07.10.2013 Aufrufe

Identifizierung und Charakterisierung von neuen Genen für die ...

Identifizierung und Charakterisierung von neuen Genen für die ...

Identifizierung und Charakterisierung von neuen Genen für die ...

MEHR ANZEIGEN
WENIGER ANZEIGEN

Sie wollen auch ein ePaper? Erhöhen Sie die Reichweite Ihrer Titel.

YUMPU macht aus Druck-PDFs automatisch weboptimierte ePaper, die Google liebt.

- 85 -<br />

λ-Phagen-PCR-Screen<br />

Um <strong>die</strong> DNA mit den flankierenden Sequenzen des TRIM46-Genlokus zu erhalten, wurde ein λ-Phagen-<br />

PCR-Screen (siehe Seite 170) mit Primern (siehe Seite 157) aus dem zu bestimmenden Bereich<br />

durchgeführt. Da <strong>die</strong> Größe der λ-Phagen begrenzt ist, wurde jeweils ein Ansatz <strong>für</strong> <strong>die</strong> 5’-Flanke <strong>und</strong><br />

einer <strong>für</strong> <strong>die</strong> 3’-Flanke durchgeführt <strong>und</strong> <strong>die</strong> Primer entsprechend aus <strong>die</strong>sen Bereichen gewählt. Am Ende<br />

wurden auch 2 überlappende λ-Phagen erhalten, <strong>die</strong> zur Kontrolle sequenziert wurden.<br />

Zur weiteren Verarbeitung wurden <strong>die</strong> Fragmente aus den λ-Phagen umkloniert in den Vektor pBS-KS, da<br />

<strong>die</strong>ser im Gegensatz zu den Phagen Ampicillin-Resistenz hatte <strong>und</strong> <strong>die</strong> Inserts somit in E. coli einfacher<br />

vervielfältigt werden konnten.<br />

Die Insert-Sequenzen lagen in<br />

der multiplen Klonierungsstelle<br />

(MCS) des λ-Phagen<br />

zwischen den Bam HI-Schnittstellen,so<br />

dass sie beispielsweise<br />

mit Not I vollständig<br />

herausgeschnitten werden<br />

konnten.<br />

Das 5’-flankierende Ende <strong>für</strong><br />

das KO-Konstrukt konnte mit<br />

Sal I + Spe I herausge-<br />

Abbildung 64: MCS des verwendeten λ-Phagens.<br />

schnitten werden, wobei zu beachten war, dass ein Teil <strong>von</strong> der MCS des λ-Phagens mitgenommen wurde,<br />

nämlich der zwischen Sal I <strong>und</strong> Bam HI mit den Schnittstellen Not I <strong>und</strong> Eco RI, <strong>die</strong> in der weiteren<br />

Klonierungsstrategie das Insert nicht versehentlich schneiden sollten. Es wurde in pBS II-KS eingefügt:<br />

Pvu I (2416)<br />

Ampicillin<br />

pBS II-KS<br />

2961 bp<br />

lacZ<br />

Spe I + Sal I geschnitten<br />

Ampicillin<br />

Pvu I (500)<br />

Afl III (1153)<br />

SacI (657)<br />

SpeI (683)<br />

MCS<br />

Kpn I (759)<br />

SalI (2908)<br />

SalI (734)<br />

BamHI (47)<br />

EcoRI (41)<br />

NotI (9)<br />

Sal I (2)<br />

pBS II-KS + 5'Flanke<br />

5135 bp<br />

SpeI (683)<br />

Afl III (1561)<br />

Afl III (3327) Kpn I (1745)<br />

Kpn I (2933)<br />

Pvu I (500)<br />

Pvu I (4590) SacI (657)<br />

SacI (2567)<br />

5'-Flanke<br />

5'-Flanke<br />

λ-Phage-5’-Flanke<br />

Lambda-Phage-5'-Flanke<br />

2596 bp<br />

Hind III (19 14 )<br />

Insert: 5’ Sal I - 2225bp – Spe I 3’<br />

Spe I (2227)<br />

BamHI (2398)

Hurra! Ihre Datei wurde hochgeladen und ist bereit für die Veröffentlichung.

Erfolgreich gespeichert!

Leider ist etwas schief gelaufen!