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(ca. 20-80% der Schwanzlänge) platziert und in einem 45-90° Winkel in craniodorsaler
Richtung eingestochen. Trifft man auf die Wirbelsäule auf, so kann die Nadel ein wenig
gedreht werden und nach kranial oder kaudal verschoben werden, bis die Vene punktiert
wurde. Durch Aspiration sollte ein leichter Unterdruck hergestellt werden, der das Blut in
Nadel bzw. Spritze strömen lässt (HERNANDEZ-DIVERS 2006). Bei größeren Echsen
wurde auch der laterale Zugang zur ventralen Schwanzvene sowie die Punktion der
Jugularvene als praktikable Methode beschrieben. Des Weiteren ist es zwar möglich, Blut aus
der großen ventralen Abdominalvene zu entnehmen, doch kann es hierbei schnell zu
Komplikationen kommen, wie z.B. die unbeabsichtigte Punktion des Gastrointestinaltraktes
oder der Harnblase bzw. zu starken Blutungen (SYKES u. KLAPHAKE 2008). Die
Blutentnahme aus dem axillaren Plexus oder dem Orbitalsinus sind ebenfalls beschrieben
worden, in der Praxis jedoch weniger üblich, da es ethische Bedenken gibt und bessere
Methoden zur Verfügung stehen (HERNANDEZ-DIVERS 2006). Die Kardiozentese sowie
das Abknipsen von Krallen sind obsolete Methoden zur Blutentnahme und sollten nicht mehr
angewendet werden (HERNANDEZ-DIVERS 2006). Die abzunehmende Menge sollte 10%
des zirkulierenden Blutes nicht übersteigen. Hierbei ist davon auszugehenen, dass auch bei
Echsen 5 – 8 % ihres Körpergewichtes aus Blut besteht (CANNON 2003). Demnach sollten
nicht mehr als 0,5 % des Körpergewichtes an Blut entnommen werden. Bei einem
Körpergewicht von 100g entspricht dies 0,5 ml Blut. Das Blut wird in Lithium-Heparin
Röhrchen gesammelt, da EDTA auf Reptilienblutzellen hämolytisch wirkt (JOHNSON u.
TEMPE 2006).
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