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Identifizierung und Charakterisierung von neuen Genen für die ...

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Histologie<br />

- 182 -<br />

Anfertigung <strong>von</strong> Cryo-Schnitten<br />

Für Cryo-Schnitte wurden embryonale Gehirne, ganze Embryonen oder einzelne Organe adulter Tiere 2 h<br />

oder ÜN in kaltem PFA (4 % in PBS) fixiert, zweimal 30 min in kaltem PBS gewaschen <strong>und</strong> ÜN bei 4 °C<br />

in 25 % Sucrose in PBS so lange inkubiert, bis <strong>die</strong> Proben in der Sucrose-Lösung auf den Boden<br />

absanken, was zum Schutz gegen Gefrierartefakte <strong>die</strong>nte. Das Einfrieren erfolgte in Einbettmedium (Leica<br />

Instruments) auf Trockeneis in entsprechenden Plastik-Passformen. Gefrierschnitte wurden am Cryostaten<br />

(S3000, Leica Instruments) angefertigt <strong>und</strong> auf beschichtete Objektträger (SuperFrost Plus, Menzel-<br />

Gläser) aufgeschmolzen. Je nach Gewebe wurden Schnittdicken <strong>von</strong> 12-35 μm angefertigt.<br />

Anfertigung <strong>von</strong> Paraffinschnitten<br />

Embryonale oder adulte Gehirne, ganze Embryonen oder einzelne Organe adulter Tiere wurden isoliert,<br />

ÜN in kaltem PFA (4 % in PBS) fixiert <strong>und</strong> jeweils 3 h bei 4 °C in PBS <strong>und</strong> 0,86 % NaCl gewaschen,<br />

wobei <strong>die</strong> Lösungen jeweils 3 Mal gewechselt wurden. Das Gewebe wurde in aufsteigender Ethanol- <strong>und</strong><br />

Lösungsmittel-Reihe entwässert, dreimal über Nacht mit flüssigem Paraffin (Tycon health care) infiltriert<br />

<strong>und</strong> in Paraffin mit entsprechenden Förmchen eingebettet. Paraffinschnitte wurden am Mikrotom (Leica<br />

Instruments) angefertigt <strong>und</strong> auf beschichtete Objektträger (SuperFrost Plus, Menzel-Gläser)<br />

aufgenommen. Je nach Gewebe wurden Schnittdicken <strong>von</strong> 10-20 μm angefertigt.<br />

Aufsteigende Ethanol- <strong>und</strong> Lösungsmittel-Reihe zur Gewebeentwässerung:<br />

Ethanol 50% 2 x 15 min, Ethanol 70%, 2 x 15 min, Ethanol 80% 3 x 20 min, Ethanol 90% 3 x 30 min,<br />

Ethanol 96% 4 x 30 min, Ethanol 100% 5 x 20 min, Isopropanol ÜN bei 4 °C, Toluol : Isopropanol (25% :<br />

75%) 30 min, Toluol : Isopropanol (50 % : 50 %) 30 min, Toluol : Isopropanol (75 % : 25 %) 30 min,<br />

Toluol 3 x 60 min, 3 x ÜN in flüssigem Paraffin (Paraplast).<br />

Hämatoxylin-Eosin-Färbung<br />

Die H.E. - Färbung ist <strong>die</strong> gebräuchlichste Übersichtsfärbung, <strong>die</strong> Zellkerne <strong>und</strong> zytoplasmatische<br />

Bestandteile darstellt. Dabei werden Zellkerne blau <strong>und</strong> das Zytoplasma rot angefärbt, je nach Gewebetyp<br />

in unterschiedlicher Intensität.<br />

Hämatoxylin ist ein farbloser<br />

Pflanzenfarbstoff, welcher durch Alkoholextraktion<br />

aus Blauholz gewonnen wird.<br />

Durch Oxidation (Dehydrierung) an Raumluft<br />

wird Hämatoxylin in den Farbstoff<br />

Hämatein überführt. Über Zugabe <strong>von</strong><br />

Alaunen (KAl(SO4)2 · 12 H2O, Hämatoxylinlösung<br />

nach Harris) entstehen bei pH

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