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3.1.6 Antikörper Zur Detektion bestimmter Proteine wurden im Western-Blot oder zur Immunfluoreszenzmarkierung folgende primäre Antikörper verwendet: Calgranulin A (MRP 8) polyklonaler Ziegenantikörper gegen humanes Calgranulin A (E 10) Santa Cruz Biotechnology Calgranulin B (MRP14) monoklonaler Mausantikörper gegen humanes Calgranulin B (MRP 1H9) Santa Cruz Biotechnology Calgranulin A/B (MRP 8/14) monoklonaler Mausantikörper gegen humanes Calgranulin A/B (27E10) Santa Cruz Biotechnology GAPDH polyklonaler Kaninchenantikörper gegen humanes GAPDH Abcam P0301501 (S100A9) polyklonaler Hühnerantikörper gegen humanes rekombinantes S100A9 Eurogentec P0841202 (Reg3A) polyklonaler Hühnerantikörper gegen die N-terminalen 16Aminosäuren des humanen Reg3A Eurogentec RegIIIα polyklonaler Ziegenantikörper gegen Maus/ Ratte RegIIIα (L-14) Santa Cruz Biotechnology RegIIIα/γ polyklonaler Kaninchenantikörper gegen humanes RegIIIα/γ (H-69) Santa Cruz Biotechnology Reg3A monoklonaler Mausantikörper gegen rekombinantes humanes Reg3A (gesamtes Protein)(2C11) Sigma-Aldrich Synaptobrevin 2 polyklonaler Kaninchenantikörper Wako Chemicals 30
(VAMP-2) gegen Ratte Synaptobrevin 2 Trypsinogen polyklonaler Kaninchenantikörper gegen Rinder Trypsinogen Abcam Zum Sichtbarmachen der durch spezifische Antikörper markierten Proteine im Western-Blot oder bei Immunfluoreszenzmarkierung wurden folgende sekundäre Antikörper eingesetzt: Alexa Fluor 488, fluoreszenzmarkierter Ziegenantikörper gegen Kaninchen IgG Invitrogen Alexa Fluor 488, fluoreszenzmarkierter Ziegenantikörper gegen Hühner IgY Invitrogen Alexa Fluor 488, fluoreszenzmarkierter Ziegenantikörper gegen Mäuse IgG Invitrogen Alexa Fluor 555, fluoreszenzmarkierter Ziegenantikörper gegen Kaninchen IgG Invitrogen Alexa Fluor 549, fluoreszenzmarkierter Ziegenantikörper gegen Mäuse IgG Invitrogen Meerrettichperoxidase-gekoppelter Eselantikörper gegen Kaninchen IgG Meerrettichperoxidase-gekoppelter Schafantikörper gegen Mäuse IgG Meerrettichperoxidase-gekoppelter Ziegenantikörper gegen Hühner IgY Meerrettichperoxidase-gekoppelter Ziegenantikörper gegen Mäuse IgG Meerrettichperoxidase-gekoppelter Ziegenantikörper gegen Hühner IgY Amersham Pharmacia Amersham Pharmacia Amersham Pharmacia Sigma Sigma 31
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Abb. 12: A-C‘ Chronische Pankreat
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Abb. 13: Immunfluoreszenzmarkierung
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In Abb. 14 A wurde S100A9 in Gewebe
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Abb. 16: Immunfluoreszenzmarkierung
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5.4 Ergebnisse der quantitativen Pr
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Abb. 19: ROC-Analyse der S100A8/A9
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signifikant, während sich die Grup
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Abb. 22: ROC-Analyse der Plasmakonz
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6. Diskussion Das Pankreas produzie
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Das zweite Protein, das in dieser A
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ICAM-1 des Endothels erhöht. Fasst
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(Ghavami 2004) beschrieb die Indukt
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Adenokarzinom meistens im Pankreask
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Reg3A für die Aggregation von Bakt
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homogener Tumortypen zur Immunfluor
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spricht dafür, dass man chronische
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Als Indikator der Überexpression v
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detektiert werden. In der Mehrzahl
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8. Summary Till Erben: “Detection
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ER Fab Fc GAPDH (G/V) h HE HPF HRP
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Puffer RNA ROC ROS rpm RT SB Sens.
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Chelvanayagam DK, Beazley LD (1997)
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Keim V, Iovanna JL, Rohr G, Usadel
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Ni XG, Bai XF, Mao YL, et al. (2005
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Strobel O, Rosow DE, Rakhlin EY, et
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11. Danksagung Mein herzlicher Dank
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What to do with high autofluorescen
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Introduction: The preservation of t
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erythrocytes (Baschong, et al., 200
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Materials and Methods: Preparation
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carried out by first applying Sudan
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For each set of compared experiment
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was visualized using bright field m
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prior to the application immunolabe
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Discussion: Intrinsic and induced a
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effects on the fluorescent staining
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Toluidine Blue has been described t
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References: Andersson, H., Baechi,
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Rosenow, F., Ossig, R., Thormeyer,
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Tab. 1: Specifications of the filte
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Figure legends Fig. 1 Localization
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conjugated antibodies reveal mature
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