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Untersuchungen zum Vorkommen und zur gesundheitlichen ...

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Glasplatten gespritzt, dass keine Luftblasen entstanden. Anschließend wurde ein<br />

„Vorkamm“ („Haifischkamm umgedreht“) am oberen Rand zwischen die beiden<br />

Platten geschoben <strong>und</strong> zwei Klemmen <strong>zum</strong> Fixieren angebracht. Während des<br />

Auspolymerisierens des Gels wurden die Glasplatten horizontal bei Raumtemperatur<br />

für mindestens 2 h gelagert.<br />

Bevor die Proben auf das Gel aufgetragen werden konnten, wurde der „Vorkamm“<br />

gegen einen Haifischkamm ausgetauscht <strong>und</strong> das Gel in eine<br />

Elektrophoresekammer (Protean ® IIxi Cell, Biorad, München), mit integrierter<br />

Kühlapparatur (Cooling Modul, Biorad) eingebaut. Die Elektrophoresekammer wurde<br />

an ein Netzgerät (2297 Macrodrive 5, Constant Power Supply, LKB Bromma,<br />

Schweden) angeschlossen. Der obere <strong>und</strong> untere Elektrophoresetank wurde mit<br />

1xTBE-Laufpuffer befüllt. Anschließend wurden die Haifischkammtaschen mit<br />

1xTBE-Laufpuffer gespült, um Luftblasen <strong>und</strong> eventuelle Gelreste zu entfernen 1 .<br />

Jetzt erfolgte der Probenauftrag. Hierfür wurden 6 µl der jeweiligen Probe <strong>und</strong> 2-2,5<br />

µl des Standardgemisches in die Geltaschen pipettiert. Die Einstellungen der<br />

physikalischen Parameter der Elektrophorese sind in Tab. 8 dargestellt.<br />

Tab. 8: Parameter <strong>und</strong> Zeit der elektrophoretischen Bedingungen in Abhängigkeit<br />

von den zu trennenden PCR-Produkten<br />

Parameter Actinomyceten-Primer<br />

Geltemperatur 19,5 °C / 14,0 °C<br />

Zeit (h) 12-14<br />

elektrische Leistung (Watt) 50<br />

elektrische Spannung (Volt) 450<br />

elektrische Stromstärke<br />

(Milliampere)<br />

8<br />

Zur Kontrolle des mittels λ-Exonuclease erfolgten Verdaues wurde je eine Probe<br />

verdaut <strong>und</strong> unverdaut auf das Polyacrylamidgel aufgetragen.<br />

Zur Visualisierung der einzelsträngigen DNA-Banden im Gel wurde eine<br />

Silbernitratfärbung durchgeführt. Der Vorteil dieser Methode liegt in ihrer Sensitivität<br />

(bis zu 0,03 ng/mm 2 sind möglich) <strong>und</strong> in der Möglichkeit der dauerhaften<br />

Dokumentation, da die Färbung nicht verschwindet (Mülhardt, 2002; Qu, 2005).<br />

1 Ein Vorlauf von ca. zwanzig min mit SSCP-Ladepuffer beladenen Geltaschen war nötig, um die<br />

Auftrennung in den einzelnen Taschen zu kontrollieren. Die Kühlung der Apparatur sollte bereits eine<br />

halbe St<strong>und</strong>e vor dem Lauf angestellt sein.<br />

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