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Tierärztliche Hochschule Hannover Einfluss unterschiedlicher ...

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Inhalt<br />

1 Einleitung 1<br />

2 Literatur 5<br />

2.1 Gewinnung von Kumulus-Oozyten-Komplexen (KOK) mit der Ovum-Pick-Up<br />

(OPU)-Methode . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5<br />

2.1.1 Die Entwicklung des OPU . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5<br />

2.1.2 Vergleich des OPU mit anderen Methoden zur Gewinnung von Eizellen<br />

bzw. Embryonen beim Rind . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6<br />

2.2 <strong>Einfluss</strong> des OPU auf die Gesundheit des Donortieres . . . . . . . . . . . . . . 7<br />

2.3 <strong>Einfluss</strong> des OPU auf den ovariellen Zyklus . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 7<br />

2.4 Einflüsse des Zyklusstandes auf die Ergebnisse des OPU . . . . . . . . . . . . 8<br />

2.5 <strong>Einfluss</strong> des Zyklusstandes auf die Qualität der KOK . . . . . . . . . . . . . . 9<br />

2.6 Beurteilung der Entwicklungskompetenz boviner Oozyten . . . . . . . . . . . 10<br />

2.7 <strong>Einfluss</strong> des Zyklusstandes auf die Entwicklungskompetenz boviner KOK . . . 12<br />

2.8 Beeinflussung der follikulären Reifungsvorgänge durch peripheres Progesteron 14<br />

2.9 In-vitro-Maturation (IVM) boviner Oozyten . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 15<br />

2.10 Beeinflussung der Eizell- und Embryonenqualität . . . . . . . . . . . . . . . . 16<br />

2.11 <strong>Einfluss</strong> der Maturationsbedingungen auf die Eizell- und Embryonenqualität . . 17<br />

2.12 <strong>Einfluss</strong> der Steroidsupplementation während der IVM . . . . . . . . . . . . . 19<br />

2.13 MessengerRNA-Expression entwicklungsrelevanter Gene in bovinen Oozyten<br />

und Embryonen . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 21<br />

2.13.1 Growth and Differentiation Factor 9 (GDF9) . . . . . . . . . . . . . . 22<br />

2.13.2 Bone Morphogenetic Protein 15 (BMP15) . . . . . . . . . . . . . . . . 23<br />

2.13.3 Glukosetransporter 1 (SLC2A1) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 24<br />

2.13.4 Hypoxia Inducible Factor 2α (HIF2α) . . . . . . . . . . . . . . . . . . 25<br />

2.14 MessengerRNA-Expression von Progesteronstoffwechsel-relevanten Genen in<br />

Oozyten und Embryonen . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 26<br />

2.14.1 Progesteronrezeptoren . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 26<br />

2.14.2 Progestin und AdipoQ Rezeptor 5 (PAQR5) . . . . . . . . . . . . . . . 27<br />

2.15 Ziel des Projektes . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 28<br />

3 Material und Methoden 29<br />

3.1 Ovum Pick-Up (OPU) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 29<br />

3.1.1 Auswahl der Versuchstiere und Feststellung des Versuchsbeginns . . . 29<br />

3.1.2 Gewinnung von Kumulus-Oozyten-Komplexen im OPU-Verfahren . . . 30<br />

3.1.3 Blutentnahme und Konservierung der Blutproben . . . . . . . . . . . . 33<br />

3.1.4 Bestimmung der Progesteronkonzentration im Blut . . . . . . . . . . . 34<br />

3.2 In-vitro-Produktion boviner Embryonen . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 35<br />

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