Charakterisierung von pektinolytischen Enzymen der Zuckerrübe

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53 Nehring, P.: Konserventechnisches Handbuch: der Obst- und Gemüseverwertungsindustrie. 15. Auflage. Magdeburg: Verlag Günter Hempel, 1969 Pathak, N.; Sanwal, G. G.: Multiple Forms OF POLYGALACTURONASE FROM BANA- NA FRUITS. Phytochemistry (1998), Nr. 2, 248-255 Proplanta (Hrsg.): Kulturpflanzen: Zuckerrübe. http://www.proplanta.de/web/themen.php?; 15.01.2010 Rheologie und Rheometrie – Rheologische Messungen. http://rheologie.homepage.t-online. de /mess.html. 2010 Steffens, C.: Enzymkinetik: Ableitung des Mechaelis-Menten Gesetzes: Hochschule Neubrandenburg, Zusammenfassung 11 zum Fach Mikrobiologie, 2007 Shen, Z. et al.: Polygalacturonase from Sitophilus oryzae: Possible horizontal transfer of a pectinase gen from fungi to weevils 2003. http://www.insectscience.org/3.24/Shen_et_al_JIS _3_24_2003.pdf. 03.02.2010 Tam, S. Y. T.: A new calculation method for distinguishing endo- from exo-polygalacturonases. Journal of Food Science (1983), Nr. 48, 532-533, 538 Univie (Hrsg.): Oligosaccharide. http://www.univie.ac.at/anchem/publikation/LMC1_BA_ Teil10b.pdf; 21.01.2010 Van Buggenhout, S.: et al.: Pectins in Processed Fruit and Vegetables: Part-III – Texture Engineering. Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety (2009), Nr. 8, 105-117 Verfahren zur Gewinnung von Pektin – Extrakt aus Zuckerrüben und dessen Verwendung. Patentschrift DE4313549 C1. 13.10.1994
8 Verzeichnis der verwendeten Tabellen 54 Tab. 1: Pektingehalte verschiedener Obstarten (Hammer, 2005) Tab. 2: Pektingehalte verschiedener Rohstoffe der Pektinherstellung (Hammer, 2005) Tab. 3: Darstellung der Zusammensetzung der Blindwerte Tab. 4: Vergleich zweier Enzyme unter Standardbedingungen Tab. 5: Bestimmung der exo-Polygalacturonaseaktivität zweier Enzymextrakte unter Stan- dardbedingungen Tab. 6: Messungen zur Bestimmung des pH-Optimums der Zuckerrübenpektinesterase Tab. 7: Messungen zum Natriumchlorit-Optimum der Zuckerrübenpektinesterase Tab. 8: Bestimmung des pH-Optimums der exo-Polygalacturonase (σ bezieht sich auf units / g Zuckerrübe) Tab. 9: Bestimmung des pH-Optimums der endo-Polygalacturonase (σ bezieht sich auf units / g Zuckerrübe) 9 Verzeichnis der verwendeten Abbildungen Abb. 1: Vergleich der Pro-Kopf-Zuckerverbräuche ausgesuchter Staaten im Jahr 2005 (ZMP, 2008) Abb. 2: Darstellung der Funktion des Pektins als Kittsubstanz (Hammer,2005) Abb. 3: „smooth region“ eines Pektinmoleküls (Czieslich, 2005) Abb. 4: Darstellung des Angriffs von endo- und exo-Polygalacturonase (Meurer, 1991) Abb. 5: Darstellung des Searl- und Couette-Systems (Rheologie und Rheometrie, 2010) Abb. 6: Darstellung des Verbrauches an 0,01 M NaOH bei der Bestimmung des pH- Optimums der Pektinesterase aus Zuckerrüben Abb. 7: Entwicklung der Aktivität der Pektinesterase bei verschiedenen pH-Werten Abb. 8: Darstellung der Entwicklung der relativen Aktivität der Pektinesterase aus Zuckerrüben bei verschieden pH-Werten Abb. 9: Darstellung der Zuckerrüben-Pektinesteraseaktivität bei verschiedenen Natriumchloritgehalten in der Substratlösung Abb. 10: relative Pektinesteraseaktivität bei verschiedenen NaCl-Konzentrationen Abb. 11: Darstellung der Eichgeraden zur Bestimmung der exo-Polygalacturonaseaktivität Abb. 12: Untersuchung der Eichgeraden auf Linearität Abb. 13: Entwicklung der exo-Polygalacturonaseaktivität in Abhängigkeit vom pH-Wert Abb. 14: Relativen Aktivität der exo-Polygalacturonase in Abhängigkeit vom pH-Wert Abb. 15: Entwicklung der endo-Polygalacturonaseaktivität bei verschieden pH-Werten
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Hochschule Neubrandenburg Fachberei
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Abstract One of the most important
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