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2. Material und Methodik
Keimsuspension auf Columbia-Agar mit 5% Schafsblut. Dabei wurde jede der beiden
Verdünnungen jeweils doppelt angelegt, indem die Platte halbiert und auf jeder Hälfte 0,1 ml der
Verdünnung ausgestrichen wurde. Die Keimsuspensions-Kontrollen wurden bei 36 ± 1 °C bebrütet
und nach 24 Stunden, bei Candida nach 48 Stunden abgelesen.
2.1.2.5 Kontamination
Pro Ansatz wurden jeweils drei Testflächen (A, B und C) kontaminiert. Auf jede Testfläche wurden
1,5 ml der Keimsuspension mit einer Pipette aufgebracht und mit einem sterilen Wattetupfer, der mit
der Keimsuspension getränkt war, auf dem Gesamt-Areal gleichmäßig verteilt. Die gleichmäßige
Kontamination der Fläche wurde durch zuerst vorsichtiges, kreisförmiges Verteilen und
nachfolgendes zweimaliges Ausstreichen der Flüssigkeit mit dem Wattetupfer in Quer- und in
Längsrichtung des rechteckigen Gesamt-Areals erreicht. Für jede der drei Testflächen wurde ein
neuer Wattetupfer verwendet.
2.1.2.6 Antrocknen der Keimsuspension
Nach der Kontamination trocknete die Keimsuspension auf der Testfläche während 15 Minuten an.
2.1.2.7 Dekontamination
Dekontaminiert wurde immer das markierte Gesamt-Areal (30 cm × 40 cm). Um den Wischvorgang
so weit wie möglich zu standardisieren, wurde die Dauer des Wischvorgangs auf 6 Sekunden pro
Testfläche festgelegt und der Wischvorgang immer von derselben Person (= Untersucherin)
durchgeführt. Testfläche A wurde mit einem mit 70 vol.-%igem Ethylalkohol durchtränkten
Einmalwischtuch durch Wischen desinfiziert. Testfläche B wurde mit einem in Reinigungslösung
getauchten und gut ausgedrückten Einmalwischtuch durch Wischen gereinigt. Testfläche C wurde
nicht dekontaminiert (Positiv-Kontrolle für die Kontamination). Nach der Dekontamination der
Testflächen wurde ein Zeitraum von 10 Minuten bis zur Keimrückgewinnung abgewartet, um das
vollständige Trocknen der Flächen A und B zu gewährleisten.