TiHo Bibliothek elib - Tierärztliche Hochschule Hannover
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Material und Methoden<br />
3.5.2.4 Messung und Auswertung<br />
Der Anteil plasma- und akrosommembranintakter Spermien wurde wie bei Henning<br />
(2009) beschrieben, bestimmt. Dazu wurden 492,5 µl verdünntes Sperma mit 2,5 µl<br />
PI-Stammlösung (Endkonzentration: 2,7 µg/ml) und 5 µl FITC-PNA-Stammlösung<br />
(Endkonzentration: 3 µg/ml) vermischt und 5 min bei Raumtemperatur inkubiert.<br />
Anschließend wurden 10 µl der gefärbten Spermiensuspension in 890 µl HBS<br />
überführt und analysiert.<br />
Die Auswertung erfolgte nach mathematischer Kompensation sich überlagernder<br />
Emissionspektren an Hand des FL-1/FL-3-dotplots. Hierzu wurde der prozentuale<br />
Anteil der Ereignisse in folgenden vier Spermienpopulationen durch Setzen einer<br />
vertikalen und einer horizontalen Grenzlinie („gate“) differenziert:<br />
1. = Plasmamembran defekt und Akrosommembran intakt<br />
(PI-positiv/FITC-PNA-negativ)<br />
2. = Plasmamembran defekt und Akrosommembran defekt<br />
(PI-positiv/FITC-PNA-positiv)<br />
3. = Plasmamembran intakt und Akrosommembran intakt<br />
(=membranintakte Spermien; PI- negativ/FITC-PNA-negativ)<br />
4. = Plasmamembran intakt und Akrosommembran defekt<br />
(PI-negativ/FITC-PNA-positiv)<br />
Für den gesamten Versuchszeitraum wurden, soweit möglich, eine einheitliche<br />
Kompensation und identische Grenzlinien verwendet.<br />
3.5.3 Calciuminflux<br />
Der intrazelluläre Calciumgehalt wurde zu definierten Zeitpunkten der Inkubation in<br />
drei Varianten von Tyrodemedien in Anlehnung an Henning (2009) nach einem<br />
vereinfachtem Protokoll gemessen. Es wurde dasselbe Durchflusszytometer wie<br />
unter Kap. 3.5.2.1 beschrieben verwendet.<br />
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