Kolbe, H., Stephan-Beckmann, S., 1997. Development, growth and chemical composition of the potato crop (Solanum tuberosum L.). II. Tuber and whole plant. Potato Research. 40, 135-153. Laboski, C.A.M., Kelling, K.A., 2007. Influence of fertilizer management and soil fertility on tuber specific gravity: a review. Amer. J. of Potato Res. 84, 3-290. Lærke, P.E., 2001. Blackspot bruise in potato tubers. Ph. D. thesis, Department of Plant Biology, The Royal Veterinary and Agricultural University, Denmark. Lærke, P.E., Christiansen, J., Veierskov, B., 2002. Colour of blackspot bruises in potato tubers during growth and storage compared to their discolouration potential. Postharvest Biol. Technol. 26, 99-111. Landahl, S., Herppich, W.B., Herold, B., Geyer, M., 2004. A comprehensive evaluation of the interaction between produce elasticity and water status. Europ. J. Hort. Sci. 69 (6), 1-6. Landrigan, M., Morris, S.C., Eamus, D., McGlasson, W.B., 1996. Postharvest water relationships and tissue browning of rambutan fruit. Sci. Hortic. 66, 201-208. Laza, M., Scanlon, M.G., Mazza, G., 2001. The effect of tuber pre-heating temperature and storage time on the mechanical properties of potatoes. Food Res. Int. 34, 659-667. Lulai, E.C., 2007. Skin-set, wound healing, and related defects. In: Vreugdenhil, D. (Ed), Potato biology and biotechnology. Advances and perspectives. 1. Elsevier, Amsterdam, pp. 471-496. Neumann, P.M., 1995. The roll of the cell wall adjustment in plant resistance to water deficits. Crop Sci. 35, 1258-1266. Olsen, N., Thornton, R.E., Baritelle, A., Hyde, G. 2003/4. The influence of storage conditions on physical and physiological characteristics of Shepody potatoes. Potato Res. 46, 95-103. Pawelzik, E., Delgado, E., 1999. Wirkung von Trockenstress auf die Verfärbungsneigung von Kartoffelknollen. Kartoffelbau 50, 358-360. Peters, R., Haase, N.U., Pawelzik, E., 2005. Black spot susceptibility of potato tubers in relation to specific gravity. Abstracts of the 16 th Triennial Conference of the EAPR. Bilbao 17.-22. July 2005, pp. 916-918. Rasool, A.-Z., Mojtaba, F., Davood, H.-P., 2007. Sequential path analysis of yield components in potato. Potato Res. 49, 273-279. Scanlon, M.G., Day, A.J., Povey, M.J.W., 1998. Shear stiffness and density in potato parenchyma. Int. J. Food Sci. Tech. 33, 461-464. Scanlon, M.G., Pang, C.H., Bilia<strong>der</strong>is, C.G., 1996. The effect of osmotic adjustment on the mechanical properties of potato parenchyma. Food Res. Int. 29, 481-488. 192
Schmitz, G.E., Sullivan, M.L., Hatfield, R.D., 2008. Three polyphenol oxidases from red clover (Trifolium pratense) differ in enzymatic activities and activation properties. J. Agric. Food Chem. 56, 272-280. Storey, M., 2007. The harvested crop. In: Vreugdenhil D. (Ed), Potato biology and biotechnology. Advances and perspectives. 1. Elsevier, Amsterdam, pp. 441-466. Suttle, J.C., 2007. Dormancy and Sprouting. In: Vreugdenhil D. (Ed), Potato biology and biotechnology. Advances and perspectives. 1. Elsevier, Amsterdam, pp. 287-305. von Willert, D.J., Matyssek, R., Herppich, W.B., 1995. Experimentelle Pflanzenökologie. Grundlagen und Anwendungen. Thieme-Verlag, Stuttgart. Wright, P.J., Triggs, C.M., An<strong>der</strong>son, J.A.D., 2005. Effects of specific gravity and cultivar on susceptibility of potato (Solanum tuberosum) tubers to blackspot bruising and bacterial soft rot. New Zeal. J. Crop Hort. Sci. 33, 353-361. 193
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Department für Nutzpflanzenwissens
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Inhaltsverzeichnis Inhaltsverzeichn
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Abbildungsverzeichnis Abb. 1 Knolle
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Mg magnesium Magnesium Mn manganese
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1.2 Wissenschaftlicher Stand, an de
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für fünf und acht Monate gelagert
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Tab. 2 Standorteigenschaften und In
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2.3 Ermittlung des Wasserzustandes
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2.8 Ermittlung der Zellgröße Die
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µkat kg −1 FM ⎛⎛ * / min ⎞
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2003, Turakainen et al. 2004, 2006,
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et al. 1986, Terry et al. 2000, sie
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Wechselwirkungen zwischen den Aktiv
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4 Zusammenfassung Melanin ist ein P
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peratur und zu einer geringeren Sch
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Tab. 4 Gegenüberstellung geplanter
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Tab. 6 Gegenüberstellung geplanter
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disorders of potato. American Journ
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McNeal J.M. and Balistrieri L.S. 19
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wall and their extracts on the acti
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7 Anhang Nachfolgend sind Einzel- o
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Tab. A2: Schwarzfleckigkeit [Mittel
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Tab. A4: Schwarzfleckigkeit [Mittel
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Tab. A6: Oxidatives Potential [Mitt
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Tab. A8: Oxidatives Potential [Mitt
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Tab. A10: Volumetrischer Modulus de
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Tab. A12: Osmolalität [Mittelwert
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Tab. A14: Osmolalität [Mittelwert
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Tab. A16: Osmotisches Potential [Mi
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Tab. A18: Binnendruck (Turgor) [Mit
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Tab. A20: Binnendruck (Turgor) [Mit
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Tab. A22: Wasserkonzentration [Mitt
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Tab. A24: Wasserpotential [Mittelwe
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Tab. A26: Wasserpotential [Mittelwe
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Tab. A28: Zellgröße [Mittelwert (
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Tab. A30: Stärkekonzentration [Mit
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Tab. A32: Stärkekonzentration [Mit
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Tab. A34: Trockenmassekonzentration
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Tab. A36: Trockenmassekonzentration
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Tab. A38: Konzentration des trocken
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Tab. A40: Konzentration des trocken
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Tab. A42: Konzentration des trocken
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Tab. A44: Pektinkonzentration [Einz
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Tab. A46: Pektinkonzentration [Einz
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Tab. A48: Grad der Pektinveresterun
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Tab. A50: Grad der Pektinveresterun
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Tab. A52: Grad der Pektinveresterun
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Tab. A54: Die antioxidative Kapazit
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Tab. A56: Die antioxidative Kapazit
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Tab. A58: Die Aktivität der Ascorb
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Tab. A60: Die Aktivität der Supero
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Tab. A62: Die Aktivität der Supero
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Tab. A64: Die Aktivität der Polyph
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Tab. A67: Die Aktivität der Polyph
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Tab. A70: Proteinkonzentration [Mit
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Tab. A72: Polyphenolkonzentration [
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Tab. A74: Konzentration an L-Ascorb
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Tab. A76: Konzentration an L-Ascorb
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Tab. A78: Chlorogensäurekonzentrat
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Tab. A80: Chlorogensäurekonzentrat
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Tab. A82: Chlorogensäurekonzentrat
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Tab. A84: Der Einfluss der Konzentr
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Tab. A86: Der Einfluss der Konzentr
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Tab. A88: Der Einfluss der Konzentr
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Tab. A90: Borkonzentration [Einzelw
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Tab. A92: Borkonzentration [Einzelw
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Tab. A94: Eisenkonzentration [Einze
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Tab. A96: Eisenkonzentration [Einze
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Tab. A98: Selenkonzentration [Einze
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Tab. A100: Selenkonzentration [Einz
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Tab. A102: Kalziumkonzentration [Mi
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Tab. A104: Kalziumkonzentration [Ei
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Tab. A106: Kalziumkonzentration [Ei
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Tab. A108: Magnesiumkonzentration [
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- Seite 152 und 153: Tab. A112: Kaliumkonzentration [Mit
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