die Immunfluoreszenz-Markierung wie beschrieben<br />
durchgeführt.<br />
Toluidin Blau-Behandlung<br />
Die Präparate wurden nach dem Entparaffinieren für 8 Stunden in 0,1% Toluidin Blau 0 (m/v)<br />
in 70% Isopropylalkohol gefärbt, dann kurz in 70%igem Isopropylalkohol gewaschen und in<br />
PBS überführt. Anschließend wurden die Gewebeproben demaskiert und es fand wie<br />
beschrieben die Fluoreszenzmarkierung statt.<br />
Sudan Schwarz B-Behandlung<br />
In Anlehnung an Schnell (Schnell 1999) wurde Sudan Schwarz in Konzentrationen von 0,1%<br />
bis 10% (m/v) in 70% Ethanol für 5 Minuten im Anschluss an die<br />
Immunfluoreszenzmarkierung durchgeführt. Überschüssiges Sudan Schwarz wurde in<br />
70%igem Ethanol abgewaschen. Weiterhin wurde ein Protokoll von Viegas (Viegas 2007)<br />
verwendet. Hier wurden die Präparate nach dem Demaskieren für 20 Minuten in 0,1% (m/v)<br />
Sudan Schwarz in 70% Ethanol inkubiert. Die spezifische Fluoreszenzmarkierung wurde in<br />
verschiedenen Versuchen vor und nach Sudan Schwarz Behandlung durchgeführt.<br />
UV-Bestrahlung<br />
Vor dem Entparaffinieren wurden die Gewebeproben für 2 Stunden mit einem 302 nm UV-<br />
Transilluminator im Abstand von 4 mm zur Lichtquelle bestrahlt, anschließend wie<br />
beschrieben entparaffiniert, demaskiert und fluoreszenzmarkiert.<br />
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