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Tierärztliche Hochschule Hannover
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meinen Eltern
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3.1.2 Material 22 3.1.3 Geräte und
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4.8.4 Bestimmung von CEA, CA19-9 un
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6.3 Schlussfolgerung 110 7. Zusamme
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1.1 Das Pankreas 1.1.1 Physiologie
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zwischen Cathepsin L und B sowie St
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1.2.3 Pankreaserkrankungen bei Tier
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1.3.1 Das C-reaktive Protein (CRP)
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1.3.3 Der S100A8/9-Proteinkomplex C
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Entzündungsgeschehen, Infektionen,
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Matrixproteine Laminin-1 und Fibron
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die Verwendung von Antikörpern, di
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2. Aufgabenstellung Um eine zuverl
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Natriumdihydrogenphosphat (NaH 2 PO
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3.1.2 Material Blutentnahmesystem (
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Zentrifuge (Sorvall RC-5 B, Rotoren
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Elutionspuffer: Harnstoff 4M 4 M Ha
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PBS, phosphate buffered saline 13,7
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3.1.6 Antikörper Zur Detektion bes
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3.1.7 Zelllinien Folgende Zelllinie
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4. Methoden 4.1 Separation von Prot
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4.2.3 Darstellen der antikörpermar
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Die Zellen wurden für weitere Vers
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Meerrettichperoxidase-gekoppelter S
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2010). Einer Subklasse dieser IgY A
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Kupplungspuffer bestehend aus 0,6 M
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Sekundärantikörpern inkubiert. Di
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erhöhte Salzkonzentration sollte d
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die Gruppen „chronische Pankreati
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Alexa Fluor 488, Ziegenantikörper
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Veränderungen der Plasmakonzentrat
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derselben Firma durchgeführt. Dabe
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4.9 Statistische Auswertung Die Erg
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5. Ergebnisse Im Folgenden werden d
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dieser Banden nach Immunpräzipitat
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Bedingungen die Antikörperketten n
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Abb. 4: Immunfluoreszenzmarkierung
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Bildbereich als Leerwert ausgewähl
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Pankreasgewebeschnitte angepasst un
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Wie bereits in Abb. 6 gezeigt, wird
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Abb. 8: Fluoreszenzmarkierung von R
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Abb. 9: Zwei histopathologische Bil
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Abb. 11 A zeigt die Fluoreszenzmark
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Abb. 12: A-C‘ Chronische Pankreat
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Abb. 13: Immunfluoreszenzmarkierung
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In Abb. 14 A wurde S100A9 in Gewebe
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Abb. 16: Immunfluoreszenzmarkierung
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5.4 Ergebnisse der quantitativen Pr
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Abb. 19: ROC-Analyse der S100A8/A9
- Seite 104 und 105: signifikant, während sich die Grup
- Seite 106 und 107: Abb. 22: ROC-Analyse der Plasmakonz
- Seite 108 und 109: 6. Diskussion Das Pankreas produzie
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