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Texte 02 09 ISSN 1862-4804 Untersuc
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Diese Publikation ist ausschließli
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1. Report No. UBA-FB 001229 4. Repo
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Umweltmykologie GbR Berlin) 2.3.6.2
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3.3.3.1 Vorversuche zur Freisetzung
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• Festlegung der morphologischen
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Seitens des Umweltbundesamtes wurde
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Mikroorganismen, wie z.B. Saccharop
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Weiterhin wurde im Staub einer Kind
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eines gemeinsamen Trainings wurde s
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auswählt. In der Vorphase (bis zur
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auf wissenschaftlichen Tagungen üb
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Die Auswahl der Parameter entsprich
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2.2 Beschreibung der Probenahmestel
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Es sollten auch mittels Datenlogger
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Farbe ist zum einen für die Gewinn
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2.3.2 Nährmedien zur Kultivierung
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2.3.4 Festlegung der Dominanz einze
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2.3.5.3 Gram-Färbung Die Gram-Fär
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Die DC-Platte wurde anschließend i
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Für die Analyse der Fettsäuren er
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2.3.6 Konservierung Die Konservieru
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eingewogen und etwas Zellmateriall
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2.4.1.3 DNA-Extraktion aus Kolonien
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Plasmid-Primer M13 Primer 616 V / 1
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Universelle 16S rRNA Primer (EUB-Pr
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2.4.2.2 Agarosegelelektrophorese Di
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gemischt. Das Gemisch wurde zwei mi
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Alle Schritte der Silbernitratfärb
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Fragmente mit einem A-Überhang rel
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2.4.5 Sequenzierung durch Kettenabb
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Der MTT-Zellkulturtest zeichnet sic
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Probenmaterials sicher ausgeschloss
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Untersuchungsobjekte isoliert worde
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3 Ergebnisse 3.1 Kultivierungsabhä
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Tab. 9: Koloniebildende Einheiten (
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Tab. 10: Gattungszuordung der gewon
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3.1.2.2 Übersicht über die häufi
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In den Proben wurden jeweils 4 bzw.
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in den 24 untersuchten Proben (die
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In der Abb. 3 sind die Anteile der
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[Σ Gattungen] 25 20 15 10 5 0 WP 0
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Weiterhin bildeten einige Referenzi
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ähnliches Spektrum unterschiedlich
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Abb. 6: Referenzisolate der Gattung
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auf Hafermehl-, Gauze- und CASO-Aga
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Abb. 8: Koloniemorphologie der Refe
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3.1.2.5.2 Micromonospora Aus der Ga
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Abb. 15: Koloniemorphologien von 14
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3.1.2.5.5 Nocardiopsis Die Mehrzahl
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Abb. 25: 21 Tage alte Referenzisola
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Abb. 28: Abb. 29: Kleine Kulturen v
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Abb. 31: Kolonien (von unten aufgen
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Abb. 33: Abbildung der Luftmyzelien
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3.1.2.5.8 Saccharopolyspora Die Meh
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Abb. 39: Abb. 40: Streptomycetes-Ko
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Eine sichere Bestimmung auf der Pri
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3.1.4 Chemotaxonomische Untersuchun
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Die Identifizierung eines dieser 4
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Tab18: Chemotaxonomische Merkmale d
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Tab. 19: Chemotaxonomische Merkmale
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Tab. 20: Chemotaxonomische Merkmale
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Saccharothrix, Propionibacterium, P
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3.2.2 SSCP (Singel Strand Conformat
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Korrelation mit Hilfe einer Cluster
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Tab. 22: Referenzkonzentrationen vo
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angenommen (das gesamte Wachstum au
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Freisetzung von TNF-α in Abhängig
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ml. Dies deutet an, dass die Interl
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dieser Probe wurden nicht untersuch
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Erhöhung der TNF-alpha Freisetzung
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4 Diskussion 4.1 Ergebnisse und Sch
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Anzüchtung einzelner Isolate auf v
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molekularbiologischen Methoden für
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Nocardioidaceae detektiert werden.
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4.3.1 Molekularbiologische Identifi
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In der vorliegenden Studie wurden n
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Eine weitere Gattung, deren Vertret
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Actinomycetales besitzen L-Lysin, L
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PII PIM, PI, (PG), PE, DPG PIII (PI
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Pseudonocardia Pseudonocardiaceae m
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durchgeführt. Auch wenn mit beiden
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4.5 Diskussion der toxikologischen
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Nocardiopsis. Dies zeigt, dass man
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4.5.3 Diskussion - Gesundheitliche
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4.6 Zusammenfassung Diversität: Di
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Allein anhand koloniemorphologische
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4.6 Summary Diversity The results o
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cell wall, these methods are time-c
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Verzeichnis der Abbildungen Abb. 1:
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Verzeichnis der Tabellen Tab. 1: De
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Ensign, J.C. (1992): Introduction t
- Seite 185 und 186: Kutzner, H. J, Kempf, A. (1996): Vo
- Seite 187 und 188: Rintala, H., Pitkäranta, M., Toivo
- Seite 189 und 190: Anhang: Probendatenblätter Probend
- Seite 191 und 192: Objektbeschreibung Probendatenblatt
- Seite 193 und 194: Objektbeschreibung Probendatenblatt
- Seite 195 und 196: Objektbeschreibung Probendatenblatt
- Seite 197 und 198: Objektbeschreibung Probendatenblatt
- Seite 199 und 200: Objektbeschreibung Probendatenblatt
- Seite 201 und 202: Objekt 05 (Bad) Ergebnisse Feuchtig
- Seite 203 und 204: Objektbeschreibung Probendatenblatt
- Seite 205 und 206: Objektbeschreibung Probendatenblatt
- Seite 207 und 208: Probe 09 02-07/02 1 Filter 09.03.06
- Seite 209 und 210: Ergebnisse Feuchtigkeits- und Tempe
- Seite 211 und 212: pH-Wert Probe Nr. Material elektron
- Seite 213 und 214: Probe 12 06-07/02 (je 80 g) LGA 18.
- Seite 215 und 216: Ergebnisse Feuchtigkeits- und Tempe
- Seite 217 und 218: Versand an Probe 14 08-07/01 22.08.
- Seite 219 und 220: Versand an Probe 15 08-07/01 22.08.
- Seite 221 und 222: Probenahme Nr. Material Datum/Bearb
- Seite 223 und 224: Mikroskopie Zellform Stäb.-Kokken-
- Seite 225 und 226: 7 Agar 15,0 g 8 Aqua dest. 1000 ml
- Seite 227 und 228: Glucose-Yeast-Malt-Agar (GYM STREPT
- Seite 229 und 230: Tab. A 1: API-ZYM-Test Isolat Agar
- Seite 231 und 232: Agrococcus ca. 1200 bp 0.01 53 228
- Seite 233 und 234: Arthrobacter, ca. 1260 bp, outgroup
- Seite 235: Brevibacterium ca. 1330 bp 0.01 84
- Seite 239 und 240: Janibacter ca. 1400 bp outgroup Orn
- Seite 241 und 242: Kocuria, ca. 1330 bp, outgroup Arth
- Seite 243 und 244: Kytococcus, ca. 1340 bp outgroup Br
- Seite 245 und 246: Leucobacter ca. 1360 bp 0.005 64 93
- Seite 247 und 248: Micrococcus, ca. 1350 bp, outgroup
- Seite 249 und 250: Micromonospora, ca. 1320 bp, outgro
- Seite 251 und 252: Nocardia, ca. 1280 bp, outgroup Mic
- Seite 253 und 254: Nocardiopsis, ca1300 bp, outgroup A
- Seite 255 und 256: Ornithinimicrobium /Arsenicicoccus,
- Seite 257 und 258: Promicomonospora, 1230 bp (14 Isola
- Seite 259 und 260: Rhodococcus, ca. 1230 bp, outgroup
- Seite 261 und 262: Tsukamurella, ca. 1400 bp, outgroup
- Seite 263 und 264: Nährmedium Dominanzklasse Putzprob
- Seite 265 und 266: Nährmedium Dominanz Styroporprobe
- Seite 267 und 268: Nährmedium Dominanzklasse Lehmputz
- Seite 269 und 270: Stammnummer KBE/g bzw. m 3 DAP Iden
- Seite 271 und 272: Stammnummer KBE/g bzw. m 3 DAP Iden
- Seite 273 und 274: Stammnummer KBE/g bzw. m 3 DAP Iden
- Seite 275 und 276: Stammnummer KBE/g bzw. m 3 DAP Iden
- Seite 277 und 278: Stammnummer KBE/g bzw. m 3 DAP Iden
- Seite 279: Stammnummer KBE/g bzw. m 3 DAP Iden
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