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Identifizierung und Charakterisierung von neuen Genen für die ...

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tischen Retikulums, aber auch <strong>die</strong> sauren<br />

Glykosaminoglykane des hyalinen Knorpels<br />

anlagern. Die eigentliche tiefblaue Färbung<br />

der Kerne wird durch Einstellen des pH>3<br />

mittels Leitungswasser erreicht, was zu<br />

einem Indikatorumschlag führt.<br />

Eosin ist ein negativ geladener Farbstoff, der<br />

zur Gegenfärbung <strong>die</strong>nt. Er färbt alle übrigen<br />

Strukturen in verschiedenen Rot-Tönen,<br />

indem es sich an <strong>die</strong> positiven Gruppen <strong>von</strong><br />

z.B. Eiweißen mittels elektrostatischer<br />

Adsorption bindet.<br />

- 183 -<br />

HO O<br />

Protokoll <strong>für</strong> Paraffinschnitte<br />

Objektträger mit den Gewebeschnitten wurden aus Lagerung bei RT genommen.<br />

Entparaffinierung: 3 x 5 min in Histoclear.<br />

Rehydrierung: Absteigende Ethanolreihe <strong>von</strong> je 4 min 100%, 90%, 70%, 50% Ethanol,<br />

100% Millipore-H2O.<br />

Färbung: 8 – 15 min filtrierter Hämatoxylinlösung nach Harris.<br />

Waschen: 3 x 3 min mit Millipore-H2O.<br />

Entfärbung: 15 s in HCl-Alkohol-Lösung (500 ml 70% Ethanol + 5 ml konzentrierte HCl<br />

(37%)).<br />

Neutralisierung: 1 min mit Millipore-H2O, dann 7 min Millipore-H2O.<br />

Gegenfärbung: 2 – 5 min in 0,1% Eosin-Lösung (0,1 g Eosin + 500 ml Millipore-H2O +<br />

150 μl Eisessig).<br />

Entfärbung <strong>und</strong><br />

Dehydrierung: Aufsteigende Ethanolreihe <strong>von</strong> je 2<br />

min 50%, 70%, 90%, 100%, 100%<br />

Ethanol. Anschließend 3 x 3 min in<br />

Histoclear.<br />

Die Objektträger wurden abgetrocknet, mit einigen Tropfen<br />

Eukitt versehen <strong>und</strong> mit Deckgläschen bedeckt. Das<br />

Eindeckungsmedium sollte nicht wasserlöslich sein, um<br />

Ausfärbungen des Eosins zu vermeiden.<br />

β-Galactosidase-Enzymhistochemie (lacZ-<br />

Färbung)<br />

Die Färbung <strong>die</strong>nte zum Nachweis der Enzymaktivität <strong>von</strong> β-<br />

Galactosidase (lacZ) aus E. coli, <strong>die</strong> in Geweben <strong>von</strong><br />

Säugetieren nicht vorkommt, aber als Reporter-Transgen <strong>für</strong><br />

einen Maus-Knock-out eingesetzt werden kann. Die<br />

physiologische Funktion des Enzyms ist <strong>die</strong> hydrolytische<br />

Spaltung <strong>von</strong> Lactose in Galactose <strong>und</strong> Glucose.<br />

Statt Lactose wird zur Färbung 5-Bromo-4-Chloro-3-Indolylβ-D-Galaktopyranosid<br />

(X-Gal) eingesetzt. Durch <strong>die</strong><br />

Hydrolyse wird das zunächst farblose Indoxylmonomer<br />

freigesetzt, das sich zu einem Dimer zusammenlagert,<br />

welches schließlich nicht-enzymatisch zu einem blauen<br />

O<br />

O<br />

OH<br />

5<br />

6<br />

COOH<br />

7'<br />

2'<br />

6'<br />

3'<br />

HO<br />

5'<br />

O<br />

4'<br />

O<br />

Abbildung 153: Fluorescein in seiner Lacton-Form (links) bzw.<br />

offenen Form (rechts). Eosin ist das Natriumsalz des 2',4',5',7'-<br />

Tetrabromfluoresceins.<br />

Br<br />

Br<br />

CH2OH<br />

OH O<br />

OH<br />

β-Galactosidase<br />

Cl<br />

Cl<br />

H<br />

N<br />

OH<br />

H<br />

N<br />

O<br />

OH<br />

O<br />

NH<br />

HO<br />

N<br />

H<br />

O<br />

N<br />

H<br />

Cl<br />

Cl<br />

5,5'-dibromo-4,4'-dichloro-Indigo<br />

Br<br />

4<br />

Galactose<br />

Br<br />

5-bromo-4-chloro-3-<br />

Indolyl-β-D-Galactose<br />

(X-Gal)<br />

Cl<br />

Br<br />

5-bromo-4-chloro-indoxyl<br />

nicht-enzymatische<br />

Dimerisierung <strong>und</strong><br />

Oxidation<br />

3

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