Kelling, 2007; Neumann, 1995) and reflects the dry matter concentration of potato tubers (Haase 2003/4). A higher dry matter concentration may result from a higher amount of cell wall components, cytoplasmatic components or in case of potato tubers from a large size or a high number of starch granules. This reportedly increases the susceptibility to mechanical deformation of membranes as a direct effect of impact (Lærke, 2001; Olsen, 2003/4; Storey, 2007), regardless of tissue turgidity. According to Scanlon et al. (1998) and Bajema et al. (1998a) it may be assumed that a fully turgid vacuole presses protoplasm and starch granules against the cell walls more than in flaccid cells. Compared to flaccid cells this may increase the shock wave speed after impact. The cell walls could compensate the acceleration of shock wave due to the chemical interactions between the various cell wall components or transferred the impact energy into the parenchyma. Contrary, in relaxed cells the vacuoles did not perform such a strong pressure and so starch granules and protoplasm were not constricted. If the parenchyma was impacted, the starch granules were highly variable to the parenchyma and extended the cell membrane (Galindo et al., 2004b; Alvarez et al., 2000b) or dissipated the impact energy due to friction (Scanlon et al., 1998). Therefore, in flaccid cells the specific gravity of cells influences impact susceptibility. These findings are in agreement with results of Scanlon et al. (1998), who observed a positive relationship between specific gravity and loss modulus, a component of the modulus of elasticity. A directly negative correlation between water concentration and blackspot was found in tubers with specific gravities above 1.095 kg L -1 during the entire period of investigation. The decreasing water concentration reduced stress threshold and enhanced impact susceptibility of potato tubers. Similar results were reported for potato tubers (Alvarez et al., 2000a), carrot roots (Herppich et al., 2004) and apples (Alvarez et al., 2000b). Conclusion From the present results we conclude that blackspot susceptibility of potato tissue is primary associated with the starch concentration of cells and furthermore with the impact susceptibility of the cell membrane of the cortical parenchyma. Presented data showed that increasing impact thresholds and therefore lower blackspot susceptibilities were supported by turgid cells achieved through a balanced water concentration of tubers during growth and storage periods irrespective of cultivars. References Alvarez, M.D., Canet, W., 2002. Effect of osmotic adjustment on the rheology of potato tissue. The use of discriminant analysis for interpretation. Eur. Food Res. Technol. 214, 83-90. Alvarez, M.D., Saun<strong>der</strong>s, D.E.J., Vincent, J.F.V., 2000a. Effects of turgor pressure on the cutting energy of stored potato tissue. Eur. Food Res. Technol. 210, 331-339. 190
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Department für Nutzpflanzenwissens
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Inhaltsverzeichnis Inhaltsverzeichn
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Abbildungsverzeichnis Abb. 1 Knolle
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Mg magnesium Magnesium Mn manganese
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1.2 Wissenschaftlicher Stand, an de
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für fünf und acht Monate gelagert
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Tab. 2 Standorteigenschaften und In
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2.3 Ermittlung des Wasserzustandes
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2.8 Ermittlung der Zellgröße Die
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µkat kg −1 FM ⎛⎛ * / min ⎞
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2003, Turakainen et al. 2004, 2006,
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et al. 1986, Terry et al. 2000, sie
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Wechselwirkungen zwischen den Aktiv
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4 Zusammenfassung Melanin ist ein P
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peratur und zu einer geringeren Sch
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Tab. 4 Gegenüberstellung geplanter
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Tab. 6 Gegenüberstellung geplanter
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disorders of potato. American Journ
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McNeal J.M. and Balistrieri L.S. 19
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wall and their extracts on the acti
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7 Anhang Nachfolgend sind Einzel- o
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Tab. A2: Schwarzfleckigkeit [Mittel
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Tab. A4: Schwarzfleckigkeit [Mittel
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Tab. A6: Oxidatives Potential [Mitt
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Tab. A8: Oxidatives Potential [Mitt
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Tab. A10: Volumetrischer Modulus de
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Tab. A12: Osmolalität [Mittelwert
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Tab. A14: Osmolalität [Mittelwert
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Tab. A16: Osmotisches Potential [Mi
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Tab. A18: Binnendruck (Turgor) [Mit
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Tab. A20: Binnendruck (Turgor) [Mit
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Tab. A22: Wasserkonzentration [Mitt
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Tab. A24: Wasserpotential [Mittelwe
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Tab. A26: Wasserpotential [Mittelwe
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Tab. A28: Zellgröße [Mittelwert (
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Tab. A30: Stärkekonzentration [Mit
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Tab. A32: Stärkekonzentration [Mit
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Tab. A34: Trockenmassekonzentration
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Tab. A36: Trockenmassekonzentration
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Tab. A38: Konzentration des trocken
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Tab. A40: Konzentration des trocken
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Tab. A42: Konzentration des trocken
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Tab. A44: Pektinkonzentration [Einz
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Tab. A46: Pektinkonzentration [Einz
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Tab. A48: Grad der Pektinveresterun
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Tab. A50: Grad der Pektinveresterun
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Tab. A52: Grad der Pektinveresterun
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Tab. A54: Die antioxidative Kapazit
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Tab. A56: Die antioxidative Kapazit
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Tab. A58: Die Aktivität der Ascorb
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Tab. A60: Die Aktivität der Supero
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Tab. A62: Die Aktivität der Supero
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Tab. A64: Die Aktivität der Polyph
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Tab. A67: Die Aktivität der Polyph
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Tab. A70: Proteinkonzentration [Mit
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Tab. A72: Polyphenolkonzentration [
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Tab. A74: Konzentration an L-Ascorb
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Tab. A76: Konzentration an L-Ascorb
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Tab. A78: Chlorogensäurekonzentrat
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Tab. A80: Chlorogensäurekonzentrat
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Tab. A82: Chlorogensäurekonzentrat
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Tab. A84: Der Einfluss der Konzentr
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Tab. A86: Der Einfluss der Konzentr
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Tab. A88: Der Einfluss der Konzentr
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Tab. A90: Borkonzentration [Einzelw
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Tab. A96: Eisenkonzentration [Einze
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Tab. A98: Selenkonzentration [Einze
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Tab. A100: Selenkonzentration [Einz
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Tab. A102: Kalziumkonzentration [Mi
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Tab. A104: Kalziumkonzentration [Ei
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Tab. A106: Kalziumkonzentration [Ei
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